본 연구에서는 한국인 아동의 우식치아로부터 분리한 S. mutans K7으로부터 HtrA gene을 동정하고 HtrA expression이 산성환경하에서 S. mutans의 생육에 미치는 영향을 알아보았다. S. mutans K7의 HtrA mutant strain은 산성환경에서 parental strain과 비교하였을 때, 생육에 있어서 상당한 차이를 나타내었다. 또한 Biofilm formation에 관여하는 GtfB, 와 GtfC의 발현량도 현저히 줄어들었다. 그리고 HtrA mutant strain에 HtrA gene을 삽입하여 HtrA의 발현량을 회복하였을 경우에는 acid stress하에서 control과 같은 nomal growth phenotype을 회복하였다. 이러한 결과들은 S. mutans K7에서 HtrA가 acid stress동안에 중요한 역할을 담당함을 제시하고 있다.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제6권2호
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pp.207-210
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2003
Four different backcrossing methods were designed and 23 near isogenic lines (NILs) of 22 linkage groups were obtained using Hb as recurrent parent, the mutant gene lines which held markers as donor parents. Eleven of them had been mated with the recurrent parent for 10 times, and the others for 7∼8 times. The NILs of other 6 linkage groups are under way and had been backcrossed to the recurrent for 3∼4 times. These NILs will act important roles in the construction of molecular linkage map and gene location and positional cloning.
3'-Hydroxygenistein can be obtained from the biotransformation of genistein by the engineered Pichia pastoris X-33 strain, which harbors a fusion gene composed of CYP57B3 from Aspergillus oryzae and a cytochrome P450 oxidoreductase gene (sCPR) from Saccharomyces cerevisiae. P. pastoris X-33 mutants with higher 3'-hydroxygenistein production were selected using a periodic hydrogen peroxide-shocking strategy. One mutant (P2-D14-5) produced 23.0 mg/l of 3'-hydroxygenistein, representing 1.87-fold more than that produced by the recombinant X-33. When using a 5 L fermenter, the P2-D14-5 mutant produced 20.3 mg/l of 3'-hydroxygenistein, indicating a high potential for industrial-scale 3'-hydroxygenistein production.
Metabolic engineering with a high-yielding mutant, A. terreus AN37, was performed to enhance the production of itaconic acid (IA). Reportedly, the gene cluster for IA biosynthesis is composed of four genes: reg (regulator), mtt (mitochondrial transporter), cad (cis-aconitate decarboxylase), and mfs (membrane transporter). By overexpressing each gene of the IA gene cluster in A. terreus AN37 transformed by the restriction enzyme-mediated integration method, several transformants showing high productivity of IA were successfully obtained. One of the AN37/cad transformants could produce a very high amount of IA (75 g/l) in shake-flask cultivations, showing an average of 5% higher IA titer compared with the high-yielding control strain. Notably, in the case of the mfs transformants, a maximal increase of 18.3% in IA production was observed relative to the control strain under the identical fermentation conditions. Meanwhile, the overexpression of reg and mtt genes showed no significant improvements in IA production. In summary, the overexpressed cis-aconitate decarboxylase (CAD) and putative membrane transporter (MFS) appeared to have positive influences on the enhanced IA productivity of the respective transformant. The maximal increases of 13.6~18.3% in IA productivity of the transformed strains should be noted, since the parallel mother strain used in this study is indeed a very high-performance mutant that has been obtained through intensive rational screening programs in our laboratory.
The task of improving a fungal strain is highly time-consuming due to the requirement of a large number of flasks in order to obtain a library with enough diversity. In addition, fermentations (particularly those for fungal cells) are typically performed in high-volume (100-250 ml) shake-flasks. In this study, for large and rapid screening of itaconic acid (IA) high-yielding mutants of Aspergillus terreus, a miniaturized culture method was developed using 12-well and 24-well microtiter plates (MTPs, working volume = 1-2 ml). These miniaturized MTP fermentations were successful, only when highly filamentous forms were induced in the growth cultures. Under these conditions, loose-pelleted morphologies of optimum sizes (less than 0.5 mm in diameter) were casually induced in the MTP production cultures, which turned out to be the prerequisite for the active IA biosynthesis by the mutated strains in the miniaturized fermentations. Another crucial factor for successful MTP fermentation was to supply an optimal amount of dissolved oxygen into the fermentation broth through increasing the agitation speed (240 rpm) and reducing the working volume (1 ml) of each 24-well microtiter plate. Notably, almost identical fermentation physiologies resulted in the 250 ml shake-flasks, as well as in the 12-well and 24-well MTP cultures conducted under the respective optimum conditions, as expressed in terms of the distribution of IA productivity of each mutant. These results reveal that MTP cultures could be considered as viable alternatives for the labor-intensive shake-flask fermentations even for filamentous fungal cells, leading to the rapid development of IA high-yield mutant strains.
Jeong, Chan Young;Lee, Chang Hoon;Kim, Su Bae;Kang, Sang Kuk;Ju, Wan-Taek;Kim, Seong-Wan;Kim, Nam-Suk;Kim, Kee Young;Park, Jong Woo
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제43권1호
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pp.29-36
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2021
Silkworms have long been bred with human history to produce silk. It has been with humans for longer than other industrial insects, and the silkworm variety has been continuously improved. Silkworms have been developed into the optimal form for producing high quality silk and pupae. Recently, the production of transgenic silkworms has further expanded the possibility of industrial value of silkworms. Kynurenine 3-monooxygenase (KMO), which is a flavin enzyme, is known for its involvement in ommochrome pigment synthesis. In the field of mammals, including humans, previous studies have revealed the function and role of KMO, which is an important enzyme for various immune responses and cell protection. However, in the case of insects, the function of KMO has only been studied to be involved in the formation of pigment, and accordingly, KMO is used exclusively on screening for generation of transgenic insects as a marker. In this study, using KMO-edited silkworms, it was intended to discover the novel functions and roles of KMO in silkworms by identifying changes in the expression of various genes associated with stress and growth. The changes were observed in expressions of genes regulating on stresses to survive and those on ecdysteroid hormone between wild-type (WT) silkworms and kmo mutant silkworms. The loss of KMO, in particular, decreased the expression of the shadow (sad) gene, one of the Halloween genes in the synthesis of ecdysteroid. In conclusion, these results suggest that silkworm KMO is responsible for potential functions regarding stress response and ecdysteroid synthesis.
Glucose (xylose) isomerases from Streptomyces sp. have been used for the production of high fructose corn syrup for industrial purposes. An 11-kb DNA fragment containing the xyl gene cluster was isolated from Streptomyces lividans TK24 and its nucleotide sequences were analyzed. It was found that the xyl gene cluster contained a putative transcriptional repressor (xylR), xylulokinase (xylB), and xylose isomerase (xylA) genes. The transcriptional directions of the xylB and xylA genes were divergent, which is consistent to those found in other streptomycetes. A gene encoding XylR was located downstream of the xylB gene in the same direction, and its mutant strain produced xylose isomerase regardless of xylose in the media. The enzyme expression level in the mutant was 4.6 times higher than that in the parent strain under xylose-induced condition. Even in the absence of xylose, the mutant strain produce over 60% of enzyme compared with the xylose-induced condition. Gel mobility shift assay showed that XylR was able to bind to the putative xyl promoter, and its binding was inhibited by the addition of xylose in vitro. This result suggested that XylR acts as a repressor in the S. lividans xylose operon.
The fatty acids content of castor (Ricinus communis L.) seed oil is 80-90% ricinoleic acid, which is a hydroxy fatty acid (HFA). The structures and functional groups of HFAs are different from those of common fatty acids and are useful for various industrial applications. However, castor seeds contain the toxin ricin and an allergenic protein, which limit their cultivation. Accordingly, many researchers are conducting studies to enhance the production of HFAs in Arabidopsis thaliana, a model plant for oil crops. Oleate 12-hydroxylase from castor (RcFAH12), which synthesizes HFA (18:1-OH), was transformed into an Arabidopsis fae1 mutant, resulting in the CL37 line producing a maximum of 17% HFA content. In addition, castor phospholipid:diacylglycerol acyltransferase 1-2 (RcPDAT1-2), which catalyzes the production of triacylglycerol by transferring HFA from phosphatidylcholine to diacylglycerol, was transformed into the CL37 line to develop a P327 line that produces 25% HFA. In this study, we investigated changes in HFA content when endogenous Arabidopsis PDAT1 (AtPDAT1) of the P327 line was edited using the CRISPR/Cas9 technique. The successful mutation resulted in three independent lines with different mutation patterns, which were transmitted until the T4 generation. Fatty acid analysis of the seeds showed that HFA content decreased in all three mutant lines. These findings indicate that AtPDAT1 as well as RcPDAT1-2 in the P327 line are involved in transferring and increasing HFAs to triacylglycerol.
An efficient screening method was developed for rapid selection of a few overproducers of itaconic acid (IA) among the great many mutants derived from mother strains of Aspergillus terreus. For this purpose, an attempt was made to reveal the relationships of the growth rate and sporulation of each mutant on PDA solid medium with its IA productivity in the final liquid production-culture. As a result, it was possible to classify the mutated strains into 5 groups (from [A] to [E] group) according to theirmorphologies (i.e., growth rate and sporulation extent) on the PDA slants. Notably, most of the high-yielding mutants of IA were observed to belong to [A]group which had the properties of the highest growth rate and sporulation among the 5 groups, whereas the mutant groups of [C], [D] and [E] with the contrasting morphological features showed significant reductions in their IA productivities. From these results, it was concluded that the probability of selecting IA overproducing mutants could be remarkably enhanced when the mutated colonies showing faster growth rates are firstly selected on the PDA plate, and then further screening process is performed on the basis of the sporulation extents of the mutants selected. Consequently, through the application of the strategy developed in this study, costs and time involvedin the labor-intensive task of strain improvement could be reduced to a great extent, because the time-consuming liquid culture processes did not need to performed for the unfavorable mutants belonging to the groups other than group [A].
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[게시일 2004년 10월 1일]
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