Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.28
no.1
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pp.42-45
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2002
Cultures of primary human alveolar bone-derived cells were established from alveolar bone chips obtained from normal individuals undergoing tooth extraction. These cells were expanded in vitro until passage 3 and used for the in vivo assays. Cells were loaded into transplantation vehicles, and transplanted subcutaneously into immunodeficient mice to study the capacities of human alveolar bone-derived cells to form bone in vivo. Transplants were harvested 12 weeks after transplantation and evaluated histologically. Of 10 human alveolar bone-derived cell transplants, two formed a bone-like tissue that featured osteocytes and mineral. Eight of the ten formed no osseous tissue. These results show that cells from normal human alveolar bone are capable of forming bone-like tissue when transplanted into immunodeficient mice.
The present study was done to investigate the effect of co-culturing muscle satellite cells (MSCs) and intramuscular preadipocytes (IPs) on the differentiation of adipocytes and muscle cells isolated from Korean native cattle. MSCs and IPs were single-cultured in 10% fetal bovine serum/Dulbecco's modified Eagles medium (FBS/DMEM) for 48 h followed by culturing in 5% FBS/DMEM as the growth media. Then, the growth media was replaced by differentiation media composed of 2% FBS/DMEM without any additives for the single- or co-culture of muscle cells and intramuscular adipocytes to induce the differentiation of both cell types. Cell differentiation was measured by morphological investigation and cytosolic enzyme analysis of glycerol-3-phosphate dehydrogenase (GPDH) for the adipocytes and creatine kinase (CK) for the muscle cells. In the morphological test, the presence of muscle cells did not stimulate adipocyte differentiation showing more differentiation of the adipocytes in the single-culture compared to the co-culture condition. However, the differentiation of muscle cells was promoted by adipocytes in the co-culture. The results of the enzymatic analysis were highly associated with the morphological results with a statistically higher GPDH activity (p < 0.05) appearing in the single-culture than in the co-culture, whereas the opposite was true for the CK activity of the muscle cells (p < 0.05). By manipulating in vivo the milieu using a co-culture, we could detect the difference in the rate of cell differentiation and suggest that a co-culture system is a more reliable and precise technique compared to a single-culture. Further studies on various co-culture trials including supplementation of differentiating substances, gene expression analysis, etc. should be done to obtain practical and fundamental data.
Jung, Seok Yun;Choi, Sung Hyun;Yoo, So Young;Baek, Sang Hong;Kwon, Sang Mo
Biomolecules & Therapeutics
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v.21
no.3
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pp.196-203
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2013
Recent accumulating studies have reported that hypoxic preconditioning during ex vivo expansion enhanced the self-renewal or differentiation of various stem cells and provide an important strategy for the adequate modulation of oxygen in culture conditions, which might increase the functional bioactivity of these cells for cardiac regeneration. In this study, we proposed a novel priming protocol to increase the functional bioactivity of cardiac progenitor cells (CPCs) for the treatment of cardiac regeneration. Firstly, patient-derived c-$kit^+$ CPCs isolated from the atrium of human hearts by enzymatic digestion and secondly, pivotal target molecules identified their differentiation into specific cell lineages. We observed that hCPCs, in response to hypoxia, strongly activated ERK phosphorylation in ex vivo culture conditioning. Interestingly, pre-treatment with an ERK inhibitor, U0126, significantly enhanced cellular proliferation and tubular formation capacities of CPCs. Furthermore, we observed that hCPCs efficiently maintained the expression of the c-kit, a typical stem cell marker of CPCs, under both hypoxic conditioning and ERK inhibition. We also show that hCPCs, after preconditioning of both hypoxic and ERK inhibition, are capable of differentiating into smooth muscle cells (SMCs) and cardiomyocytes (CMs), but not endothelial cells (ECs), as demonstrated by the strong expression of ${\alpha}$-SMA, Nkx2.5, and cTnT, respectively. From our results, we conclude that the functional bioactivity of patient-derived hCPCs and their ability to differentiate into SMCs and CMs can be efficiently increased under specifically defined culture conditions such as short-term hypoxic preconditioning and ERK inhibition.
The developmental capacity of bovine oocytes under three different culture systems was investigated in this experiment ; One was culture in TCM199 with bovine oviductal epithelial cells(BOEC) for in vitro culture, another was culture in TCM199 with BOEC for 2 days and then transfer of 4~8cell embryos to rabbit oviduct(RO) and the other was transfer of 1 or 2cell embryos to RO for in vivo culture. And the other concern of this experiment was to investigate the effect of culture period and transfer site on recovery. Immature bovine oocytes were cultured in TCM199 with granulosa cells for 22-24hrs and then fertilized in vitro using frozen-thawed semen treated with BO-caffine and BO-BSA. Fifteen to 18hrs after in vitro fertilization oocytes were cultured in TCM199 with BOEC or transferred to RO for 5 days. The rate of development to the morula or blastocyst was higher in transfer of 1 or 2cell embryos to RO(23.1%) than culture in TCM199 with BOEC(11.7%). But, there was no difference between transfer of 1 or 2cell embryos and transfer of 4~8cell embryos to RO(12.8%). Recovery under different culture periods in RO was significantly higher in 90~95hrs(70.1%) than 122~125hrs(50.9%, p<0.05) and recovery significantly increased when oocytes were transferred deeper in RO(2.5cm>, 47.7% ; 2.5~4.5cm, 63.9% ; 4.5cm<, 77.3%, p<0.05). The results show that transfer of 1 or 2cell embryos to RO is an effective means of supporting the further development of in vitro matured and fertilized bovine oocytes than culture in TCM199 with BOEC or transfer of 4~8cell embryos to RO, and recovery from RO increases when oocytes are transferred deeper and incubated shorter in RO.
A culture system for lactating rat mammary acini was evaluated, where the primary indicator of performance was lactose secretion, measured by a sensitive bioluminescence assay. Lactose secretion was reduced by half (p<0.01) over the first 6 h of culture by overnight feed withdrawal (FW) from tissue donors but was sensitive to increased glucose concentration in the culture media (p<0.001) up to 30 mM. Lactose production of cells from fed donors over the first 6 h in culture in 30 mM glucose was 8.9 fmol/cell/h - a rate calculated to be about half that in vivo. No significant difference was shown in lactose secretion by cells from fed or FW rats over 6-24 h. Lactose secretion was 3.6 fmol/cell/h by cells from fed animals in 40 mM glucose concentration media over the 6-24 h culture period. Addition of insulin to the culture media had no effect on rates of lactose secretion while addition of prolactin and hydrocortisone, with or without insulin, significantly (p<0.001) decreased lactose production over both 0-6 h and 6-24 h culture periods. Lactose synthesis in vitro was significantly enhanced by aeration of the media during collagenase digestion of mammary tissue (p<0.05). No improvement in lactose secretion was effected by shaking of cells during culture, Matrigel coating of culture dishes or change in cell density over a range up to 2.5 million cells per ml.
ERM proteins transfer the methyl group to $A_{2058}$ in 23S rRNA to confer the resistance to MLS (macrolide-lincosamide-streptogramin B) antibiotics on microorganism ranging from antibiotic producers to pathogens. To define the functional role of peptide segment encompassing amino acid residues 1 to 25 in NTER (N-terminal end region) of ErmSF, one of the ERM proteins, DNA fragment encoding mutant protein deprived of that peptide was cloned and overexpressed in E. coli to obtain a purified soluble form protein to the apparent homogeneity in the yield of 12.65 mg per liter of culture. The in vitro activity of mutant protein was found to be 85% compared to wild type ErmSF, suggesting that this peptide interact with substrate to affect the enzyme activity. This diminished activity of mutant protein caused the delayed expression of antibiotic resistance in vivo, that at fIrst cells expressing mutant protein showed the retarded growth due to the antibiotic action but with time cells inhibited by antibiotic gradually recovered the viability to exert the resistance to the same extent as those with wild type protein.
Fluoride (F), over a narrow concentration range, increases bone formation. Aluminum (Ai) too is biphasic in its action on bone, being mitogenic at very low levels and inhibitory at higher levels. Both F and Al are present in finished drinking water where the chemical interaction of these two agents is well characterized. F and AI, given individually, accumulate preferentially in bone. In addition. in vivo studies have shown that F causes the co-accumulation of Al in bone. Thus, it was necessary to determine the interactive effect of these two agents on bone mitogenesis. Calvaria were obtained from neonatal CD-1 mice and cultured with various concentrations of F (0.05~19 ppm) as NaF, Al (2 ppb~2 ppm) as $AlCl_3$ , or F and Al for 3 days at $37^{\circ}C$ on a rotating roller drum. Alkaline phosphatase activity in calvaria and $\beta$-glucuronidase activity in culture medium were determined as a measures of bone turnover. Alkaline phosphatase activity in calvaria was significantly increased by F (0.05~2 ppm) treatment and $\beta$-glucuronidase activity was slightly increased in the culture medium of calvaria treated with 0.3 ppm Al. The combination of 19 ppm F and 0.3 ppm Al increased alkaline phosphatase activity in calvaria, but did not affect $\beta$-glucuronidase activity, suggesting the interactive effect of fluoride and aluminum on bone turnover.
Choi, Shinkyu;Kim, Ji Aee;Kim, Kwan Chang;Suh, Suk Hyo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.19
no.1
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pp.35-42
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2015
In cardiovascular disorders, understanding of endothelial cell (EC) function is essential to elucidate the disease mechanism. Although the mouse model has many advantages for in vivo and in vitro research, efficient procedures for the isolation and propagation of primary mouse EC have been problematic. We describe a high yield process for isolation and in vitro culture of primary EC from mouse arteries (aorta, braches of superior mesenteric artery, and cerebral arteries from the circle of Willis). Mouse arteries were carefully dissected without damage under a light microscope, and small pieces of the vessels were transferred on/in a Matrigel matrix enriched with endothelial growth supplement. Primary cells that proliferated in Matrigel were propagated in advanced DMEM with fetal calf serum or platelet-derived serum, EC growth supplement, and heparin. To improve the purity of the cell culture, we applied shearing stress and anti-fibroblast antibody. EC were characterized by a monolayer cobble stone appearance, positive staining with acetylated low density lipoprotein labeled with 1,1'-dioctadecyl-3,3,3',3'-tetramethyl-indocarbocyanine perchlorate, RT-PCR using primers for von-Willebrand factor, and determination of the protein level endothelial nitric oxide synthase. Our simple, efficient method would facilitate in vitro functional investigations of EC from mouse vessels.
To verify in vivo viability of IVF-derived bovine embryos, morula and blastocysts that developed from in vitro matured and fertilized ova were transferred to the uteri of recipient cows and normal calves were produced. To produce IVF-derived bovine morula or blastocysts, ova matured and fertilized in vitro were cultured in culture medium for 7~8 days at 39$^{\circ}C$ under the humicified atmosphere of 5% CO2. Two different culture systems, a co-culture system with TCM-199 and bovine epithelial cells (BOEC) and CR1aa without somatic cell support, were compared. Cleavage rates to 2~8 cell stage and developmental rates of IVF-derived bovine embryos to blastocyst stage were not different between co-culture system (51.3 and 14.0%) and CR1aa medium (60.4 and 22.1%), respectively. Embryos were classified into three grades by embryo quality and then one or two embryos in higher quality(A and B grades) were transferred to the uterus of recipients. In this study Korean Native calf was first born after transfer of IVF-derived embryos. Total four live calves were normally developed to term from IVF-derived bovine blastocysts and one female fetus was still-born approximatedly 8 months of gestation, but there was no pregnancy after transfer of morula. Therefore, normal calves could be produced after transfer of IVF-derived bovine embryos cultured in CR1aa medium without somatic cell support. In addition, our results suggest that in transfer of IVF-derived bovine embryos blastocyst stage is better than morula.
The longer pollen stage grew to flowering stage, the higher anther respiratory rate in vivo became. and it was rapidly increased just before flowering. The anther respiratory rate in vitro showed the first and second peak points after 3-7 days and 9-1l days in culture, respectively, and fastest and highest in Daecheongbyeo with high sporophytic potentiality. It was lower in cold-pretreatment than non-treatment at the early days, but higher from 15 days after culture. The frequency of browning anthers was promoted by cold-pretreatment. The respiratory rate was not different between uncolored and browned anthers at 12 days, but it was higher in browned anthers after 24 days in culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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