Biocatalytic transfer of oxygen in isolated cytochrome P450 or whole microbial cells is an elegant and efficient way to achieve selective hydroxylation. Cytochrome P450 CYP105P2 was isolated from Streptomyces peucetius that showed a high degree of amino acid identity with hydroxylases. Previously performed homology modeling, and subsequent docking of the model with flavone, displayed a reasonable docked structure. Therefore, in this study, in a pursuit to hydroxylate the flavone ring, CYP105P2 was co-expressed in a two-vector system with putidaredoxin reductase (camA) and putidaredoxin (camB) from Pseudomonas putida for efficient electron transport. HPLC analysis of the isolated product, together with LC-MS analysis, showed a monohydroxylated flavone, which was further established by subsequent ESI/MS-MS. A successful 10.35% yield was achieved with the whole-cell bioconversion reaction in Escherichia coli. We verified that CYP105P2 is a potential bacterial hydroxylase.
KSII Transactions on Internet and Information Systems (TIIS)
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v.12
no.10
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pp.4930-4951
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2018
The deep learning based speech enhancement has shown considerable success. However, it still suffers performance degradation under mismatch conditions. In this paper, an adaptation method is proposed to improve the performance under noise mismatch conditions. Firstly, we advise a noise aware training by supplying identity vectors (i-vectors) as parallel input features to adapt deep neural network (DNN) acoustic models with the target noise. Secondly, given a small amount of adaptation data, the noise-dependent DNN is obtained by using $L_2$ regularization from a noise-independent DNN, and forcing the estimated masks to be close to the unadapted condition. Finally, experiments were carried out on different noise and SNR conditions, and the proposed method has achieved significantly 0.1%-9.6% benefits of STOI, and provided consistent improvement in PESQ and segSNR against the baseline systems.
As an alternative for solving the incompressible Navier-Stokes equations, we present a vorticity-based integro-differential formulation for vorticity, velocity and pressure variables. One of the most difficult problems encountered in the vorticity-based methods is the introduction of the proper value-value of vorticity or vorticity flux at the solid surface. A practical computational technique toward solving this problem is presented in connection with the coupling between the vorticity and the pressure boundary conditions. Numerical schemes based on an iterative procedure are employed to solve the governing equations with the boundary conditions for the three variables. A finite volume method is implemented to integrate the vorticity transport equation with the dynamic vorticity boundary condition . The velocity field is obtained by using the Biot-Savart integral derived from the mathematical vector identity. Green's scalar identity is used to solve the total pressure in an integral approach similar to the surface panel methods which have been well-established for potential flow analysis. The calculated results with the present mettled for two test problems are compared with data from the literature in order for its validation. The first test problem is one for the two-dimensional square cavity flow driven by shear on the top lid. Two cases are considered here: (i) one driven both by the specified non-uniform shear on the top lid and by the specified body forces acting through the cavity region, for which we find the exact solution, and (ii) one of the classical type (i.e., driven only by uniform shear). Secondly, the present mettled is applied to deal with the early development of the flow around an impulsively started circular cylinder.
Identity recognition in real environment with a reliable mode is a key issue in human computer interaction (HCI). In this paper, we present a robust person identification system considering score-based optimal reliability measure of audio-visual modalities. We propose an extension of the modified reliability function by introducing optimizing parameters for both of audio and visual modalities. For degradation of visual signals, we have applied JPEG compression to test images. In addition, for creating mismatch in between enrollment and test session, acoustic Babble noises and artificial illumination have been added to test audio and visual signals, respectively. Local PCA has been used on both modalities to reduce the dimension of feature vector. We have applied a swarm intelligence algorithm, i.e., particle swarm optimization for optimizing the modified convection function's optimizing parameters. The overall person identification experiments are performed using VidTimit DB. Experimental results show that our proposed optimal reliability measures have effectively enhanced the identification accuracy of 7.73% and 8.18% at different illumination direction to visual signal and consequent Babble noises to audio signal, respectively, in comparison with the best classifier system in the fusion system and maintained the modality reliability statistics in terms of its performance; it thus verified the consistency of the proposed extension.
The xynA gene encoding the xylanase A of Paenibacillus sp. DG-22 was isolated with a DNA probe obtained by PCR amplification, using degenerated primers deduced from the amino acid residues of the known N-terminal region of the purified enzyme and the conserved region in the family 11 xylanases. The positive clones were screened on the LB agar plates supplemented with xylan, by the Congo-red staining method. The xynA gene consists of a 630-bp open reading frame encoding a protein of 210 amino acids, and the XynA preprotein contains a 28-residues signal peptide whose cleavage yields a l82-residues mature protein of a calculated molecular weight of 20,000Da and pI value of 8.77. The cloned DNA fragment also has another ORF of 873 nucleotides that showed 76% identity to the putative transcriptional activator of Bacillus halodurans C-125. Most of the xylanase activity was found in the periplasmic space of E. coli. The xynA gene was subcloned into pQE60 expression vector to fuse with six histidine-tag. The recombinant xylanase A was purified by heating and immobilized metal affinity chromatography. The optimum pH and temperature of the purified enzyme were 6.0 and $60^{\circ}C$, respectively. This histidine-tagged xylanase A was less thermostable than the native enzyme.
A glutathione S-transferase (GST) related to the phi (F) class of enzymes only found in plants has been cloned from the Oryza sativa. The GST cDNA was cloned by PCR using oligonucleotide primers based on the OsGSTF5 (GenBank Accession No. $\underline{AF309382}$) sequences. The cDNA was composed of a 669-bp open reading frame encoding for 223 amino acids. The deduced peptide of this gene shared on overall identity of 75% with other known phi class GST sequences. On the other hands, the OsGSTF5 sequence showed only 34% identity with the sequence of the OsGSTF3 cloned by our previous study (Cho et al., 2005). This gene was expressed in Escherichia coli with the pET vector system and the gene product was purified to homogeneity by GSH-Sepharose affinity column chromatography. The expressed OsGSTF5 formed a homo-dimer composed of 28 kDa subunit and its pI value was approximately 7.8. The expressed OsGSTF5 displayed glutathione conjugation activity toward 1-chloro-2,4-dinitrobenzene and 1,2-epoxy-3-(p-nitrophenoxy)propane and glutathione peroxidase activity toward cumene hydroperoxide. The OsGSTF5 also had high activities towards the herbicides alachlor, atrazine and metolachlor. The OsGSTF5 was highly sensitive to inhibition by S-hexylGSH, benastatin A and hematin. We propose from these results that the expressed OsGSTF5 is a phi class GST and appears to play a role in the conjugation of herbicide and GPOX activity.
The Compost-decomposing-bacteria was isolated from livestock compost containing sawdust. The isolated bacteria was identified as Bacillus subtilis LYH201 by the method of the composition of the fatty acid with MIDI system and Bergey's manual. Cloning of CMCase encoding gene was accompanied by shotgun method. The pLK100 have yellow activity ring on CMC medium, that was carried 2.2 kb insert DNA in pBluescript II $SK^+$ vector, named BglC gene. The BglC was very similar to Pectobacterium carotovorum Gun_CLOAB(P15704) with score of 57% identity and 71% homology over 508 aa. The BglC was measured molecular weight 56 kDa by CMC-SDS-PAGE. Optimum cellulase activity Bacillus subtilis LYH201 was temperature $50^{\circ}C$ and pH 7.
Xiong, Ai Sheng;Yao, Quan-Hong;Peng, Ri-He;Li, Xian;Fan, Hui-Qin;Guo, Mei-Jin;Zhang, Si-Liang
BMB Reports
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v.37
no.3
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pp.282-291
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2004
Phytases catalyze the release of phosphate from phytic acid. Phytase-producing microorganisms were selected by culturing the soil extracts on agar plates containing phytic acid. Two hundred colonies that exhibited potential phytase activity were selected for further study. The colony showing the highest phytase activity was identified as Aspergillus niger and designated strain 113. The phytase gene from A. niger 113 (phyI1) was isolated, cloned, and characterized. The nucleotide and deduced amino acid sequence identity between phyI1 and phyA from NRRL3135 were 90% and 98%, respectively. The identity between phyI1 and phyA from SK-57 was 89% and 96%. A synthetic phytase gene, phyI1s, was synthesized by successive PCR and transformed into the yeast expression vector carrying a signal peptide that was designed and synthesized using P. pastoris biased codon. For the phytase expression and secretion, the construct was integrated into the genome of P. pastoris by homologous recombination. Over-expressing strains were selected and fermented. It was discovered that ~4.2 g phytase could be purified from one liter of culture fluid. The activity of the resulting phytase was 9.5 U/mg. Due to the heavy glycosylation, the expressed phytase varied in size (120, 95, 85, and 64 kDa), but could be deglycosylated to a homogeneous 64 kDa species. An enzymatic kinetics analysis showed that the phytase had two pH optima (pH 2.0 and pH 5.0) and an optimum temperature of $60^{\circ}C$.
16brio cholerne is an important pathogenic organism that causes dimhea in human beings. V ciaoleroe KNIH002 was isolated from patients suffering with dian.heal disease in Korea. From Southern hybridization using the amplified PCR product of 307 bp as a probe. which was obtained from PCR reaction using primer detecting cholera toxin gene, we have found that the c b gene located in 4.5-kb fragmenl double digested with Pstl and BgllI of the chromosome. Therefore, we made mini-libraries of the isolate using PstI and Bgm restriction endonuclease and pBluescript SKU(+) vector. As a result. we cloned 4.5-kb PstI-BglII fragment containing the c a gene encoding a cholera toxin from the constructed mini-libraries of V olzolerae KNlH002 by colony hybridization using the same probes. This recombinant plasmid was named pCTX75. E. coii XL1- Blue harboring pCTX75 showed the cytotoxicity on Chinese Hamster Ovary cells. From the sequencing of he cloned recombinant plasmid, we confinned that it has virulence gene cassette consisting of ace, zot, ctx.4 and cf"~B gene. The ace and zot genes were composed of 291 hp and 1.200 bp with ATG initiation codon and TGA lennination codon, respectively. Nucleotide sequence of the ace gene exhibited 100% identity with that of V cholera E7946 El Tor Ogawa strains. But, nucleolide and amino acid sequence comparison of the zot gene exhibited 99% and 98.8% identity with that of V cholerae 395 Classical Ogawa stram, respectively. Specially. the Ala-100, Ala-272 and Ala-281 sites of Zoi polypeptide presented in V choleme 395 Classical Ogawa strain are replaced by Val in V cholerae KNIH002.
The present study was performed to clone and express human poly (ADP-ribose) synthetase (PARS) cDNA in E coli. For these purposes, the CDNA for human poly (ADP-ribose) synthetase, encoding the entire protein, was cloned into pGEM-7Zf(+). The resulting recombinant plasmid pPARS6.1 was restriction enzyme mapped and its identity was confirmed by Southern blot analysis. The pPARS6. 1 contained full-length CDNA of human PARS and the nudeotide sequences were identical with those reported previously. The recombinant protein which migrated as a unique 120 kDa band on 10% SDS-polyacrylamide gels, was identified as PARS by Southwestern blots using nick-translated DNA probes and by activity gels and activity blots using 32 P-NAD as a substrate for poly (ADP-ribose) synthetase (PARS). The signals corresponding to 120 and 98 kDa proteins were obtained following IPTG (0.4 mM) induction of the PARS cDNA cloned into Xba I-digested pGEM-7Zf(+) vector. Nonspecific signals corresponding to 45 and 38 kDa proteins were also shown in both IPTG-induced and noninduced cells. The nonspecific proteins may be products of incomplete translation or proteolytic products of intact PARS.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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