Kim, Su-Ryun;Park, Hyun-Joo;Bae, Soo-Kyung;Park, Ji-Hyun;Kim, Hyo-Sun;Koo, Tae-Hyeon;Bae, Moon-Kyoung
International Journal of Oral Biology
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v.33
no.4
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pp.149-154
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2008
Porphyromonas gingivalis, a major periodontal pathogen, has been implicated in the initiation and progression of periodontal disease. Endothelial dysfunction (Editor note: Aberrant and dysfunction are somewhat redundant. The authors may want to choose one or the other.) contributes to chronic periodontal inflammation. Using cDNA-representational difference analysis, we found that P.gingivalis lipopolysaccharide differentially induces a number of genes in human microvascular endothelial cells. Among these upregulated genes, we focused on intercellular adhesion molecule-1 (VCAM-1), which is crucial for leukocyte recruitment during vascular inflammation. P. gingivalis LPS significantly increased the expression of vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) as well as ICAM-1. Promoter assays revealed that the transcription of these cell adhesion molecules was mainly regulated by nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$) in endothelial cells. Furthermore, P. gingivalis LPS significantly increased leukocyte adhesiveness to microvascular endothelial cells and to aortic endothelium. Taken together, our results demonstrate that P. gingivalis LPS activates microvascular endothelial cells through NF-${\kappa}B$-dependent expression of cell adhesion molecules.
Changes in the Activities of several antioxidant enzymes in transformed human dermal microvascular endothelial Cells (HMEC-1) by infection with the obligate intracellular bacterium Orientia tsutsugamushi, the causative agent of scrub typhus, were investigated. The activities of glucose-6-phosphate dehydrogenase, catalase, and glutathione peroxidase were significantly decreased in HMEC-1 cells infected with Ο. tsutsugamushi. However, the level of superoxide dismutase increased slightly. Furthermore, Increased levels of intracellular peroxide was observed in HMEC-1 during infection. These results support the hypothesis that cells infected by this intracellular bacterium experience oxidant-mediated injury that may eventually contribute to cell death.
Transcripts levels of superoxide dismutases increase slightly following infection of human dermal microvascular endothelial cells(HMEC-1) by the obligae intracellular bacterium Orientia tsutsugamushi, the causative agent of scrub typhus. In addition, fluorescence-activated cell sorter analysis demonstrates significant intracellular peroxide activity in infected cells within 5 hr after exposure to O. tsutsugamushi. Furthermore, infected cells experienced a significant depletion of glutathiones. These results support hypothesis that cells infected by this intracellular bacterium experience oxidant-mediated injury.
The GroEL heat-shock protein from Fusobacterium nucleatum, a periodontopathogen, activates risk factors for atherosclerosis in human microvascular endothelial cells (HMEC-1) and ApoE-/- mice. In this study, we analyzed the signaling pathways by which F. nucleatum GroEL induces the proinflammatory factors in HMEC-1 cells known to be risk factors associated with the development of atherosclerosis and identified the cellular receptor used by GroEL. The MAPK and NF-${\kappa}B$ signaling pathways were found to be activated by GroEL to induce the expression of interleukin-8 (IL-8), monocyte chemoattractant protein 1 (MCP-1), intercellular adhesion molecule 1 (ICAM-1), vascular cell adhesion molecule 1 (VCAM-1), E-selectin, and tissue factor (TF). These effects were inhibited by a TLR4 knockdown. Our results thus indicate that TLR4 is a key receptor that mediates the interaction of F. nucleatum GroEL with HMEC-1 cells and subsequently induces an inflammatory response via the MAPK and NF-${\kappa}B$ pathways.
The purpose of this study was to investigate the modification of expression and functionality of the drug transporter P-glycoprotein (P-gp) by tumor necrosis factor-alpha (TNF-${\alpha}$) and interferon-gamma (IFN-${\gamma}$) at the blood-brain barrier (BBB). We used immortalized human brain microvessel endothelial cells (iHBMEC) and primary human brain microvessel endothelial cells (pHBMEC) as in vitro BBB model. To investigate the change of p-gp expression, we carried out real time PCR analysis and Western blotting. To test the change of p-gp activity, we performed rhodamin123 (Rh123) accumulation study in the cells. In results of real time PCR analysis, the P-gp mRNA expression was increased by TNF-${\alpha}$ or IFN-${\gamma}$ treatment for 24 hr in both cell types. However, 48 hr treatment of TNF-${\alpha}$ or IFN-${\gamma}$ did not affect P-gp mRNA expression. In addition, co-treatment of TNF-${\alpha}$ and IFN-${\gamma}$ markedly increased the P-gp mRNA expression in both cells. TNF-${\alpha}$ or IFN-${\gamma}$ did not influence P-gp protein expression whatever the concentration of cytokines or duration of treatment in both cells. However, P-gp expression was increased after treatments of both cytokines together in iHBMEC cells only compared with untreated control. Furthermore, in both cell lines, TNF-${\alpha}$ or IFN-${\gamma}$ induced significant decrease of P-gp activity for 24 hr treatment. And, both cytokines combination treatment also decreased significantly P-gp activity. These results suggest that P-gp expression and function at the BBB is modulated by TNF-${\alpha}$ or/and IFN-${\gamma}$. Therefore, the distribution of P-gp depending drugs in the central nervous system can be modulated by neurological inflammatory diseases.
Endothelial cells play a key role in pathological processes such as cancer cell metastasis, atherosclerosis, and diabetic retinopathy. Vascular smooth muscle cells directly involve in the formation of atheroma in atherosclerosis. Some kinds of the endothelial cells are simply harvested from the umbilical veins, the tunica intima of aortic walls, the retina using various enzymes solutions. Those purely isolated cells provide a powerful tool in vitro studies of the endothelial cell related diseases. In this context, the cultured smooth muscle cells after the isolation from the tunica media of aortic walls are also used for elucidating the pathogenesis of atherosclerosis. Here, I briefly introduce articles that include the isolation of human umbilical vein endothelial cells(HUVEC), aortic endothelial and smooth muscle cells, retinal microvascular endothelial cells(RMEC), as well as the diseases' applications of these cells.
A variety of experiments of endothelial cell seeding onto artificial vessels have been performed. To improve endothelialization, one or two components of the extracellular matrix (ECM) have been used as an underlying matrix. In this study, the whole ECM excreted from fibroblasts was used as an underlying matrix. Fetal human fibroblasts were cultured on a polyurethane (PU) sheet. After a conflu; ence was attained, the cytoskeleton and the nuclei of the fibroblast were destroyed using Triton-X. Mitomycin, or irradiation. Omental microvascular endothelial cells from adult human were seeded onto various substrates. After 12 days in culture, the cells were counted. It was observed that the ECM treated by irradiation had the highest cell number. In addition, the cells on this substrate exhibited the most typical endothelial cell morphology. For preliminary animal experiments the PU vessels (inner diameter, 1.5mm) coated with ECM were implanted in the infrarena] abdominal aorta of rat. After the vessels had been implanted for 5 weeks, it was found that the surface of the PU vessels was completely covered with endothelia] cells. In conclusion, we can state that the fibroblast-derived whole ECM makes a better underlying substrate for the endothelialization of small diameter artificial vessels.
Kirkpatrick C. James;Fuchs Sabine;Motta Antonella;Santos Marina;Hermanns M. Iris;Unger Ronald E.;Reis Rui;Migliaresi Claudio
Proceedings of the Polymer Society of Korea Conference
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2006.10a
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pp.46-47
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2006
Vascularization is essential for success in regenerative medicine. We have developed in vitro models to study how human microvascular endothelial cells (EC) and endothelial progenitor cells (EPC) colonize polymer scaffolds and express the endothelial phenotype, including angiogenesis. Examples are given of supportive growth and differeniation of EC on microfibre meshes of the silk protein fibroin and blends of starch with poly(epsilon-caprolactone), phenotypic markers being studied at both protein and mRNA level. Experimental models are also shown and concepts discussed to investigate how the stem cell niche, including that responsible for vascularization could be targeted, for example, by using engineered biodegradable polymer nanoparticles.
Cilostazol is known to be a selective inhibitor of phosphodiesterase III and is generally used to treat stroke. Our previous findings showed that cilostazol enhanced capillary density through angiogenesis after focal cerebral ischemia. Angiogenesis is an important physiological process for promoting revascularization to overcome tissue ischemia. It is a multistep process consisting of endothelial cell proliferation, migration, and tubular structure formation. Here, we examined the modulatory effect of cilostazol at each step of the angiogenic mechanism by using human brain microvascular endothelial cells (HBMECs). We found that cilostazol increased the migration of HBMECs in a dose-dependent manner. However, it did not enhance HBMEC proliferation and capillary-like tube formation. We used a cDNA microarray to analyze the mechanisms of cilostazol in cell migration. We picked five candidate genes that were potentially related to cell migration, and we confirmed the gene expression levels by real-time PCR. The genes phosphoserine aminotransferase 1 (PSAT1) and CCAAT/enhancer binding protein ${\beta}$ ($C/EBP{\beta}$) were up-regulated. The genes tissue factor pathway inhibitor 2 (TFPI2), retinoic acid receptor responder 1 (RARRES1), and RARRES3 were down-regulated. Our observations suggest that cilostazol can promote angiogenesis by promoting endothelial migration. Understanding the cilostazol-modulated regulatory mechanisms in brain endothelial cells may help stimulate blood vessel formation for the treatment of ischemic diseases.
Resveratrol, a phytoalexin, is reported to activate AMP-activated protein kinase (AMPK) in vascular cells. The blood-brain barrier (BBB), formed by specialized brain endothelial cells that are interconnected by tight junctions, strictly regulates paracellular permeability to maintain an optimal extracellular environment for brain homeostasis. The aim of this study was to elucidate the effects of resveratrol and the role of AMPK in BBB dysfunction induced by lipopolysaccharide (LPS). Exposure of human brain microvascular endothelial cells (HBMECs) to LPS ($1{\mu}g/ml$) for 4 to 24 hours week dramatically increased the permeability of the BBB in parallel with lowered expression levels of occluding and claudin-5, which are essential to maintain tight junctions in HBMECs. In addition, LPS significantly increased the reactive oxygen species (ROS) productions. All effects induced by LPS in HBVMCs were reversed by adenoviral overexpression of superoxide dismutase, inhibition of NAD(P) H oxidase by apocynin or gain-function of AMPK by adenoviral overexpression of constitutively active mutant (AMPK-CA) or by resveratrol. Finally, upregulation of AMPK by either AMPK-CA or resveratrol abolished the levels of LPS-enhanced NAD(P)H oxidase subunits protein expressions. We conclude that AMPK activation by resveratrol improves the integrity of the BBB disrupted by LPS through suppressing the induction of NAD(P)H oxidase-derived ROS in HBMECs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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