Objective: Owing to the public availability of complete genome sequences, including avian species, massive bioinformatics analyses may be conducted for computational gene prediction and the identification of gene regulatory networks through various informatics tools. However, to evaluate the biofunctional activity of a predicted target gene, in vivo and in vitro functional genomic analyses should be a prerequisite. Methods: Due to a lack of quail genomic sequence information, we first identified the partial genomic structure and sequences of the quail SH3 domain containing ring finger 2 (SH3RF2) gene. Subsequently, SH3RF2 was knocked out using clustered regularly interspaced short palindromic repeat/Cas9 technology and single cell-derived SH3RF2 mutant sublines were established to study the biofunctional activity of SH3RF2 in quail myoblast (QM7) cells during muscle differentiation. Results: Through a T7 endonuclease I assay and genotyping analysis, we established an SH3RF2 knockout (KO) QM7#4 subline with 61 and 155 nucleotide deletion mutations in SH3RF2. After the induction of myotube differentiation, the expression profiles were analyzed and compared between regular QM7 and SH3RF2 KO QM7#4 cells by global RNA sequencing and bioinformatics analysis. Conclusion: We did not detect any statistically significant role of SH3RF2 during myotube differentiation in QM7 myoblast cells. However, additional experiments are necessary to examine the biofunctional activity of SH3RF2 in cell proliferation and muscle growth.
The loss of green coloration via chlorophyll (Chl) degradation typically occurs during leaf senescence. To date, many Chl catabolic enzymes have been identified and shown to interact with light harvesting complex II to form a Chl degradation complex in senescing chloroplasts; this complex might metabolically channel phototoxic Chl catabolic intermediates to prevent oxidative damage to cells. The Chl catabolic enzyme 7-hydroxymethyl Chl a reductase (HCAR) converts 7-hydroxymethyl Chl a (7-HMC a) to Chl a. The rice (Oryza sativa) genome contains a single HCAR homolog (OsHCAR), but its exact role remains unknown. Here, we show that an oshcar knockout mutant exhibits persistent green leaves during both dark-induced and natural senescence, and accumulates 7-HMC a and pheophorbide a (Pheo a) in green leaf blades. Interestingly, both rice and Arabidopsis hcar mutants exhibit severe cell death at the vegetative stage; this cell death largely occurs in a light intensity-dependent manner. In addition, 7-HMC a treatment led to the generation of singlet oxygen ($^1O_2$) in Arabidopsis and rice protoplasts in the light. Under herbicide-induced oxidative stress conditions, leaf necrosis was more severe in hcar plants than in wild type, and HCAR-overexpressing plants were more tolerant to reactive oxygen species than wild type. Therefore, in addition to functioning in the conversion of 7-HMC a to Chl a in senescent leaves, HCAR may play a critical role in protecting plants from high light-induced damage by preventing the accumulation of 7-HMC a and Pheo a in developing and mature leaves at the vegetative stage.
To identify genes involved in the decolorization of both crystal violet and malachite green, we isolated random mutants generated by transposon insertion in triphenylmethane-decolorizing bacterium, Citrobacter sp. The resulting mutant bank yielded 14 mutants with complete defect in color removal capability of both crystal violet and malachite green. Southern hybridization with a Tn5 fragment as a probe showed a single hybridized band in 5 mutants and these mutants appeared to have insertions at different sites of the chromosome. Tn5-inserted genes were isolated and the DNA sequence flanking Tn5 was determined. From comparison with a sequence database, putative protein products encoded by cmg genes were identified as follows. cmg 2 is MaIC protein in maltose transport system; cmg 6 is transcriptional regulator (LysR-type): cmg 12 is a putative oxidoreductase. The sequences deduced from two cmg genes, cmg 8 and cmg 11, showed no significant similarity to any protein with a known function. Therefore, these results indicate that these two cmg genes encode unidentified proteins responsible for decolorization of both crystal violet and malachite green.
Cytological investigation was done on a tetraploid tree of Robinia pseudoacacia L. selected in the planted forest in Chilbo Mountain. From the results of observation of chromosomes on mitotic metaphase in leaves, it was confirmed that the mutant is tetraploid plant (2n=40). The external form of leaves of the spontaneous tetraploid was gigantic and dark green one in comparison with diploid. There was no difference in the size of guard cell and the number of stomata per unit area between the mutant and the diploid plant, however, length and thickness of wood fiber were increased as compared with that of diploid. The spontaneous gigas tetraploid showed growth performance as much as the colchicine induced gigas tetraploid.
Shirazy, Najmeh Hadizadeh;Ranjbar, Bijan;Hosseinkhani, Saman;Khalifeh, Khosrow;Madvar, Ali Riahi;Naderi-Manesh, Hossein
BMB Reports
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v.40
no.4
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pp.453-458
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2007
Bacterial luciferase is a heterodimeric enzyme, which catalyzes the light emission reaction, utilizing reduced FMN (FMNH2), a long chain aliphatic aldehyde and $O_2$, to produce green-blue light. This enzyme can be readily classed as slow or fast decay based on their rate of luminescence decay in a single turnover. Mutation of Glu175 in $\alpha$ subunit to Gly converted slow decay Xenorhabdus Luminescence luciferase to fast decay one. The following studies revealed that changing the luciferase flexibility and lake of Glu-flavin interactions are responsible for the unusual kinetic properties of mutant enzyme. Optical and thermodynamics studies have caused a decrease in free energy and anisotropy of mutant enzyme. Moreover, the role of Glu175 in transition state of folding pathway by use of stopped-flow fluorescence technique has been studied which suggesting that Glu175 is not involved in transition state of folding and appears as surface residue of the nucleus or as a member of one of a few alternative folding nuclei. These results suggest that mutation of Glu175 to Gly extended the structure of Xenorhabdus Luminescence luciferase, locally.
Low efficiency in microalgal biomass production was largely attributed to the low density of algal cell cultures. Though mutations that reduced the level of chlorophyll or pigment content increased efficiency of photon usage and thus the cell-culture density under high-illumination growth conditions (e.g., >$500{\mu}mol\;photon\;m^{-2}\;s^{-1}$), it was unclear whether algae could increase cell-culture density under low-illumination conditions (e.g., ${\sim}50{\mu}mol\;photon\;m^{-2}\;s^{-1}$). To address this question, we performed forward genetic screening in Chlamydomonas reinhardtii. A pool of >1,000 insertional mutants was constructed and subjected to continuous subcultures in shaking flasks under low-illumination conditions. Complexity of restriction fragment length polymorphism (RFLP) pattern in cultures indicated the degree of heterogeneity of mutant populations. We showed that the levels of RFLP complexity decreased when cycles of subculture increased, suggesting that cultures were gradually populated by high cell-culture density (HCD) strains. Analysis of the 3 isolated HCD mutants after 30 cycles of subcultures confirmed that their maximal biomass production was 50-100% higher than that of wild type under low-illumination. Furthermore, levels of chlorophyll content in HCD mutant strains were similar to that of wild type. Inverse polymerase chain reaction analysis identified the locus of insertion in two of three HCD strains. Molecular and transcriptomic analyses suggested that two HCD mutants were a result of the gain-of-function phenotype, both linking to the abnormality of mitochondrial functions. Taken together, our results demonstrate that HCD strains can be obtained through continuous subcultures under low illumination conditions.
A bacterial artificial chromosome library of Pectobacterium carotovorum 35 was constructed to characterize the genome and to sequence its hrp region. The hrp cluster of P. carotovorum 35 consisted of 26 open reading frames in five operons. A promoter-based green fluorescent protein technology was used to identify the genes regulated by the alternative sigma factor, HrpL, in P. carotovorum 35. The majority of the selected clones contained the hrpJ operon promoter sequence, which harbors a hrp box, but no putative hrp boxes were detected within the promoter sequences of two other hrpL-regulated genes encoding for pectate lyase and large repetitive protein. Although the promoters of five other hrp operons also contained hrp boxes, their expression was not HrpL-dependent in the promoter-based selection in E. coli. However, transcriptional analysis showed that expression from all operons harboring hrp boxes, except for the hrpN operon, was reduced significantly in the hrpL mutant. The severity of soft-rot symptoms when the hrpL mutant was applied to the surface of tobacco leaves, mimicking natural infection, was greatly attenuated. These results indicate that the hrpL gene of P. carotovorum 35 may be involved in the development of soft-rot symptoms.
An increase in seawater temperature owing to global warming is expected to substantially limit the growth of marine algae, including Pyropia yezoensis, a commercially valuable red alga. To improve our knowledge of the genes involved in the acquisition of heat tolerance in P. yezoensis, transcriptomes sequences were obtained from both the wild-type SG104 P. yezoensis and heat-tolerant mutant Gy500. We selected 1,251 differentially expressed genes that were up- or downregulated in response to the heat stress condition and in the heat-tolerant mutant Gy500, based on fragment per million reads expression values. Among them, PyHRG1 was downregulated under heat stress in SG104 and expressed at a low level in Gy500. PyHRG1 encodes a secretory protein of 26.5 kDa. PyHRG1 shows no significant sequence homology with any known genes deposited in public databases to date. However, PyHRG1 homologs were found in other red algae, including other Pyropia species. When PyHRG1 was introduced into the single-cell green alga Chlamydomonas reinhardtii, transformed cells overexpressing PyHRG1 showed severely retarded growth. These results demonstrate that PyHRG1 encodes a novel red algae-specific protein and plays a role in heat tolerance in algae. The transcriptome sequences obtained in this study, which include PyHRG1, will facilitate future studies to understand the molecular mechanisms involved in heat tolerance in red algae.
Chlorella vulgaris was isolated from the Nile River, Qalubia Governorate, Egypt, for possible use in biodiesel production. BG-II nutrient growth media was used for isolation and laboratory growth. Identification was performed via 18S rRNA gene amplification, followed by sequencing. The alga was exposed to UV-C (254 nm) for 15, 30, and 45 s to improve dry weight accumulation and to increase the oil production. Daily measurements of dry weight ($g{\cdot}l^{-1}$) were performed; oil content and volumetric lipid productivity were also determined. UV-C exposure led to an increase in the volumetric lipid productivity by 27, 27.3, and $32.4mg{\cdot}l^{-1}{\cdot}d^{-1}$ with 15, 30, and 45 s, respectively, as compared with the control, which resulted in $18mg{\cdot}l^{-1}{\cdot}d^{-1}$. Of the examined mutants, the one with the highest productivity was re-irradiated by UV-C (254 nm) for 15, 30, 45, and 60 s. For 15 s of exposure time, the oil content increased to 34%, while it was 31% at 30 s; further, it decreased to 22% at 45 and 60 s exposures. The fatty acid methyl ester profile was 82.22% in the first mutant at 45 s, compared with the wild strain that contained a total of 66.01% of FAs. Furthermore, the highest levels of polyunsaturated fatty acid methyl ester were observed in the mutant exposed for 45 s, and it reached 11.41%, which reduced the cetane number to 71.3.
Previously we demonstrated that virus-inducible stress protein (VISP) is induced in fish cells by the infection of a fish rhabdovirus. In this paper, we investigated the subcellular localization of the VISP and determined the region of VISP responsible for the subcellular localization. The CHSE-214 cells were stained with monoclonal antibody raised against VISP and observed with confocal microscope to detect the endogenous VISP. The results showed that the VISP localizes to the perinuclear region as spots. A plasmid expressing VISP fused to enhanced green fluorescent protein (EGFP) was constructed. The transient expression of full-length VISP fused to EGFP in CHSE-214 cells confirmed the spot formation of the VISP at perinuclear region. To determine the region responsible for the perinuclear localization of the VISP, we constructed a series of deletion mutants and, by using these deletion mutants, we found that C-terminal region of the VISP (aa 612-710) is essential for the perinuclear distribution of VISP and that this region contained nuclear receptor binding motif (691-TLTSLLL-697). Our results suggest that VISP localizes to the perinuclear region and C-terminal regions are important for this localization. Further studies on the role of the perinuclear localization of VISP in IHNV growth mali reveal the novel mechanism of IHNV pathogenecity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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