Although it is known that neuronal cell death during development occurs by apoptosis, the mechanisms underlying excitatory amino acid-induced neuronal cell death remain poorly understood. In this study we have examined the mechanism by which L-glutamate, an excitatory amino acid neurotransmitter, induces cell death in PC12 cell lines. To characterize cell death, we employed sandwich enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) method for cellular DNA fragmentation, DNA agarose gel electrophoresis and chromatin staining by acridine orange and ethidium bromide after treating the PC12 cells with L-glutamate. L-Glutamate caused dose-dependent cell death with a maximum at 24 hrs after the treatment. These cellular fragmentation was blocked by pretreatment of MK-801, a noncompetitive N-methyl-D-aspartic acid(NMDA) receptor antagonist, and nerve growth factor(NGF). Analysis of DNA integrity from L-glutamate-treated cells revealed cleavage of DNA into regular sized fragments, a biochemical hallmark of apoptosis. The PC12 cells that were induced to die by L-glutamate treatment exhibited classical chromatin condensation under the light microscopy after acridine orange and ethidium bromide staining. These results suggest that apoptosis is one of the key features that are involved in L-glutamate-induced excitotoxic cell death in PC12 cells, and these cell death are mediated by NMDA receptor and depend on NGF.
Antioxidative and protective effects of Ulmus davidiana var. japonica against oxidative damages induced by glutamate in PC 12 cells were investigated. Inhibitory activity against $FeSO_{4}-H_{2}O_{2}$-induced oxidative stress and DPPH radical-scavenging activity were detected in ethyl acetate and butanol fractions of ethanol extracts from stems and roots. Ethyl acetate and butanol fractions of ethanol extracts from roots significantly inhibited glutamate-induced cytotoxicity and reactive oxygen species in PC 12 cells. These results demonstrate ethyl acetate and butanol fractions of ethanol extracts of U. davidiana var. japonica have potent protective effect against glutamate-induced oxidative stress.
Objective: Glutamate is a key excitatory neurotransmitter in the brain, and its excessive release plays a key role in the development of neuronal injury. In order to define the effect of nimodipine on glutamate release, we monitored extracellular glutamate release in real-time in a global ischemia rat model with eleven vessel occlusion. Methods: Twelve rats were randomly divided into two groups: the ischemia group and the nimodipine treatment group. The changes of extracellular glutamate level were measured using microdialysis amperometric biosensor, in coincident with cerebral blood flow (CBF) and electroencephalogram. Nimodipine (0.025 ${\mu}g$/100 gm/min) was infused into lateral to the CBF probe, during the ischemic period. Also, we performed Nissl staining method to assess the neuroprotective effect of nimodipine. Results: During the ischemic period, the mean maximum change in glutamate concentration was $133.22{\pm}2.57\;{\mu}M$ in the ischemia group and $75.42{\pm}4.22\;{\mu}M$ (p<0.001) in the group treated with nimodipine. The total amount of glutamate released was significantly different (P<0.001) between groups during the ischemic period. The %cell viability in hippocampus was $47.50{\pm}5.64$ (p<0.005) in ischemia group, compared with sham group. But, the %cell viability in nimodipine treatment group was $95.46{\pm}6.60$ in hippocampus (p<0.005). Conclusion: From the real-time monitoring and Nissl staining results, we suggest that the nimodipine treatment is responsible for the protection of the neuronal cell death through the suppression of extracellular glutamate release in the 11-VO global ischemia model of rat.
During operations, neurosurgeons usually perform multiple temporary occlusions of parental artery, possibly resulting in the neuronal damage. It is generally thought that neuronal damage by cerebral ischemia is associated with extracellular concentrations of the excitatory amino acids. In this study, we measured the dynamics of extracellular glutamate release in 11 vessel occlusion(VO) model to compare between single occlusion and repeated transient occlusions within short interval. Changes in cerebral blood flow were monitored by laser-Doppler flowmetry simultaneously with cortical glutamate level measured by amperometric biosensor. From real time monitoring of glutamate release in 11 VO model, the change of extracellular glutamate level in repeated transient occlusion group was smaller than that of single occlusion group, and the onset time of glutamate release in the second ischemic episode of repeated occlusion group was delayed compared to the first ischemic episode which was similar to that of single 10 min ischemic episode. These results suggested that repeated transient occlusion induces less glutamate release from neuronal cell than single occlusion, and the delayed onset time of glutamate release is attributed to endogeneous protective mechanism of ischemic tolerance.
Rubio, Maria D.;Drummond, Jana B.;Meador-Woodruff, James H.
Biomolecules & Therapeutics
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v.20
no.1
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pp.1-18
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2012
Schizophrenia is a devastating psychiatric illness that afflicts 1% of the population worldwide, resulting in substantial impact to patients, their families, and health care delivery systems. For many years, schizophrenia has been felt to be associated with dysregulated dopaminergic neurotransmission as a key feature of the pathophysiology of the illness. Although numerous studies point to dopaminergic abnormalities in schizophrenia, dopamine dysfunction cannot completely account for all of the symptoms seen in schizophrenia, and dopamine-based treatments are often inadequate and can be associated with serious side effects. More recently, converging lines of evidence have suggested that there are abnormalities of glutamate transmission in schizophrenia. Glutamatergic neurotransmission involves numerous molecules that facilitate glutamate release, receptor activation, glutamate reuptake, and other synaptic activities. Evidence for glutamatergic abnormalities in schizophrenia primarily has implicated the NMDA and AMPA subtypes of the glutamate receptor. The expression of these receptors and other molecules associated with glutamate neurotransmission has been systematically studied in the brain in schizophrenia. These studies have generally revealed region- and molecule-specifi c changes in glutamate receptor transcript and protein expression in this illness. Given that glutamatergic neurotransmission has been implicated in the pathophysiology of schizophrenia, recent drug development efforts have targeted the glutamate system. Much effort to date has focused on modulation of the NMDA receptor, although more recently other glutamate receptors and transporters have been the targets of drug development. These efforts have been promising thus far, and ongoing efforts to develop additional drugs that modulate glutamatergic neurotransmission are underway that may hold the potential for novel classes of more effective treatments for this serious psychiatric illness.
Eupafolin, a constituent of the aerial parts of Phyla nodiflora, has neuroprotective property. Because reducing the synaptic release of glutamate is crucial to achieving pharmacotherapeutic effects of neuroprotectants, we investigated the effect of eupafolin on glutamate release in rat cerebrocortical synaptosomes and explored the possible mechanism. We discovered that eupafolin depressed 4-aminopyridine (4-AP)-induced glutamate release, and this phenomenon was prevented in the absence of extracellular calcium. Eupafolin inhibition of glutamate release from synaptic vesicles was confirmed through measurement of the release of the fluorescent dye FM 1-43. Eupafolin decreased 4-AP-induced [Ca2+]i elevation and had no effect on synaptosomal membrane potential. The inhibition of P/Q-type Ca2+ channels reduced the decrease in glutamate release that was caused by eupafolin, and docking data revealed that eupafolin interacted with P/Q-type Ca2+ channels. Additionally, the inhibition of calcium/calmodulin-dependent protein kinase II (CaMKII) prevented the effect of eupafolin on evoked glutamate release. Eupafolin also reduced the 4-AP-induced activation of CaMK II and the subsequent phosphorylation of synapsin I, which is the main presynaptic target of CaMKII. Therefore, eupafolin suppresses P/Q-type Ca2+ channels and thereby inhibits CaMKII/synapsin I pathways and the release of glutamate from rat cerebrocortical synaptosomes.
Taurine (2-aminoethanesulfonic acid), one of bioactive amino acid in the mammalian brain, is known to exert inhibitory effects on neurons via GABA receptor. In the present study, we examined effects of taurine on glutamateinduced neurotoxicity on hippocampal neuron cell culture using cell counting method and lactate dehydrogenase (LDH) assay. After 10 d of culture, cells were stimulated with appropriate drugs. Only 43% of cultured neuronal cells survived at one day after stimulation with 500 uM L-glutamate for 10 min. Survival rate was enhanced by 82% in the presence of 10 mM taurine. LDH activity from the culture supernatant incubated with a combination of L-glutamate and taurine was less than half of that with L-glutamate alone. In the next series of experiments, interleukin-6 (IL-6) mRNA expression in cultured astrocytes was investigated using reverse tanscription-PCR (RT-PCR). IL-6 mRNA was detected in the astrocytes stimulated with L-glutamate in a dose-dependent manner, while not detected in the unstimulated control astrocytes. The expression of IL-6 mRNA caused by 10 mM glutamate was inhibited by taurine, but not by GABA. These findings demonstrated a neuroprotective action of taurine against glutamate-induced toxicity.
The methanolic extract of Rhus verniciflua Stokes (RVS-T) and its fractions (RVS-H, RVS-C, RVS-E and RVS-B) showed significant neuroprotective activity against glutamate-induced toxicity in primary cultures of rat cortical cells. RVS-B, which showed the most potent neuroprotective activity, was further fractionated to yield RVS-B5. Treatment of cortical cells with the RVS-T, RVS-B and RVS-B5 reduced the cellular ROS level and restored the reduced activities of glutathione reductase and SOD induced by glutamate. Although, the activity of glutathione peroxidase was not virtually changed by glutamate, RVS-B5 increased the glutathione peroxidase activity. In addition, these three tested fractions significantly restored the content of GSH which was decreased by glutamate insult in our cultures. Taken together, it could be postulated that RVS extract, in particular its fraction RVS-B5, protected neuronal cells against glutamate-induced neurotoxicity through acting on the antioxidative defense system.
The effects of ammonium ion and glutamate on CO2 fixation abilities and related carbon metabolism were investigated in pea (Pisum sativum L. cv. Sparkle) leaf discs under conditions favoring photorespiration (21% O2, 0.03% CO2) and nonphotorespiration (5% O2, 0.03% CO2). A concentration of more than 10 mM of NH4+ decreased the photosynthetic CO2 fixation and those inhibitory effects were more remarkable in 21% O2 than in 5% O2 conditions. The effect of glutamate on CO2 fixation was found to be independent of the O2 level, as glutamate increased the CO2 fixation under both 21% and 5% O2 conditions. L-methionine-dl-sulfoximine, an irreversible inhibitor of glutamate synthetase, however, inhibited the CO2 fixation markedly under 21% O2, but did not affect it under 5% O2 conditions. The treatment with NH4+ elevated the relative amounts of 14C incorporated into soluble components from 14CO2 with no relation to O2 levels, while glutamate increased 14C into insoluble components and neutral sugars. Glutamate, especially, seemed to stmulate the biosynthesis of starch under 5% O2 condition. These results indicated that NH4+ stimulated the degradation of sugar or starch and this proposal was confirmed by the increasing of pyruvate kinase activity in leaf discs treated with ammonium ion.
Cerebellar granule and glial cells prepared from 7 day-old rat pups were used to investigate the effects of sub-acute nicotine exposure on the glutamatergic nervous system. These cells were exposed to nicotine in various concentrations for 2 to 10 days in situ. Nicotine-exposure did not result in any changes in cerebellar granule and glial cell viability at concentrations of up to 500 $\mu\textrm{M}$. In cerebellar granule cells, the basal extracellular levels of glutamate, aspartate and glycine were enhanced in the nicotine-exposed granule cells. In addition, the responses of N-methyl-D-aspartate (NMDA)-induced glutamate release were enhanced at low NMDA concentrations in the nicotine-exposed granule cells. However, this decreased at higher NMDA concentrations. The glutaminase activity was increased after nicotine exposure. In cerebellar glial cells, glutamate uptake in the nicotine-exposed glial cells were either increased at low nicotine exposure levels or decreased at higher levels. The inhibition of glutamate uptake by L-trans-pyrollidine-2,4-dicarboxylic acid (PDC) was lower in glial cells exposed to 50 $\mu\textrm{M}$ nicotine. Glutamine synthetase activity was lower in glial cells exposed to 100 or 500 $\mu\textrm{M}$ of nicotine. These results indicate that the properties of cerebellar granule and glial cells may alter after subacute nicotine exposure. Furthermore, they suggest that nicotine exposure during development may modulate glutamatergic nervous activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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