An investigation was carried out to study the microbial colonization and degradation of five crop residues, viz., sago waste, rice straw, oil palm trunk shavings, untreated palm press fibre and palm press fibre teated with 3% ammonium hydroxide in the rumen of goats. Colonisation by rumen bacteria and fungi was already established on all the five crop residues 8 h after incubation. However, the extent of colonization varied among the crop residues. Microbial colonization was poor on palm press fibre (treated and untreated) but more extensive on sago waste, oil palm trunk shavings and rice straw. By 24 h, most of the soft-walled tissues in sago waste, rice straw and oil palm trunk shavings were degraded leaving the thick-walled tissues extensively colonized by bacteria and fungi. Degradation on palm press fibre was still limited. At 48 h, the thick-walled tissues of sago waste, oil palm trunk shavings and rice straw showed various degrees of degradation - from small erosion zones to large digested areas. Bacterial growth was similar to that at 24 h but fungal growth was less. On palm press fibre, microbial colonization was more extensive than at 24 h but degradation of the fibres was still limited. Degradation of all the five crop residues at 72 h was somewhat similar to that at 48 h. Overall, microbial colonization and degradation were the most extensive on sago waste, followed by rice straw and oil palm trunk shavings, and the least on palm press fibre (treated and untreated). Dry matter loss of the five crop residues at the various incubation periods also showed the same order of degradation.
Anaerobic chytridiomycete fungi are now well recognized as one of the major components of rumen microflora. Since the discovery of anaerobic fungi, the knowledge upon their morphology and physiology has been accumulated. It is certain that they gave roles in ruminal fiber digestion, although their quantitative contribution to rumen digestion is still unclear. Their role in fiber digestion is complicated by the dietary factors and the interaction with other microorganisms. We aim at reviewing such information in this article. Considerable attention gas been paid to the polysaccharidase of these fungi. Analysis on the fungal genes encoding these enzymes has been performed in several laboratories. This article also covers the genetical analysis of fungal polysaccharidases.
Biodegradation of endocrine-disrupting bisphenol A was investigated with several white rot fungi (Irpex lacteus, Trametes versicolor, Ganoderma lucidum, Polyporellus brumalis, Pleurotus eryngii, Schizophyllum commune) isolated in Korea and two transformants of T. versicolor (strains MrP 1 and MrP 13). I. lacteus degraded 99.4% of 50 mg/l bisphenol A in 3 h incubation and 100% in 12 h incubation. which was the highest degradation rate among the fungal strains tested. T. versicolor degraded 98.2% of 50 mg/l bisphenol A in 12 h incubation. Unexpectedly, the transformant of the Mn-repressed peroxidase gene of T. versicolor, strain MrP 1, degraded 76.5% of 50 mg/l bisphenol A in 12 h incubation, which was a lower degradation rate than wild-type T. versicolor. The removal of bisphenol A by I. lacteus occurred mainly by biodegradation rather than adsorption. Optimum carbon sources for biodegradation of bisphenol A by I. lacteus were glucose and starch, and optimum nitrogen sources were yeast extract and tryptone in a minimal salts medium; however, bisphenol A degradation was higher in nutrient-rich YMG medium than that in a minimal salts medium. The initial degradation of endocrine disruptors was accompanied by the activities of manganese peroxidase and laccase in the culture of I. lacteus.
White rot fungi have been useful source of enzymes for the degradation of environmental pollutants including polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) and synthetic dyes. PAHs are widespread organic compounds present in fossil fuels and are routinely generated by incomplete fuel combustion. PAHs are some of the major toxic pollutants of water and soil environments. Synthetic dyes are major water-pollutants, which are toxic to organisms in water environments and interfere photosynthesis of water plants. Removal of PAHs and synthetic dyes has been of interests in the environmental science especially in the environmental microbiology. Mushrooms are fungal groups that function as primary degraders of wood polyphenolic lignin. The ligninolytic enzymes produced by mushroom, including manganese peroxidase, lignin peroxidase, and laccase, mediate the oxidative degradation of lignin. The catalytic power of these enzymes in the degradation of aromatic ring compounds has been sought for the degradation of various organic compounds. In this project, we have screened 60 wild mushroom strains for their degradation activity against two representative PAHs, naphthalene and anthracene, and five aromatic dyes, including alizarin red S, crystal violet, malachite green, methylene blue, rose bengal. The degradation of PAHs was measured by GC while the decolorization of dyes was measured by both UV spectrophotometer and HPLC. As results, 9 wild mushroom strains showed high activity in degradation of PAHs and textile dyes. We also describe the secretive enzyme activities, the transcription levels, and cloning of target genes. In conjunction with this, activities of degradative enzymes, including laccase, lignin peroxidase, and Mn peroxidase, were measured in the liquid medium in the presence of PAHs and dyes. Our results showed that the laccase activity was directed correlated with the degradation, indicating that the main enzyme acts on PAHs and dyes is the laccase. The laccase activity was further simulated by the addition of $Cu^{2+}$ ion. Detailed studies of the enzyme system should be sought for future applications.
Kim, Yoon Soo;Singh, Adya P.;Wong, Andrew H.H.;Eom, Tae-Jin;Lee, Kwang Ho
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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제34권2호
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pp.68-77
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2006
The heartwood of cengal (Neobalanocarpus heimii) is known to have a high degree of decay resistance by virtue of its high extractive content. After 30 years in ground contact an utility pole of this tropical hardwood was found to be degraded only in the surface layers by cavity-forming soft rot fungi. The present work was undertaken 1) to characterize the degradation of cengal heartwood from the aspect of ultrastructure and chemistry and 2) to investigate the correlation between soft rot decay and its extractive microdistribution in wood tissues. The chemical analysis of cengal heartwood revealed the presence of a high amount of extractives as well as lignin. The wood contained a relatively high amount of condensed lignin and the guaiacyl units. Microscopic observations revealed that vessels, fibers and parenchyma cells (both ray and axial parenchyma) all contained extractives in their lumina, but in variable amounts. The lumina of fibers and most axial parenchyma were completely or almost completely filled with the extractives. TEM micrographs showed that cell walls were also impregnated with extractives and that pit membranes connecting parenchyma cells were well coated and impregnated with extractives. However, fungal hyphae were present in the extractive masses localized in cell lumina, and indications were that the extractives did not completely inhibit fungal growth. The extent of cell wall degradation varied with tissue types. The fibers appeared to be more susceptible to decay than vessels and parenchyma. Middle lamella was the only cell wall region which remained intact in all cell types which were severely degraded. The microscopic observations suggested a close correlation between extractive microdistribution and the pattern and extent of cell wall degradation. In addition to the toxicity to fungi, the physical constraint of the extractive material present in cengal heartwood cells is likely to have a profound effect on the growth and path of invasion of colonizing fungi, thus conferring protection to wood by restricting fungal entry into cell walls. The presence of relatively high amount of condensed lignin is also likely to be a factor in the resistance of cengal heartwood to soft rot decay.
A $3{\times}3$ factorial design experiment was conducted to investigate the effect of temperature and duration of storage on the fermentation quality of potato pulp ensiled with two fungal inoculants under laboratory conditions. The inoculants, Rhizopus oryzae (R) and Amylomyces rouxii (A) were each added to potato pulp material to contain at least $1{\times}10^6$ CFU/g fresh matter, and silages without additives served as controls. The silages were stored under three temperature regimes; 4, 12 and $25^{\circ}C$. Three silos per treatment from every temperature regime were opened on days 7, 24 and 40 days after ensiling to investigate treatment effects on fermentation quality, starch and sugar concentrations. Increase in temperature and duration of storage had a positive significant effect (p<0.01) on the fermentation quality of potato pulp silage (PPS). The inoculants had little effect (p>0.05) on the fermentation quality of the silages. Sugar concentration in the silages decreased with increase in temperature (p<0.01) but increased (p<0.05) with progression of duration of storage. The fungal inoculants had no effect on starch degradation in PPS. The results suggest that storage temperature and duration of storage are more important in determining the rate of fermentation than addition of the fungal inoculants in PPS.
Previously, we identified the 20S proteasome ${\alpha}$-subunit of Magnaporthe oryzae (M. oryzae) induced during appressorium formation, and detected an increase in multiple protein ubiquitination during the early appressorium formation process (Kim et al., 2004). In this study, we further attempted to determine whether the proteasome is involved in the appressorium formation of M. oryzae both in vitro and in planta, using proteasome inhibitors. A significant increase in 20S proteasome during fungal germination and appressorium formation was observed using Western blot analysis with 20S proteasome antibody, demonstrating that proteasome-mediated protein degradation was involved in appressorium formation. Pharmacological analysis using proteasome inhibitors, MG-132, proteasome inhibitor I (PI) and proteasome inhibitor II (PII) revealed that germination and appressorium formation were delayed for 4 to 6 h on rice leaf wax-coated plates. Similarly, the treatment of proteasome inhibitors with fungal conidia on the rice leaf surface delayed appressorium formation and host infection processes as well. Additionally, fungal pathogenicity was strongly reduced at 4 days' postfungal infection. These data indicated that the fungal 20S proteasome might be involved in the pathogenicity of M. oryzae by the suppression of germination and appressorium formation.
This study was performed to investigate thermophilic bacteria from soil having broad antifungal spectrum against Rhizoctonia solani, Colletotrichum gloeosporioides, Phytophthora capsici, Fusarium oxysporum f.sp. lycopersici, and Botrytis cinerea. One isolate selected could resist heat shock of $60^{\circ}C$ for one hour, and had broad antifungal activity in dual culture assay against all tested fungal pathogens and was identified as Bacillus amyloliquefaciens Y1 using 16S rRNA gene sequence. Further investigation for antifungal activity of bacterial culture filtrate (BCF) and butanol crude extract (BCE) of various concentrations showed broad spectrum antifungal activity and fungal growth inhibition significantly increased with increasing concentration with highest growth inhibition of 100% against R. solani with 50% BCF and 11 mm of zone of inhibition against R. solani with 4 mg BCE concentration. Treatment of butanol crude extract resulted in deformation, lysis or degradation of C. gloeosporioides and P. capsici hyphae. Furthermore, B. amyloliquefaciens Y1 produced volatile compounds inhibiting growth of R. solani (70%), C. gloeosporioides (65%) and P. capsici (65-70%) when tested in volatile assay. The results from the study suggest that B. amyloliquefaciens Y1 could be a biocontrol candidate to control fungal diseases in crops.
In the presence of laccase, generation of monomeric aromatic acids from nonphenolic lignin model dimer veratrylglycerol-$\beta$-vanillate ether (VVE) was observed. The addition of acetovanillone (AV) or acetosyringone (AS) intensified this process, i.e. transformation was more extensive than in the experiments omitting mediators. Among the products isovanillic (IA) and vanillic (VA) acids were identified.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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