Park, Kwanho;Yun, Eun-Young;Park, Seung-Won;Goo, Tae-Won
Journal of Life Science
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v.26
no.12
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pp.1409-1414
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2016
In the larvae of the black soldier fly, Hermetia illucens, innate immunity mechanisms are activated in response to various pathogens and stimulants, resulting in the expression of antimicrobial peptides (AMPs). To induce the mass production of AMPs, H. illucens fifth instar larvae were immunized with five different kinds of bacteria. We isolated from the hemolymph of the H. illucens larvae after bacterial challenge, and their antimicrobial activities against Gram-positive bacteria (Staphylococcus aureus) and Gram-negative bacteria (Escherichia coli) were measured using the inhibition zone assay. Among these five different kinds of bacteria, the hemolymph of Bacillus subtilis-challenged H. illucens larvae showed the strongest antimicrobial activity against both Gram-positive bacteria and Gram-negative bacteria. The antimicrobial activity of the hemolymph of $1{\times}10^9cfu/ml$ B. subtilis-challenged H. illucens peaks at 24 hr at 48 hr post-infection and gradually declines with time. Moreover, the immunized hemolymph also showed strong antimicrobial activity against various poultry pathogens such as S. enteritidis, S. typhimurium, and S. pullorum. These results suggest that the expression of AMP genes in B. subtilis-challenged H. illucens is up-regulated by innate immune responses, and that B. subtilis-challenged H. illucens overexpressing AMPs may be useful as a feed additive in livestock diets to reduce the need for antibiotics.
Kim, Seunghwan;Nguyen, Thi-Dieu-Hanh;Lee, Joohee;Hong, Myoung-Ki;Pham, Tan-Viet;Ahn, Yeh-Jin;Lee, Byoung-Moo;Han, Ye Sun;Kim, Dong-Eun;Kim, Jeong-Gu;Kang, Lin-Woo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.1
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pp.22-28
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2013
Xo2276 is a putative transcription activator-like effector (TALE) in Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo). Xo2276 was expressed with a TAP-tag at the C-terminus in Xoo cells to enable quantitative analysis of protein expression and secretion. Nearly all TAP-tagged Xo2276 existed in an insoluble form; addition of rice leaf extracts from a Xoosusceptible rice cultivar, Milyang23, significantly stimulated secretion of TAP-tagged Xo2276 into the medium. In a T3SS-defective Xoo mutant strain, secretion of TAPtagged Xo2276 was blocked. Xo2276 is a Xoo ortholog of Xanthomonas campestris pv. vesicatoria (Xcv) AvrBs3 and contains a conserved DNA-binding domain (DBD), which includes 19.5 tandem repeats of 34 amino acids. Xo2276- DBD was expressed in E. coli and purified. Direct in vitro recognition of Xo2276-DBD on a putative target DNA sequence was confirmed using an electrophoretic mobility shift assay. This is the first study measuring the homologous expression and secretion of Xo2276 in vitro using rice leaf extract and its direct in vitro binding to the specific target DNA sequence.
Overproduced proteins in many cases result in forming insoluble inclusion bodies, and their formation might be due to high concentration of protein. To investigate how proteins become insoluble, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) and .betha.-lactamase were overproduced, and their solubilities and activities were determined. CAT was accumulated from 9 to 45% of total cellular protein in a fully soluble form without inclusion body formation. CAT specific activity was shown to be proportional to the amount of the protein produced. Moderately produced .betha.-lactamase by the phase T7 expression system at 30.deg.C comprised only mature forms in a soluble form. However, overproduced .betha.-lactamase at 37.deg.C became insoluble. Most precursor forms of .betha.-lactamase in the cytoplasm were insoluble, whereas majority of the mature forms in the periplasm space were soluble. Also, chaperone GroE proteins which assist proper protein folding and translocation did not increase .betha.-lactamase solubility significantly under the experimental condition. It seems that the formation of inclusion bodies in the cell is related to the nature of protein itself rather than just to high concentration of protein.
Kim, Sang Suk;Bang, Jung-Hee;Hyun, Chang-Gu;Kim, Joo-Woo;Han, Jae-Jin;Suh, Joo-Won
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.43
no.3
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pp.136-140
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2000
A novel 6-deoxyhexose biosynthetic gene cluster different from the one for the biosynthesis of streptomycin was isolated from Streptomyces griseus using specifically designed PCR primers to compare the sequence of known dTDP-glucose synthase genes. We cloned a 5.8-kb DNA from Streptomyces griseus ATCC10137, which contained the 4-ketoreductase homologue (grsB), dTDP-glucose synthase (grsD), and dTDP-glucose 4, 6-dehydratase (grsE) genes. Escherichia coli cultures containing plasmid of the PCR product which encoded the grsE region under the controUed T7 promoter were able to catalyze the formation of dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose from TDP-glucose. The enzyme showed high substrate specificity, being specific to only dTDP-glucose that is known to be incorporated into secondary metabolites such as antibiotics.
Recently, interleukin 34 (IL-34) was identified as the second functional ligand for macrophage colony-stimulating factor receptor (M-CSFR). IL-34 functions similarly to M-CSF through its binding to the M-CSFR. There is still insufficient information on IL-34 in chickens, which has until now been reported only through predicted sequences and not through experimental research. Thus, to confirm its expression and to determine its potent biological activity, several chicken lines and cell lines were used. Cloning of recombinant chicken IL-34 and M-CSF genes was performed to investigate their modulatory effects on proinflammatory cytokine expression in vitro. The expression levels of IL-34, M-CSF, and M-CSFR genes were upregulated in broiler chickens with leg dysfunction (cause unknown). However, IL-34 was downregulated in most pathogen-stimulated tissues. M-CSFR expression was enhanced by recombinant IL-34 and M-CSF proteins in vitro. IFN-γ expression was enhanced by recombinant IL-34, but not by M-CSF. However, IL-12 expression was not regulated in any of the treated cells, and IL-1β was decreased in all tissues. These results indicate that IL-34 and M-CSF have roles in both the classical and alternative macrophage activation pathways. Collectively, our findings demonstrate the expression of IL-34 in chickens for pathogenic trials, both in vitro and in vivo. Our results suggest that the IL-34 protein plays a role in both pro- and anti-inflammatory functions in macrophages. Therefore, further research is needed to determine the cytokines or chemokines that can be induced by IL-34 and to further elucidate the functions of IL-34 in the inflammatory pathway.
Background : Priming and boosting vaccination strategy has been widely explored for new vaccine development against tuberculosis. As an effort to identify other vaccine candidates, this study was initiated to evaluate protective efficacy of adenylate kinase (AK), nucleoside diphosphate kinase (NdK), and heat shock protein 70 (Hsp70) of Mycobacterium tuberculosis. Method : M. tuberculosis genes encoding AK, NdK, and Hsp70 proteins were amplified by PCR and cloned into E. coli expression vector, pQE30. Recombinant AK, NdK, and Hsp70 was purified through Ni-NTA resin. To evaluate immune responses, we performed enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for IgG isotype and $IFN-{\gamma}$ after mice were immunized subcutaneously with recombinant proteins delivered in dimethyl dioctadecylammonium bromide (DDA). Immunized- and control groups were challenged by aerosol with M. tuberculosis. The spleens and lungs of mice were removed aseptically and cultured for CFU of M. tuberculosis. Result : Vaccination with recombinant proteins AK, NdK, and Hsp70 delivered in DDA elicited significant level of antibody and $IFN-{\gamma}$ responses to corresponding antigens but no protective immunity comparable to that achieved with Mycobacterium bovis BCG. Conclusion : Recombinant proteins AK, NdK, and Hsp70 do not effectively control growth of M. tuberculosis in mice when immunized with DDA as an adjuvant.
A bacterial artificial chromosome library of Pectobacterium carotovorum 35 was constructed to characterize the genome and to sequence its hrp region. The hrp cluster of P. carotovorum 35 consisted of 26 open reading frames in five operons. A promoter-based green fluorescent protein technology was used to identify the genes regulated by the alternative sigma factor, HrpL, in P. carotovorum 35. The majority of the selected clones contained the hrpJ operon promoter sequence, which harbors a hrp box, but no putative hrp boxes were detected within the promoter sequences of two other hrpL-regulated genes encoding for pectate lyase and large repetitive protein. Although the promoters of five other hrp operons also contained hrp boxes, their expression was not HrpL-dependent in the promoter-based selection in E. coli. However, transcriptional analysis showed that expression from all operons harboring hrp boxes, except for the hrpN operon, was reduced significantly in the hrpL mutant. The severity of soft-rot symptoms when the hrpL mutant was applied to the surface of tobacco leaves, mimicking natural infection, was greatly attenuated. These results indicate that the hrpL gene of P. carotovorum 35 may be involved in the development of soft-rot symptoms.
Hybrid plasmid pEA24, shuttle vector YRp7 carrying amylase gene of Bacillus amyloliquefaciens, was transformed to yeast Saccharomyces cerevisiae, and the expression of B. amyloliquefaciens amylase gene in yeast was investigated. The frequency of transformation to S. cerevisiae DBY747 with YRp7 was increased by treatment of 40% polyethylene glycol (MW 4, 000), PH 7.0, at 3$0^{\circ}C$, and by regeneration used 2% top agar. The amount of cellular amylase activity produced by S. cerevisiae containing pEA24 was 2% of that secreted from B. amyloliquefaciens, but in case of S. cerevisiae transformant, the amylase secreted was not detected. A comparison of genetic stability of pEA24 and YRp7 plasmids in yeast was carried out by cultivation of transformants in tryptophan-supplement-medium. The pEA24 plasmid was more unstable than YRp7 in S. cerevisiae. The size of pEA24 extracted from S. cerevisiae transformants was found to be identical with that from E. coli transformants by agarose gel electrophoresis.
Yoo, Ji Yeon;Yao, Zhuang;Lee, Se Jin;Jeon, Hye Sung;Kim, Jeong Hwan
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.49
no.3
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pp.289-297
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2021
Bacillus velezensis CJ1, showing significant fibrinolytic activity, was isolated from Myeolchi Jeotgal, a popular Korean fermented seafood. When B. velezensis CJ1 was grown on four different culture media, the culture on the Luria-Bertani (LB) broth showed the highest fibrinolytic activity (102.94 mU/μl) at 48 h. LB was also the best medium for growth. SDS-PAGE of culture supernatant showed four major bands, 38, 35, 27, and 22 kDa in size. Fibrin zymography showed four active bands, 50, 47, 40, and 30 kDa in size. A gene homologous to aprE of the Bacillus species was cloned by PCR. DNA sequencing showed that aprECJ1 can encode a protease consisting of 382 amino acids. The translated amino acid sequence of AprECJ1 showed high identity values with those of B. velezensis strains and other Bacillus species. The aprECJ1 gene was introduced into B. subtilis WB600 using an E. coli-Bacillus shuttle vector, pHY300PLK, and overexpressed. A 27 kDa band corresponding to the mature form of AprECJ1 was produced and confirmed by SDS-PAGE and fibrin zymography. B. subtilis WB600 [pHYaprECJ1] showed 1.8-fold higher fibrinolytic activity than B. velezensis CJ1 at 48 h.
Follicle-stimulating hormone (FSH) is a pituitary glycoprotein hormone that is encoded by separate alpha- and betasubunit genes. It plays a key role in stimulating and regulating ovarian follicular development and egg production in chicken. FSH signal transduction is mediated by the FSH receptor (FSHR) that exclusively interacts with the beta-subunit of FSH, but characterization of prokaryotic expression of the FSHb gene and its effect on the expression of the FSHR gene in local chickens have received very little attention. In the current study, the cDNA fragment of the FSHb gene from Dagu chicken was amplified using reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), and inserted into the pET-28a (+) vector to construct the pET-28a-FSHb plasmid. After expression of the plasmid in E. coli BL21 (DE3) under inducing conditions, the recombination protein, $FSH{\beta}$ subunit, was purified and injected into the experimental hens and the effect on the mRNA expression levels of the FSHR gene was investigated. Sequence comparison showed that the coding region of the FSHb gene in the local chicken shared 99%-100% homology to published nucleotides in chickens; only one synonymous nucleotide substitution was detected in the region. The encoded amino acids were completely identical with the reported sequence, which confirmed that the sequences of the chicken FSHb gene and the peptides of the $FSH{\beta}$ subunit are highly conserved. This may be due to the critical role of the normal function of the FSHb gene in hormonal specificity and regulation of reproduction. The results of gene expression revealed that a recombinant protein with a molecular weight of about 19 kDa was efficiently expressed and it was identified by Western blotting analysis. After administration of the purified $FSH{\beta}$ protein, significantly higher expression levels were demonstrated in uterus, ovary and oviduct samples (p<0.05). These observations suggested that the expressed $FSH{\beta}$ protein possesses biological activity, and has a potential role in regulation of reproductive physiology in chickens.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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