In the present study, toxicity of silver nanoparticles (AgNPs) was investigated in the nematode, Caenohabditis elegans focusing on the upstream signaling pathway responsible for regulating oxidative stress, such as mitogen-activated protein kinase (MAPK) cascades. Formation of reactive oxygen species (ROS) was observed in AgNPs exposed C.elegans, suggesting oxidative stress as an important mechanism in the toxicity of AgNPs towards C. elegans. Expression of genes in MAPK signaling pathways increased by AgNPs exposure in less than 2-fold compared to the control in wildtype C.elegans, however, those were increased dramatically in sod-3 (gk235) mutant after 48 h exposure of AgNPs (i.e. 4-fold for jnk-1 and mpk-2; 6-fold for nsy-1, sek-1, and pmk-1, and 10-fold for jkk-1). These results on the expression of oxidative stress response genes suggest that sod-3 gene expression appears to be dependent on p38 MAPK activation. The high expressions of the pmk-1 gene 48 h exposure to AgNPs in the sod-3 (gk235) mutant can also be interpreted as compensatory mechanisms in the absence of important stress response genes. Overall results suggest that MAPK-based integrated stress signaling network seems to be involved in defense to AgNPs exposure in C.elegans.
DNA damage checkpoint is an important self-defense mechanism for the maintenance of genome stability. Defects in DNA damage signaling and repair lead to various disorders and increase tumor incidence in humans. In the past 10 years, we have identified many components involved in the DNA damage-signaling pathway, including the product of breast cancer susceptibility gene 1 (BRCA1). Mutations in BRCA1 are associated with increased risk of breast and ovarian cancers, highlighting the importance of this DNA damage-signaling pathway in tumor suppression. While it becomes clear that BRCA1 plays a crucial role in the DNA damage responsive pathway, exactly how BRCA1 receives DNA damage signals and exerts its checkpoint function has not been fully addressed. A series of recent studies reported the discovery of many novel components involved in DNA damage-signaling pathway. These newly identified checkpoint proteins, including RNF8, RAP80 and CCDC98, work in concern in recruiting BRCA1 to DNA damage sites and thus regulate BRCA1 function in G2/M checkpoint control. This review will summarize these recent findings and provide an updated view of the regulation of BRCA1 in response to DNA damage.
Cysteine proteases have been known as a critical factor in plant defense mechanisms in pineapple, papaya, or wild fig. Papain or ficin is one kind of cysteine proteases that shows toxic effects to herbivorous insects and pathogenic bacteria. However, resistance to bacterial soft rot of plants genetically engineered with cysteine protease has been little examined thus far. We cloned a cysteine protease cDNA from Ananas comosus and introduced the gene into Chinese cabbage (Brassica rapa) under the control of the cauliflower mosaic virus 35S promoter. The transgene was stably integrated and actively transcribed in transgenic plants. In comparisons with wild-type plants, the $T_2$ and $T_3$ transgenic plants exhibited a significant increase in endo-protease activity in leaves and enhanced resistance to bacterial soft rot. A cDNA microarray analysis revealed that several genes were more abundantly transcribed in the transgenic than in the wild type. These genes encode a glyoxal oxidase, PR-1 protein, PDF1, protein kinase, LTP protein, UBA protein and protease inhibitor. These results suggest an important role for cysteine protease as a signaling regulator in biotic stress signaling pathways, leading to the build-up of defense mechanism to pathogenic bacteria in plants.
Cho, Song-Mi;Park, Ju-Yeon;Han, Song-Hee;Anderson, Anne J.;Yang, Kwang-Yeol;Gardener, Brian Mcspadden;Kim, Young-Cheol
The Plant Pathology Journal
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제27권3호
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pp.272-279
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2011
Root colonization of Arabidopsis thaliana with Pseudomonas chlororaphis O6 induces systemic tolerance against diverse pathogens, as well as drought and salt stresses. In this study, we demonstrated that 11 genes in the leaves were up-regulated, and 5 genes were down-regulated as the result of three- to five-days root colonization by P. chlororaphis O6. The identified priming genes were involved in cell signaling, transcription, protein synthesis, and degradation. In addition, expression of selected priming genes were induced in P. chlororaphis O6-colonized plants subjected to water withholding. Genes encoding defense proteins in signaling pathways regulated by jasmonic acid and ethylene, such as VSP1 and PDF1.2, were additional genes with enhanced expression in the P. chlororaphis O6-colonized plants. This study indicated that the expression of priming genes, as well as genes involved in jasmonic acid- and ethylene-regulated genes may play an important role in the systemic induction of both abiotic and biotic stress due to root colonization by P. chlororaphis O6.
When plants are infected by plant pathogens, rapid cell responses are initiated for further inhibition from fast invasion of pathogens. Hypersensitive response (HR) of plant is well known defense response stopping pathogenesis process through rapid cell death. However, informations on the signaling pathway from reception of pathogen by host plants to appropriate resistant responses are very limited to date. Efficient perception of infection by pathogens and well-programmed signalling mechanism for appropriate responses are important for survival of plants. Plant have developed a sophisticated network(s) of defense/stress responses, among which one of the earliest signalling pathways after perception (of stimuli) is the evolutionary conserved Rop GTPase and mitogen-activated protein kinase (MAPK) cascade.(중략)
An important recent advance in the field of plant-microbe interactions has been the cloning of genes that confer resistance to specific viruses, bacteria, fungi or insects. Disease resistance (R) genes encode proteins with predicted structural motifs consistent with them having roles in signal recognition and transduction. Plant disease resistance is the result of an innate host defense mechanism, which relies on the ability of plant to recognize pathogen invasion and efficiently mount defense responses. In tomato, resistance to the pathogen Pseudomonas syringae pv. tomato is mediated by the specific recognition between the tomato serine/threonine kinase Pto and bacterial protein AvrPto or AvrPtoB. This recognition event initiates signaling events that lead to defense responses including an oxidative burst, the hypersensitive response (HR), and expression of pathogenesis- related genes.
Plant matrix metalloproteases (MMPs) are a family of apoplastic metalloproteases closely related to human matrilysins. Up-regulation of Nicotiana benthamiana matrix metalloprotease 1 (NMMP1) expression by treatment with pathogens, ethephon and aging indicates that the gene is related to plant defense and the aging process through ethylene signaling. NMMP1 expression was higher than in normal growth leaves following infection with an incompatible pathogen Pseudomonas syringae pv. tomato T1 or a compatible pathogen P. syringae pv. tabaci and in aged leaves. Transient overexpression of NMMP1 in N. benthamiana leaves lowered the growth of P. syringae pv. tabaci. However, NMMP1-silenced leaves showed increased growth of P. syringae pv. tabaci. These data strongly suggest that NMMP1 in N. benthamiana is a defense related gene, which is positively regulated by ethylene.
You, Min Kyoung;Oh, Seung-Ick;Ok, Sung Han;Cho, Sung Ki;Shin, Hyun Young;Jeung, Ji Ung;Shin, Jeong Sheop
Molecules and Cells
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제23권1호
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pp.108-114
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2007
The mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling cascade is critical for regulating plant defense systems against various kinds of pathogen and environmental stresses. One component of this cascade, the MAP kinase kinases (MAPKK), has not yet been shown to be induced in plants following biotic attacks, such as those by insects and fungi. We describe here a gene coding for a blast (Magnaporthe grisea)- and insect (Nilaparvata lugens)-responsive putative MAPK kinase, OmMKK1 (Oryza minuta MAPKK 1), which was identified in a library of O. minuta expressed sequence tags (ESTs). Two copies of OmMKK1 are present in the O. minuta genome. They encode a predicted protein with molecular mass 39 kDa and pI of 6.2. Transcript patterns following imbibition of plant hormones such as methyl jasmonic acid (MeJA), ethephone, salicylic acid (SA) and abscisic acid (ABA), as well as exposure to methyl viologen (MV), revealed that the expression of OmMKK1 is related to defense response signaling pathways. A comparative analysis of OmMKK1 and its O. sativa ortholog OsMKK1 showed that both were induced by stress-related hormones and biotic stresses, but that the kinetics of their responses differed despite their high amino acid sequence identity (96%).
Yoo, Seung Jin;Kim, Su-Hyun;Kim, Min-Jeong;Ryu, Choong-Min;Kim, Young Cheol;Cho, Baik Ho;Yang, Kwang-Yeol
The Plant Pathology Journal
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제30권2호
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pp.168-177
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2014
Plant has possessed diverse stress signals from outside and maintained its fitness. Out of such plant responses, it is well known that mitogen-activated protein kinase (MAPK) cascade plays important role in wounding and pathogen attack in most dicot plants. However, little is understood about its role in wounding response for the economically important monocot rice plant. In this study, therefore, the involvement of MAPK was investigated to understand the wounding signaling pathway in rice. The OsMPK1 was rapidly activated by wounding within 10 min, and OsMPK1 was also activated by challenge of rice blast fungus. Further analysis revealed that OsMKK4, the upstream kinase of OsMPK1, phosphorylated OsMPK1 by wounding in vivo. Furthermore, OsMPK1 directly interacted with a rice defense-related transcription factor OsWRKY53. To understand a functional link between MAPK and its target transcription factor, we showed that OsMPK1 activated by the constitutively active mutant $OsMKK4^{DD}$ phosphorylated OsWRKY53 in vitro. Taken together, components involving in the wounding signaling pathway, OsMKK4-OsMPK1-OsWRKY53, can be important players in regulating crosstalk between abiotic stress and biotic stress.
Incompatible plant-pathogen interactions result in the rapid cell death response known as hypersensitive response (HR) and activation of host defense-related genes. To understand the molecular and cellular mechanism controlling defense response better, several approaches including isolation and characterization of novel genes, promoter analysis of those genes, protein-protein interaction analysis and reverse genetic approach etc. By using the yeast two-hybrid system a clone named Tsipl, Tsil -interacting protein 1, was isolated whose translation product apparently interacted with Tsil, an EREBP/AP2 type DNA binding protein. RNA gel blot analysis showed that the expression of Tsipl was increased by treatment with NaCl, ethylene, salicylic acid, or gibberellic acid. Transient expression analysis using a Tsipl::smGFP fusion gene in Arabidopsis protoplasts indicated that the Tsipl protein was targeted to the outer surface of chloroplasts. The targeted Tsipl::smGFP proteins were diffused to the cytoplasm of protoplasts in the presence of salicylic acid (SA) The PEG-mediated co-transfection analysis showed that Tsipl could interact with Tsil in the nucleus. These results suggest that Tsipl-Tsil interaction might serve to regulate defense-related gene expression. Basically the useful promoters are valuable tools for effective control of gene expression related to various developmental and environmental condition.(중략)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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