In order to observe the cytotoxicity of Acanthamoeba spp., which were isolated from contact lens containers as ethiological agents for the probable amoebic keratitis in Korea, the crystal violet staining method and LDH release assay were carried out. In the crystal violet staining method, among eight contact lens container isolates, isolate 3 (Acanthauloeba KA/LS5) showed 83.6% and 81.8% of cytotoxicity, and isolate 7 (Acanthamoeba KA/LS37) showed 28.2% and 25.1% of cytotoxicity, in 1 mg/ml and 0.5 mg/ml Iysate treatments, respectively. Acanthamoeba cutbertsoni and A. healyi showed 84.0% and 82.8% of cytotoxicity. Similar results were observed in A. costellunii and A. hafchefti which showed 83.6% and 75.5% or cytotoxicity. Acanthamoeba roureba and A. polyphaga showed 9.0% and 1.7% of cytotoxicity. In the LDH release assay, isolate 3 (20.4%) showed higher cytotoxicity than other isolates in 1 mg/ml Iysate treatment. The results provide that at least isolate 3 has the cytotoxic effect against CHO cells and seems to be the pathogenic strain.
Kim, Bok Yung;Thyiam, General;Kang, Ji-Eun;Lee, Seung-Hwan;Park, Sang-Hee;Kim, Jung-Sun;Abraham, Marion
Korean Journal of Clinical Laboratory Science
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v.44
no.3
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pp.112-117
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2012
Escherichia coli biofilm, reported to be produced in the human intestine causing a significant health risk, was successfully grown on transwell$^{(R)}$. This biofilm layer was identified by crystal violet staining and prepared for the in vitro E. coli biofilm system which can be used to screen for inhibitors. The biofilm formation did not show a change in transepithelial electrical resistance values. Furthermore, rhodamine 123 staining showed that the dye did not pass through the membrane once biofilm was formed.
Epifluorescence microscopy with image analysis was evaluated as a biofilm quantification method (i.e., quantification of surface area colonized by biofilms), in comparison with crystal violet (CV) staining. We performed different experiments to generate multispecies biofilms with natural and artificial bacterial assemblages. First, four species were inoculated daily in 16 different sequences to form biofilms (surface colonization, 0.1%-56.6%). Second, a 9-species assemblage was allowed to form biofilms under 10 acylase treatment episodes (33.8%-55.6%). The two methods comparably measured the quantitative variation in biofilms, exhibiting a strong positive relationship (R2 ≥ 0.7). Moreover, the two methods exhibited similar levels of variation coefficients. Finally, six synthetic and two natural consortia were allowed to form biofilms for 14 days, and their temporal dynamics were monitored. The two methods were comparable in quantifying four biofilms colonizing ≥18.7% (R2 ≥ 0.64), but not for the other biofilms colonizing ≤ 3.7% (R2 ≤ 0.25). In addition, the two methods exhibited comparable coefficients of variation in the four biofilms. Microscopy and CV staining comparably measured the quantitative variation of biofilms, exhibiting a strongly positive relationship, although microscopy cannot appropriately quantify the biofilms below the threshold colonization. Microscopy with image analysis is a promising approach for easily and rapidly estimating absolute quantity of multispecies biofilms.
The objective of this study was to evaluate the effects of NaCl on the biofilm formations of the isolate from Staphylococcus aureus outbreaks linked to ham. The S. aureus ATCC13565 isolated from ham was exposed to NaCl concentrations of 0%, 2%, 4%, and 6% supplemented in tryptic soy broth (TSB) for 24 h at $35^{\circ}C$, followed by plating 0.1 mL of the culture on tryptic soy agar containing 0%, 2%, 4%, and 6% NaCl, respectively. After incubating at $35^{\circ}C$ for 24 h, the colonies on the plates were collected and diluted to $OD_{600}$ = 0.1. The diluents of S. aureus were incubated on a 96-well flat bottom plate containing TSB plus the appropriate NaCl concentrations, and the biofilm formation was quantified by crystal violet staining after being incubated at $35^{\circ}C$ for 9 h. Confocal laser scanning microscope (CLSM) was also used for visualizing the biofilm formation of S. aureus at NaCl concentrations of 0%, 2%, 4%, and 6%. The transcriptional analysis of biofilm-related genes, such as icaA, atl, clfA, fnbA, sarA, and rbf, was conducted by quantitative real-time PCR. Crystal violet staining and CLSM showed that the biofilm formations of S. aureus increased (p<0.05) along with the NaCl concentrations. Moreover, the expression of the icaA genes was higher at the NaCl concentrations of 4% and 6% as compared with 0% of NaCl by approximately 9-folds and 20-folds, respectively. These results indicated that the NaCl formulated in processed food may increase the biofilm formations of S. aureus by increasing the icaA gene expressions.
Fungal cell walls and cell membranes are the main targets of antifungals. In this study, we report on the antifungal activity of an ethanol extract from Paeonia lactiflora against Candida albicans, showing that the antifungal activity is associated with the synergistic actions of preventing cell wall synthesis, enabling membrane depolarization, and compromising permeability. First, it was shown that the ethanol extract from P. lactiflora was involved in damaging the integrity of cell walls in C. albicans. In isotonic media, cell bursts of C. albicans by the P. lactiflora ethanol extract could be restored, and the minimum inhibitory concentration (MIC) of the P. lactiflora ethanol extract against C. albicans cells increased 4-fold. In addition, synthesis of $(1,3)-{\beta}-{\small{D}}-glucan$ polymer was inhibited by 87% and 83% following treatment of C. albicans microsomes with the P. lactiflora ethanol extract at their $1{\times}MIC$ and $2{\times}MIC$, respectively. Second, the ethanol extract from P. lactiflora influenced the function of C. albicans cell membranes. C. albicans cells treated with the P. lactiflora ethanol extract formed red aggregates by staining with a membrane-impermeable dye, propidium iodide. Membrane depolarization manifested as increased fluorescence intensity by staining P. lactiflora-treated C. albicans cells with a membrane-potential marker, $DiBAC_4(3)$ ((bis-1,3-dibutylbarbituric acid) trimethine oxonol). Membrane permeability was assessed by crystal violet assay, and C. albicans cells treated with the P. lactiflora ethanol extract exhibited significant uptake of crystal violet in a concentration-dependent manner. The findings suggest that P. lactiflora ethanol extract is a viable and effective candidate for the development of new antifungal agents to treat Candida-associated diseases.
Objective : Nerve growth factor (NGF) is a member of the neurotrophic factor family and plays a vital role in the physiological processes of organisms, especially in the nervous system. Many recent studies have reported that NGF is also involved in the regulation of tumourigenesis by either promoting or suppressing tumor growth, which depends on the location and type of tumor. However, little is known regarding the effect of NGF on interspinal schwannoma (IS). In the present study, we aimed to explored whether mouse nerve growth factor (mNGF), which is widely used in the clinic, can influence the growth of interspinal schwannoma cells (ISCs) isolated from IS in vitro. Methods : ISCs were isolated, cultured and identified by S-100 with immunofluorescence analysis. S-100-positive cells were divided into five groups, and separately cultured with various concentrations of mNGF (0 [phosphate buffered saline, PBS], 40, 80, 160, and 320 ng/mL) for 24 hours. Western blot and quantantive real time polymerase chain reaction (PCR) were applied to detect tyrosine kinase A (TrkA) receptor and p75 neurotrophin receptor ($p75^{NTR}$) in each group. Crystal violet staining was selected to assess the effect of mNGF (160 ng/mL) on ISCs growth. Results : ISCs growth was enhanced by mNGF in a dose-dependent manner. The result of crystal violet staining revealed that it was significantly strengthened the cells growth kinetics when cultured with 160 ng/mL mNGF compared to PBS group. Western blot and quantantive real time PCR discovered that TrkA receptor and mRNA expression were both up-regualated under the condition of mNGF, expecially in 160 ng/mL, while the exoression of $p75^{NTR}$ demonstrated no difference among groups. Conclusion : From these data, we conclude that exogenous mNGF can facilitate ISC growth by activating both TrkA receptor and $p75^{NTR}$. In addition, patients who are suffering from IS should not be administered mNGF in the clinic.
The antifungal activity of fisetin against Candida albicans is explored, elucidating a mechanism centered on membrane permeabilization and ensuing disruption of pH homeostasis. The Minimum Inhibitory Concentration (MIC) of fisetin, indicative of its interaction with the fungal membrane, increases in the presence of ergosterol. Hoechst 33342 and propidium-iodide staining reveal substantial propidium-iodide accumulation in fisetin-treated C. albicans cells at their MIC, with crystal violet uptake assays confirming fisetin-induced membrane permeabilization. Leakage analysis demonstrates a significant release of DNA and proteins in fisetin-treated cells compared to controls, underscoring the antifungal effect through membrane disruption. Green fluorescence, evident in both the cytoplasm and vacuoles of fisetin-treated cells under BCECF, AM staining, stands in contrast to controls where only acidic vacuoles exhibit staining. Ratiometric pH measurements using BCECF, AM reveal a noteworthy reduction in intracellular pH in fisetin-treated cells, emphasizing its impact on pH homeostasis. DiBAC4(3) uptake assays demonstrate membrane hyperpolarization in fisetintreated cells, suggesting potential disruptions in ion flux and cellular homeostasis. These results provide comprehensive insights into the antifungal mechanisms of fisetin, positioning it as a promising therapeutic agent against Candida infections.
PURPOSE. The aim of this in vitro study was to investigate the adhesion of initial colonizer, Streptococcus sanguis, on resin, titanium and zirconia under the same surface polishing condition. MATERIALS AND METHODS. Specimens were prepared from Z-250, cp-Ti and 3Y-TZP and polished with $1 {\mu}m$ diamond paste. After coating with saliva, each specimen was incubated with Streptococcus sanguis. Scanning electron microscope, crystal violet staining and measurement of fluorescence intensity resulting from resazurin reduction were performed for quantifying the bacterial adhesion. RESULTS. Surface of resin composite was significantly rougher than that of titanium and zirconia, although all tested specimens are classified as smooth. The resin specimens showed lower value of contact angle compared with titanium and zirconia specimens, and had hydrophilic surfaces. The result of scanning electron microscopy demonstrated that bound bacteria were more abundant on resin in comparison with titanium and zirconia. When total biofilm mass determined by crystal violet, absorbance value of resin was significantly higher than that of titanium or zirconia. The result of relative fluorescence intensities also demonstrated that the highest fluorescence intensity was found on the surface of resin. Absorbance value and fluorescence intensity on titanium was not significantly different from those on zirconia. CONCLUSION. Resin specimens showed the roughest surface and have a significantly higher susceptibility to adhere Streptococcus sanguis than titanium and zirconia when surfaces of each specimen were polished under same condition. There was no significant difference in bacteria adhesion between titanium and zirconia in vitro.
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.37
no.4
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pp.347-350
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2011
Biofilms are surface-attached microbial communities with phenotypic and biochemical properties distinct from free-living planktonic cells. Biofilm bacteria show much greater resistance than planktonic counterparts and much higher concentration of biocide is needed to treat biofilms compared to the dosage used for planktonic bacteria. As a result, alternative strategies or more effective agents exhibiting activity against biofilm-producing micro-organisms are of great interest. Therefore, we turned our attention to control of biofilm of S. aureus. The aims of this research are to investigate substances which inhibit the formation of biofilm by S. aureus and to suggest effective materials for controlling skin problems. We coated slide glasses with human placental collagen and the coverslip was incubated with test materials and bacteria. The coverslip was stained with crystal violet and we measured optical density of each sample. The biofilm inhibitory activity was calculated by crystal violet staining degrees. In this study, S. aureus ATCC 6538 was used as test organism. Our results show that both water soluble and insoluble Hinoki cypress polysaccharide strongly inhibited biofilm formation. Whereas, green tea and sunset hibiscus root extract promoted biofilm. Xylitol showed a concentration dependent effect; high concentration (3 % and 5 %) of xylitol reduced biofilm while promoted biofilm formation at a concentration of 1 %. These results support that Hinoki cypress polysaccharide and xylitol have ability to suppress biofilm formation.
Candida albicans is an opportunistic and the most prevalent fungal pathogen that can cause superficial and systemic infections in immunocompromised patients. C. albicans can promote the transition from budding yeast to filamentous form, generating biofilms. Infections associated with C. albicans biofilms are frequently resistant to conventional antifungal therapy. Therefore, the development of more effective antifungal drugs related with biofilm formation is required urgently. The roots of Rheum undulatum have been used for medicinal purposes in Korea and China traditionally. The aim of present study was to evaluate the effect of R. undulatum extract upon preformed biofilms of 12 clinical C. albicans isolates and the antifungal activities. Its effect on preformed biofilms was evaluated using XTT reduction assay, and metabolic activity of all tested strains was reduced significantly ($49.4{\pm}6.0%$) at 0.098 mg/ml R. undulatum. The R. undulatum extract blocked the adhesion of C. albicans biofilms to polystyrene surfaces, and damaged the cell membrane integrity of C. albicans which was analyzed by CFDA, AM, and propidium iodide double staining. It caused cell lysis which was observed by Confocal laser scanning and phase contrast microscope after propidium iodide and neutral red staining, respectively. Membrane permeability was changed as evidenced by crystal violet uptake. The data suggest that R. undulatum inhibits biofilm formation by C. albicans, which can be associated with the damage of the cell membrane integrity, the changes in the membrane permeability and the cell lysis of C. albicans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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