To clarify resistance mechanisms of lincosamide antibiotics, it was examined whether lincosamide antibiotics was able to induce high resistance to macrolide and lincosamide antibiotics against EMR-1 strain of Bacillus species. And it was also examined whether the inducible resistance was plasmid-mediated or chromosome-mediated. This strain was identified as Bacillus licheniformis by its morphological and physiological characteristics. The subinhibitory concentrations of lincomycin and clindamycin induced high resistance in the strain to lincosamide antibiotics, but not to macrolide antibiotics. The inducible resistance was not eliminated by treating the strain with ethidium bromide, and plasmid was not identified by the alkaline lysis method of plasmid preparation. These results indicate, therefore, that the inducible resistance to macrolide and lincosamide antibiotics in the strain may be chromosome-mediated, not plasmid-mediated.
The preparation of Clostridium butyricum is used as a normalizing agent for human intestinal flora. When the microbe is simultaneously used with rifampicin, it is inactivated by the antibiotic. To develop rifampicin-resistant mutants, rifampicin-sensitive strain Miyairi II 588 of C. butyricum was treated with nitrosoguanidine (NTG). To ensure stable resistance to rifampicin, we examined whether the resistance was plasmid-mediated or chromosome-mediated. It was found that the resistance of four mutant strains was not mediated by its inherent plasmid, but by the chromosomal mutation. These strains were examined for the susceptibility and resistance to other antituberculosis agents and antibiotics. The results showed that these mutants were resistant to the high concentration of the antituberculosis agents.
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.19
no.1
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pp.85-108
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1984
In order to study the relationship between resistance of tumor cells to anticancer drugs and immunologic cytotoxicity and their chromosome number, a line of cancer cells (NS-1) was exposed to BCNU and CCNU in vitro. Characteristics of the distribution of chromosome number of the survived cells were then comparatively analyzed. Effect of immune mediated cytotoxicity, i.e. complement and cell-mediated cytotoxicity, on the ploidy characteristics was observed in the same way. NS-1 cells were found to be a population of neoplastic cells of heterogeneity having 5 to 115 chromosomes per cell in metaphase. The majority of the cells were belong to the class of chromosome number 56 to 60 which were considered as the stem cell line. Dramatic changes in the distribution of chromosome number following drug treatment were not observed. However the range of chromosome distribution was slightly changed. Characteristics of chromosomal distribution of drug treated cells were not significantly varied by different doses of drug treated. Changed chromosomal distribution patterns of drug treated cells were reversible, especially the cells having 56 to 60 chromosomes recovered rapidly. Cells having 41-60 and 61-80 chromosomes among cells treated with BCNU and cells with 41-60 chromosomes after CCNU treatment were the major population which regenerated continuously. Following BCNU treatment cells having 61-80 chromosomes were not varied much whereas CCNU treatment affects the population in the same class. Chromosomal aberrations were significantly enhanced by BCNU and CCNU treatment. The frequency of chromosomal aberrations was greater in cells having more than 40 chromosomes compared with that in cells having less than 40 chromosomes. Changes in ploidy characteristics of the cells following complement mediated and cell mediated cytotoxicity were not significant. Therefore it was tentatively concluded that association of numerical distribution pattern of NS-1 cells with the response to the treatment used in this experiment was not recognized.
Three Pseudomonas strains (Bk8, Bk9, Bk10) selected from soil for their ability to degrade herbicide diuron were tested for their heavy metal resistance. The growth of these catabolic strains on a minimal medium with various concentrations of $Cd^{2+},\;Zn^{2+},\;Ni^{2+}$, and $Hg^{2+}$ revealed a minimal effect on the carbon source for the inhibitory effect of the metals. One of these strains, namely, Bk8, exhibited a high resistance to the heavy metals as compared to the two other strains. This strain harbors plasmid pBk8 (110 kb) and contains at least fur determinants encoding heavy metal resistance. Nickel and zinc resistance are encoded by genes located on the chromosome, while cadmium and mercury resistance are on plasmid pBk8. Accordingly, the characteristics of strain Bk8 suggest that it would be useful in the bioremediation of aromatic compounds in the presence of toxic heavy metals as co-contaminants.
Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) is a bacterial pathogen capable of causing human diseases, such as soft tissue infection, bacteremia, endocarditis, toxic shock syndrome, pneumonia, and sepsis. Although the incidence rate of diseases caused by MRSA has declined in recent years, these diseases still pose a clinical threat due to their consistently high morbidity and mortality rates. However, the role of virulence factors in staphylococcal infections remains incompletely understood. Methicillin resistance, which confers resistance to all β-lactam antibiotics in cellular islets, is mediated by the mecA gene in the staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec). Differences in SCCmec types and differences in their sizes and structures serve epidemiological purposes and are used to differentiate between hospital-associated (HA)-MRSA and community-associated (CA)-MRSA. Some virulence factors of S. aureus are also providing a distinction between HA-MRSA and CA-MRSA. These factors vary depending on the presence of toxins, adhesion, immune evasion, and other virulence determinants. In this review, we summarized an overview of MRSA such as resistance mechanisms, SCCmec types, HA- and CA-MRSA, and virulence factors that enhance pathogenicity or MRSA epidemiology, transmission, and genetic diversity.
To investigate the nature and location of the nisin-resistance determinant of Lactococcus lactis subsp. lactis 7962 (L. lactis 7962), a total plasmid DNA prepared from L. lactis 7962, a nisin producer, was used to transform L. lactis subsp. lactis LM0230, a plasmid-free and nisin-sensitive strain, by protoplast mediated transformation procedures. All of the nisin-resistant transformants acquired the ability to utilize sucrose at the same time, confirming the close linkage between these two determinants in L. lactis 7962. The plasmid DNA profiles of a few selected nisin-resistant transformants were examined by agarose gel electrophoresis. No common plasmid was found among the transformants and some small plasmids previously not present in L. lactis 7962 were detected. These transformants were named as L. lactis KL1, KL2, KL3, KL4, or KL5, respectively based on their plasmid profiles. Growth curves of all transformants were similar to that of L. lactis LM0230, but different from that of L. lactis 7962. L. lactis KL5 showed the highest level of resistance to nisin, growing up to 1, 200 IU nisin/ml after 40 hr incubation. Some nisin-sensitive derivatives of KL1 or KL2 were obtained by plasmid curing experiments. The plasmid DNA profiles of the nisin-sensitive KL1 derivatives were apparently the same as that of the KL1. All of the nisin-sensitive KL2 derivatives were plasmid-free, but a nisin-resistant strain with no apparent plasmid was also obtained. These results indicate that the nisin-resistance of the $Nis^r$ transformants is presumably mediated by the chromosomally located gene(s) rather than plasmid-encoded gene(s).
To determine whether the tetracycline resistance genes tet (34), tet (M), and tet (S) can be transferred among bacteria, we used a filter mating experiment allowing intimate cell-cell contact between donor and recipient. The tet(34) gene, conveyed on a chromosome of Vibrio species (No. 6 and SW-42) was not transferred to Escherichia coli JM109, suggesting that it is not transferred among bacterial species. The tet (M) gene was transferred from three Vibrio strains (4-E, SW-18, and SW-38) to E. coli at frequencies of $8.5{\times}10^{-5}\;to\;2.1{\times}10^{-6}$. The tet(S) gene was transferred from Lactococcus garvieae KHS98032 to E. coli at a frequency of $1.8{\times}10^{-6}$. Transconjugated recipients showed increased minimum inhibitory concentrations against oxytetracycline. Although the donors possess the Tn916-Tn1545 transposons, they were not detected in transformed recipients, suggesting that the transfer of tet(M) and tet(S) is mediated by elements or mechanisms. Two ribosomal protect protein genes were also transmissible from marine bacteria to E. coli, suggesting gene hopping among marine, terrestrial, and human environments.
An 1.4 kb of the fad3 cDNA encoding microsomal linoleic acid desaturase catalyzing the conversion of linoleic acid (18:2, ${\omega}-6$) to linolenic acid (18:2, ${\omega}-3$) was introduced into tobacco plants by the Agrobacterium-mediated plant transformation, Among the transgenic tobacco plants conferring kanamycin resistance, five transformants showing increment in unsaturated fatty acid contents were selected and further analyzed for the transgenecity, In genomic Southern blot analyses, copy numbers of the integrated fad3 DNA in chromosomal DNA of the five transgenic tobacco plants were varied among the transgenic lines. By Northern blot analyses, the abundancy of the fad3 mRNA transcript directed by Cauliflower Mosaic Virus 35S promoter was consistent with the relative copy number of the fad3 DNA integrated in the chromosome of transgenic tobacco plants. When compared with the wild type, accumulation of linolenic acid in transgenic tobacco roots was elevated 3.7- to 4.7-fold showing a corresponding decrease in the linoleic acid contents; however, slight increments for linolenic acid were noticed in transgenic leaf tissues. These results indicated that the elevated level of fad3 expression is achieved in transgenic tobacco plants.
Kim, Jung-Ae;Kim, Jung-Mi;Kim, Hwan-Gyu;Kim, Beom-Tae;Hwang, Ki-Jun;Park, Seung-Moon;Yang, Moon-Sik;Kim, Dae-Hyuk
The Plant Pathology Journal
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v.25
no.2
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pp.179-183
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2009
To facilitate the genetic manipulation of Cladosporium phlei, a causal agent of leaf spot disease in timothy (Phleum pretense), protoplast-mediated transformation of C. phlei has been developed and the resulting transformants were characterized in this study. Hygromycin B resistance was applied as a dominant selection marker due to the sensitivity of C. phlei to this antibiotic. The transformation efficiency ranged from approximately 20-100 transformants per experiment. Southern blot analysis of stable transformants revealed that transformation occurred by way of stable integration of the vector DNA into the fungal chromosome. PCR analysis and plasmid rescuing of randomly selected transformants suggested that integration of tandem repeat copies of vector DNA was common. In addition, multiple integrations of the transforming vector at different chromosomal sites were also observed. The establishment of a transformation method for C. phlei facilitates strain improvement of this fungus and can be applied as an initial step in the molecular analysis of pigment production in this fungus.
Jeong, Haeyoung;Choi, Sanghaeng;Park, Gun-Seok;Ji, Yosep;Park, Soyoung;Holzapfel, Wilhelm Heinrich;Mathara, Julius Maina;Kang, Jihee
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.47
no.1
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pp.25-33
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2019
Lactobacillus rhamnosus BFE5264, isolated from a Maasai fermented milk product ("kule naoto"), was previously shown to exhibit bile acid resistance, cholesterol assimilation, and adhesion to HT29-MTX cells in vitro. In this study, we re-annotated and analyzed the previously reported complete genome sequence of strain BFE5264. The genome consists of a circular chromosome of 3,086,152 bp and a putative plasmid, which is the largest one identified among L. rhamnosus strains. Among the 2,883 predicted protein-coding genes, those with carbohydrate-related functions were the most abundant. Genome analysis of strain BFE5264 revealed two consecutive CRISPR regions and no known virulence factors or antimicrobial resistance genes. In addition, previously known highly variable regions in the genomes of L. rhamnosus strains were also evident in strain BFE5264. Pairwise comparison with the most studied probiotic strain L. rhamnosus GG revealed strain BFE5264-specific deletions, probably due to insertion sequence-mediated recombination. The latter was associated with loss of the spaCBA pilin gene cluster and exopolysaccharide biosynthetic genes. Comparative genomic analysis of the sequences from all available L. rhamnosus strains revealed that they were clustered into two groups, being within the same species boundary based on the average nucleotide identities. Strain BFE5264 had a sister group relationship with the group that contained strain GG, but neither ANI-based hierarchical clustering nor core-gene-based phylogenetic tree construction showed a clear distinctive pattern associated with the isolation source, implying that the genotype alone cannot account for their ecological niches. These results provide insights into the probiotic mechanisms of strain BFE5264 at the genomic level.
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