Kim, Kyu-Yong;Kim, Myoun-Dong;Han, Nam-Soo;Seo, Jin-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제12권3호
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pp.411-416
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2002
Bacillus macerans cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) was expressed on the cell surface of Saccharomyces cerevisiae by fusing with Aga2p linked to the membrane-anchored protein, Aga1p. The surface display of CGTase was confirmed by immunofluorescence microscopy and its enzymatic ability to form ${\alpha}$-cyclodextrin from starch. The maximum surface-display of CGTase was obtained by growing recombinant S. cerevisiae at $20^{\circ}C$ and pH 6.0. S. cerevisiae cells displaying CGTase on their surface consumed glucose and maltose, inhibitory byproducts of the CGTase reaction, to enhance the purity of produced cyclodextrins. Accordingly, the experimental results described herein suggest a possibility of using the recombinant S.cerevisiae anchored with bacterial CGTase on the cell surface as a whole-cell biocatalyst for the production of cyclodextrin.
This paper represents the response surface model for the cell gap on the flexible liquid crystal display (LCD) process. Using response surface methodology (RSM). D-optimal design is carried out to build the design space and the cell gap is characterized by the quadratic model. The statistical analysis is used to verify the response surface model. This modeling technique can predict the characteristics of the desired response, cell gap, varying with process conditions.
We have developed a constitutive display system of the Pseudomonas fluorescens SIK W1 TliA lipase on the cell surface of Escherichia coli using E. coli outer membrane protein C (OmpC) as an anchoring motif, which is an economical compared to induced system. For the constitutive expression of truncated OmpC-TliA fusion proteins, gntT104 promoter was employed. Cell growth was not affected by over expression of fusion protein during entire culture time, suggesting cell lysis was not a problem. The localization of truncated OmpC-TliA fusion protein on the cell surface was confirmed by immunofluorescence microscopy and measuring whole cell lipase activity. Constitutively displayed lipase was very stable, retaining activity enantioselectivity throughout the five repeated reactions. These results suggest that OmpC from E. coli be a useful anchoring motif for displaying enzymes on the cell surface without any inducers, and this stable surface display system can be employed for a broad range of biotechnological applications.
Autodisplay of a multimeric protein complex on a cell surface is limited by intrinsic factors such as the types and orientations of anchor modules. Moreover, improper folding of proteins to be displayed often hinders functional cell surface display. While overcoming these drawbacks, we ultimately extended the applicability of the autodisplay platform to the display of a protein complex. We designed and constructed a cell surface attachment (CSA) system that uses a non-covalent protein-protein interaction. We employed the high-affinity interaction mediated by an orthogonal cohesin-dockerin (Coh-Doc) pair from Archaeoglobus fulgidus to build the CSA system. Then, we validated the orthogonal Coh-Doc binding by attaching a monomeric red fluorescent protein to the cell surface. In addition, we evaluated the functional anchoring of proteins fused with the Doc module to the autodisplayed Coh module on the surface of Escherichia coli. The designed CSA system was applied to create a functional attachment of dimeric α-neoagarobiose hydrolase to the surface of E. coli cells.
We have expressed extracellular poly(3-hydroxybutyrate) (PHB) depolymerase of Ralstonia pickettii T1 on the Escherichia coli surface using Pseudomonas OprF protein as a fusion partner by C-terminal deletion-fusion strategy. Surface display of depolymerase was confirmed by flow cytometry, immunofluorescence microscopy and whole cell hydrolase activity. For the application, depolymerase was used as an immobilized catalyst of enantioselective hydrolysis reaction for the first time. After 48 h, (R)-methyl mandelate was completely hydrolyzed, and (S)-mandelic acid was produced with over 99% enantiomeric excess. Our findings suggest that surface displayed depolymerase on E. coli can be used as an enantioselective biocatalyst.
Recently, genetic engineering techniques have been used to display various heterologous peptides and proteins (enzyme, antibody, antigen, receptor and fluorescence protein, etc.) on the yeast cell surface. Living cells displaying various enzymes on their surface could be used repeatedly as 'whole cell biocatalysts' like immobilized enzymes. We constructed a yeast based whole cell biocatalyst displaying T. reesei cellobiohydrolase I (CBH I ) on the cell surface and endowed the yeast-cells with the ability to degrade cellulose. By using a cell surface engineering system based on ${\alpha}-agglutinin,$ CBH I was displayed on the cell surface as a fusion protein containing the N-terminal leader peptide encoding a Gly-Ser linker and the $Xpress^{TM}$ epitope. Localization of the fusion protein on the cell surface was confirmed by confocal microscopy. In this study, we report on the genetic immobilization of T. reesei CBH I on the S. cerevisiae and hydrolytic activity of cell surface displayed CBH I.
Recently, applications of plasma display to the large public display and transparent display gain much attention. With this background, we report characteristics of opposite electrodes discharge cell with long electrode gap in comparison with conventional co-planar surface discharge. The cell size of test panel is $2950{\mu}m{\times}840{\mu}m$, which corresponds to that of the display having diagonal size of 130" with XGA resolution. Electrode gap of co-planar and opposite electrode structure are $240{\mu}m$ and $500{\mu}m$ respectively. These gap dimensions provide similar driving voltage windows. Experimental results show that opposite discharge provides approximately four fold higher luminous efficacy compared with that of the surface discharge. Resulting efficacy is found to be higher than 19 lm/W in green phosphor with 10 KHz continuous pulse operation.
A new system for displaying proteins on the surface of Escherichia coli was developed using the Salmonella typhimurium outer membrane protein C (OmpC) as an anchoring motif. The C-terminal deletionfusion strategy was developed to fuse the polyhistidine peptides and green fluorescent protein (GFP) to the Cterminal of the truncated functional portion of OmpC. The polyhistidine peptides of up to 243 amino acids could besuccessfully displayed on the E. coli cell surface, which allowed recombinant E. coli to adsorb up to 34.2 μmol of Cd2+ per gram dry cell weight. The GFP could also be successfully displayed on the E. coli cell surface. These results suggest that the C-terminal deletion-fusion strategy employing the S. typhimurium OmpC as an anchoring motif provides a new efficient way for the display of large proteins on the surface of E. coli.
Bacterial surface display systems have been developed for various applications in biotechnology and industry. Particularly, the discovery and design of anchoring motifs is highly important for the successful display of a target protein or peptide on the surface of bacteria. In this study, an efficient display system on Escherichia coli was developed using novel anchoring motifs designed from the E. coli mipA gene. Using the C-terminal fusion system of an industrial enzyme, Pseudomonas fluorescens lipase, six possible fusion sites, V140, V176, K179, V226, V232, and K234, which were truncated from the C-terminal end of the mipA gene (MV140, MV176, MV179, MV226, MV232, and MV234) were examined. The whole-cell lipase activities showed that MV140 was the best among the six anchoring motifs. Furthermore, the lipase activity obtained using MV140 as the anchoring motif was approximately 20-fold higher than that of the previous anchoring motifs FadL and OprF but slightly higher than that of YiaTR232. Western blotting and confocal microscopy further confirmed the localization of the fusion lipase displayed on the E. coli surface using the truncated MV140. Additionally the MV140 motif could be used for successfully displaying another industrial enzyme, α-amylase from Bacillus subtilis. These results showed that the fusion proteins using the MV140 motif had notably high enzyme activities and did not exert any adverse effects on either cell growth or outer membrane integrity. Thus, this study shows that MipA can be used as a novel anchoring motif for more efficient bacterial surface display in the biotechnological and industrial fields.
Laser diagnostic method in a plasma display discharge cell was introduced. The information of electric field, potential and electron temperature et al. in the surface of plasma display panel can be measured using laser induced fluorescence spectroscopy. However, because of the very small discharge dimension of ${\sim}$ 100 ${\mu}m$, the measurement attempt has almost not been performed. In this paper, the direct measurement possibility of the parameters and the recent work of electric field measurement are demonstrated in the plasma display panel.
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