TTYH2 is a calcium-activated, inwardly rectifying anion channel that has been shown to be related to renal cancer and colon cancer. Based on the topological prediction, TTYH2 protein has five transmembrane domains with the extracellular N-terminus and the cytoplasmic C-terminus. In the present study, we identified a vesicle transport protein, ${\beta}$-COP, as a novel specific binding partner of TTYH2 by yeast two-hybrid screening using a human brain cDNA library with the C-terminal region of TTYH2 (TTYH2-C) as a bait. Using in vitro and in vivo binding assays, we confirmed the protein-protein interactions between TTYH2 and ${\beta}$-COP. We also found that the surface expression and activity of TTYH2 were decreased by co-expression with ${\beta}$-COP in the heterologous expression system. In addition, ${\beta}$-COP associated with TTYH2 in a native condition at a human colon cancer cell line, LoVo cells. The over-expression of ${\beta}$-COP in the LoVo cells led to a dramatic decrease in the surface expression and activity of endogenous TTYH2. Collectively, these data suggested that ${\beta}$-COP plays a critical role in the trafficking of the TTYH2 channel to the plasma membrane.
Phytase improves the bioavailability of phytate phosphorus in plant foods to humans and animals, and reduces the phosphorus pollution of animal waste. We have engineered the cell surface of the yeast. Saccharomyces cerevisiae, by anchoring active fungal phytase on its cell wall, in order to apply it as a dietary supplement containing bioconversional functions in animal foods and a whole cell bio-catalyst for the treatment of waste. The phytase gene (phyA) of Aspergillus niger with a signal peptide of rice amylase 1A (Ramy1A) was fused with the gene encoding the C-terminal half (320 amino acid residues from the C-terminus) of yeast ${\alpha}-agglutinin$, a protein which is involved in mating and is covalently anchored to the cell wall. The resulting fusion construct was introduced into S. cerevisiae and expressed under the control of the constitutive glyceraldehydes-3-phosphate dehydrogenase (GPD) promoter. Phytase plate assay revealed that the surface-engineered cell exhibited a catalytically active opaque zone which was restricted to the margin of the colony. Additionally, the phytase activity was detected in the cell fraction, but was not detected in the culture medium when it was grown in liquid. These results indicate that the phytase was successfully anchored to the cell surface of yeast and was displayed as its active form. The amount of recombinant phytase on the surface of yeast cells was estimated to be 16,000 molecules per cell.
Park, Jung-Hyun;Cho, Eun-Wie;Lee, Dong-Gun;Park, Jung-Min;Lee, Yun-Jung;Choi, Eun-A;Kim, Kill-Lyong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제10권6호
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pp.844-850
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2000
The specific binding and internalization of viral particles is an essential step for the successful infection of viral pathogens. In the case of the hepatitis B virus (HBV), virions bind to the host cell via the preS domain of the viral surface antigen and are subsequently internalized by endocytosis. HBV-preS specific receptors are primarily expressed on hepatocytes, however, viral DNA and proteins have also been detected in extrahepatic sites, suggsting that celluar recepators for HBV may also exist on extrahepatic cells. Recently, an EBV-transformed B-cell line was identified onto which the preS region binds in a receptor-ligand specific manner. In this study, this specific interaction was further characterized, and the binding region within the preS protein was locaized. Also the internalization after host cell attachment was visualized and analyzed by fluorescence-labeled HBV-preS1 proteins using confocal microscopy. Energy depletion by sodium azide treatment effectively inhibited the internalization of the membrane-bound preS1 ligands, thereby indicating an energy-dependent receptor-mediated endocytotic pathway. Accordingly, the interaction of HBV-pres! with this specific B-cell line may serve as an effective model for an infection pathway in extrahepatic cells.
We modified polymer surfaces, polyethylene, polystyrene and polyester, to improve cellcompatibility. For surface modification of the polymers, we used various surface treatment methods; physicochemical oxidation methods such as plasma discharge, corona discharge, sulfuric acid and chloric acid treatments, and biological methods such as adsorption of plasma protein and fibronectin onto the polymer surfaces. The treated polymer surfaces were characterized by electron spectroscopy for chemical analysis ( ESCA ). The physicochemically treated polymers showed different surface chemical structures depending on the treated methods. The sulfuric acid-treated surfaces showed greater carboxyl groups than those of plasma- or corona- treated surfaces, while the chloric acid-treated one showed high density of hydroxyl group on the surface. By the biological treatments, the surfaces were uniformly coated with proteins. The fibronectin adsorbed on the surface seems to have unique properties for cell binding.
In this work, we isolated a surface layer protein (SLP) from a Bacillus thuringiensis (Bt) strain to evaluate it cytotoxic effects against MDA-MB-231 human breast cancer cells. AP11 was selected from a g roup of Bt strains using SLP olig onucleotides developed from Bacillus conserved regions. The AP11 strain was grown in Luria Bertani medium until the late exponential phase; an 86 kDa protein was extracted using 5 M LiCl and identified by liquid chromatography-tandem mass spectrometry. It corresponded to a multispecies SLP highly similar to previously described SLPs in Bt. The MDA-MB-231 breast cancer cells $LC_{50}$ was obtained using $0.25{\mu}g/ml$ of the isolated SLP. HaCat non-cancerous cells presented 90% survival using the same protein concentration. Our data suggest that SLP cytotoxicity against MDA-MB-231 could be induced by an interaction with the CDH11 cell membrane receptor.
Klochkova, Tatyana A.;Kwak, Min Seok;Kim, Gwang Hoon
ALGAE
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제31권4호
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pp.379-390
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2016
When a multinucleate cell of Bryopsis plumosa was collapsed by a physical wounding, the extruded protoplasm aggregated into numerous protoplasmic masses in sea water. A polysaccharide envelope which initially covered the protoplasmic mass was peeled off when a cell membrane developed on the surface of protoplast in 12 h after the wounding. Transmission electron microscopy showed that the protoplasmic mass began to form a continuous cell membrane at 6 h after the wounding. The newly generated cell membrane repeated collapse and rebuilding process several times until cell wall developed on the surface. Golgi bodies with numerous vesicles accumulated at the peripheral region of the rebuilding cell at 24 h after the wounding when the cell wall began to develop. Several layers of cell wall with distinctive electron density developed within 48-72 h after the wounding. Proteome profile changed dramatically at each stage of cell rebuilding process. Most proteins, which were up-regulated during the early stage of cell rebuilding disappeared or reduced significantly by 24-48 h. About 70-80% of protein spots detected at 48 h after the wounding were newly appeared ones. The expression pattern of 29 representative proteins was analyzed and the internal amino acid sequences were obtained using mass spectrometry. Our results showed that a massive shift of gene expression occurs during the cell-rebuilding process of B. plumosa.
한국응용약물학회 2002년도 창립10주년기념 및 국립독성연구원 의약품동등성평가부서 신설기념 국재학술대회:생물학적 동등성과 의약품 개발 전략을 위한 국제심포지움
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pp.89-96
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2002
The importance of apoptosis in normal development and pathogenesis has been well recognized, and explosive progress towards dissecting its commitment step has been made during the past decade. Mitochondria, Apaf-1, caspase, and bcl-2 family members play central roles in the commitment step. However, it is still unclear how upstream cell survival pathways regulate apoptosis. It is also unknown whether the bcl-2 family members have any effect on the upstream survival pathways. We have demonstrated that the anti-apoptotic gene product bcl-2 greatly induces expression of the tissue inhibitor of metalloproteinase-1 (TIMP-1) in human breast epithelial cells. Surprisingly, we found that TIMP-1, like bcl-2, is a potent inhibitor of apoptosis induced by a variety of stimuli. Functional studies indicate that TIMP-1 inhibits a classical apoptotic pathway mediated by caspases, and that focal adhesion kinase (FAK)/Pl 3-kinase and mitogen activated protein kinase (MAPK) are critical for TIMP- 1 -mediated cell survival. We also showed specific association of TIMP-1 with the cell surface. Consistently, a 150-H)a surface protein was identified in MCF10A cells that specifically binds TIMP-1. Taken together, we hypothesize that TIMP-I binding on the cell surface induces a cell survival pathway that regulates the common apoptosis commitment step. The results of these studies will address a new paradigm in the regulation of apoptosis by an extracellular molecule TIMP-1, and also greatly enhance our understanding of TIMP-1's pleiotropic activity in many physiological and pathological processes. This information may also be useful in designing more rational therapeutic interventions aimed at modulating the anti-apoptotic activity of TIMP-1 .
한국자기공명학회 2002년도 International Symposium on Magnetic Resonance
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pp.90-90
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2002
Syndecans, transmembrane heparan sulfate proteoglycans, are coreceptors with integrin in cell adhesion process. It forms a ternary signaling complex with protein kinase C and phosphatidylinositol 4,5 bisphosphate (PIP2) for integrin signaling. NMR data indicates that cytoplasmic domain of syndecan-4 (4L) undergoes a conformational transition in the presence of PIP2, forming oligomeric conformation. The structure based on NMR data demonstrated that syndecan-4L itself forms a compact intertwined symmetric dimer with an unusual clamp shape for residues Leu$^{186}$ -Ala$^{195}$ . The molecular surface of the syndecan-4L dimer is highly positively charged. In addition, no inter-subunit NOEs in membrane proximal amino acid resides (Cl region) has been observed, demonstrating that the Cl region is mostly unstructured in syndecan-4L dimmer. However, the complex structure in the presence of PIP2 induced a high order multimeric conformation in solution. In addition, phosphorylation of cytoplasmic domain induces conformational change of syndecan-4, resulting inhibition of PKC signaling. The NMR structural data strongly suggest that PIP2 promotes oligomerization of syndecan-4 cytoplasmic domain for PKC activation and further induces structural reorganization of syndecan for mediating signaling network in cell adhesion procedure.
The identification of bacteriophage proteins on the surface of Lactobacillus rhamnosus Pen was performed by LC-MS/MS analysis. Among the identified proteins, we found a phage-derived major tail protein, two major head proteins, a portal protein, and a host specificity protein. Electron microscopy of a cell surface extract revealed the presence of phage particles in the analyzed samples. The partial sequence of genes encoding the major tail protein for all tested L. rhamnosus strains was determined with specific primers designed in this study. Next, RT-PCR analysis allowed detection of the expression of the major tail protein gene in L. rhamnosus strain Pen at all stages of bacterial growth. The transcription of genes encoding the major tail protein was also proved for other L. rhamnosus strains used in this study. The present work demonstrates the spontanous release of prophage-encoded particles by a commercial probiotic L. rhamnosus strain, which did not significantly affect the bacterial growth of the analyzed strain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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