Leaf mesophyll protoplasts of Dianthus superbus were cultured in MSP1 liquid medium supplemented with 0.5 mg/L BAP, 2.0 mg/L NAA and 9% mannitol. Protoplast-derived colonies were formed after 3 to 4 weeks of culture in the dark at 27$^{\circ}C$. These colonies were kept under continuous illumination (21.5 $\mu$E. m-2 sec-1) for 2 weeks and finally most of the colonies became green microcalli, about 3 mm in diameter. When green microcalli were transferred to MS solidified medium with 2.0 mg/L 2,4-D, they formed embryogenic calli after 4 week of culture. These calli were then transferred onto $N_{6}$ medium containing 0.1mg/L 2,4-D, 0.1 mg/L NAA, 2.0 mg/L kinetin and 2.0 g/L casein hydrolysate and cultured under illumination. After 5 weeks of culture the calli gave rise to multiple shoots of 10 to 15 per callus. Upon transfer onto MS medium containing 2.0 mg/L NAA, they were noted. The regenerates were successfully transplanted into potting soil.
The characteristics of plantlets redifferentiated from calli of F1 hybrid between Panax ginseng and Panax quinquefolius were investigated. Growth of plantlets redifferentiated from F1 hybrid was superior to the plants redifferentiated from Korean ginseng. Stem color of plantlets redifferentiated from F1 hybrid was more purple than that from Korean ginseng and leaf color of the former was also greener than that of the latter. Chunpoong, Yunpoong and Seonweon which are belonged to Korean ginseng showed same PCR band(A), while American ginseng showed different PCR band (B) in Internal Transcribed Spacer (ITS) region. F1 hybrid exhibited both A and B PCR band which belonged to Korean ginseng and American ginseng, respectively. F1 hybrid calli and plantlets redifferentiated from F1 hybrid calli showed same PCR band with that of F1 hybrid plant in ITS region. Therefore it was confirmed that piantlets redifferentiated from F1 hybrid exhibited genetic stability in ITS region.
The efficiency of regeneration of callus and explants from leaf and stem disks of Epimedium koreanum was examined on the MS media containing 2,4-D, NAA, Kinetin, BA and TDZ. Calli were formed on the 2mg/l 2,4-D media at the rate of 32% from leaf discs and 52% from stems. No callus was produced on the media which are containing BA or TDZ alone. The combination of 2,4-D and BA showed the effect on the formation of callus. The combination of 2mg/l 2,4-D and 0.lmg/l BA in the MS media had produced the highest percentage of callus formation, 50% from leaf discs and 40% from stems, respectively. The combination of 2mg/l 2,4-D and 1mg/1 BA in the MS media had affected the formation of callus in the rate of 40% from leaf discs and 25% from stems. The combined plant growth regulators of 2,4-D and BA increased the formation of calli from leaf discs, but single treatment of 2,4-D showed the highest callus formation from stems. Multiple shoots from leaf discs were formed on the media containing NAA, BA, kinetin, and TDZ. The highest number of multiple shoots were obtained 0.1mg/l NAA combined with 1mg/l kinetin. As a result, leaf discs or stems can be used for the mass propagation of Epimedium koreanum, but stem elongation of shoots from calli was not easy.
In this study, plant regeneration and Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation Kentucky bluegrass(Poa pratensis L.) were evaluated. Three different types of calli were produced depending on the combinations of growth regulators. They were non-friable brown or gray-colored callus (type I), compact, friable and yellow or white-colored callus (typeII), and soft, watery translucent callus with differentiated structure (typeIII). The highest regenerable organogenic callus (typeII) was obtained on the medium containing 1mg/L, 2,4-D and 0.1mg/L BA. Additionally, the production of typeII calli increased significantly when AgNO$_3$ was added to the callus induction and growth medium. The highest frequency of multiple shout formation from typeII callus was obtained on MS medium containing 1mg/L BA and 1mg/L Thidiazuron(TDZ). The organogenic calli(typeII) were inoculated with Agrobacterium tumefaciens strain EHA101 harboring the binary vector pIG121Hm with $\beta$-glucuronidase gene, and various factors were found to influence the transfer-DNA delivery efficiency. The highest transient GUS activity was observed on typeIIcallus. In the present work, we reported the first transient GUS activity of Kentucky bluegrass mediated by Agrobacterium tumefaciens. Our system may contribute to genetic improvement for breed-recalcirtrant grass species, Kentucky bluegrass.
Protoplasts were isolated from hypocotyls, cotyledons, and young leaves of Chinese cabbage grown under in vitro environmental condition. An enzyme mixture of 1% Cellulysin and 0.5% Macerozyme in combination with 0.4 M mannitol was most effective condition for protoplast isolation. The highest yield of protoplasts, 7.6$\times$10$^{5}$ protoplast/g of fresh weight, was obtained from the treatment of leaves for 12~16 hours at 27~28$^{\circ}C$ with shaking at 30 rpm. The most suitable medium for an initial cell division was K8p basal medium supplemented with 5 mg/L 2,4-D and 2 mg/L kinetin. Within 7~10 days, protoplasts derived from hypocotyl and cotyledon tissues formed cell colonies. When the cells were grown at the size of 8~10 cells, they were embedded into semi-solid medium containing 0.2% agarose. Calli derived from protoplast culture were transferred to the 100 different types of plant regeneration media, but no completely regenerated plants from inbred lines of Chinese cabbage used for this study wore obtained, though frequent rooting took place in several media tested.
Resistant cell lines to azetidine-2-carboxylic acid (AZCA) were selected through rice embryo culture after mutagenic treatment of callus irradiated with 30,50,70,90 and 120 Gy. The optimum AZCA concentration for the selection of resistant cell lines was 3 or 4 mM AZCA considering $LD_{50}$ and the fresh weight of callus. Survival rate of the AZCA resistant callus showed remarkable increase in the callus irradiated with 50 and 70 Gy. Regeneration rate of the AZCA resistant callus was much lower on the whole. Ninety and 120 Gy increased the regeneration rate for calli selected from 3 and 4 mM AZCA, respectively. Based on fresh weight, survival rate and regeneration for selection of the AZCA resistant cell line, 50-90 Gy was considered as the optimum range of gamma irradiation. Irradiated calli selected from AZCA were more tolerant to NaCl than those from non-irradiated calli. It suggests that elevated resistance to osmotic stress resulted from mutagenic treatment. The level of free proline content in the AZCA resistant cell line was increased up to 3.5 times compared with that in the control. Proline content in the regenerant derived from the AZCA resistant cell line also increased to 1.7 times that from the control plants regenerated from callus grown in AZCA free medium. Selection of proline overproducing cell lines by in vitro mutagenesis was successful and seems to be useful for improvement of stress tolerance in this crop.
Immature flower buds of 'Desio' carnation were cultured on MS agar medium supplemented with 1 ㎎/L 2,L-D. Embryogenic calli were formed from 5-10% of the buds less than 20 ㎜ in length, but only non-embryogenic calli were produced from explants of shoot apex leaf, internode, and flowere buds larger than 20 ㎜. The same method was applied to 16 cultivars of cut Sower carnation and embryogenic calli were obtained in 7 cultivars. Several embryogenic callus lines were selected and maintained through subcultures over 120 weeks without loss of embryogenic competence. The embryogenic cultures were also proliferated rapidly in liquid agitation cultures using MS medium supplemented with 1mg/L 2,4-D. Numerous embryos were formed on the periphery of the cell aggregates upon transfer to auxin-free MS agar medium. Plantlets were transplanted in potting soil and grown to bloom in six months.
$\beta$-Glucuronidase (GUS) gene of Escherichia coli was introduced into sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) cells by particle bombardment and expressed in the regenerated plants. Microprojectiles coated with DNA of a binary vector pBI121 carrying CaMV35S promoter-GUS gene fusion and a neomycin phosphotransferase gene as selection marker were bombarded on embryogenic calli which originated from shoot apical meristem-derived callus and transferred to Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 100 mg/L kanamycin. Bombarded calli were subcultured at 4 week intervals for six months. Kanamycin-resistant calli transferred to MS medium supplemented with 0.03 mg/L 2iP, 0.03 mg/L ABA, and 50 mg/L kanamycin gave rise to somatic embryos. Upon transfer to MS basal medium without kanamycin, they developed into plantlets. PCR and northern analyses of six regenerants transplanted to potting soil confirmed that the GUS gene was inserted into the genome of the six regenerated plants. A histochemical assay revealed that the GUS gene was preferentially expressed in the vascular bundle and the epidermal layer of leaf, petiole, and tuberous root.
Immature and mature embryos of 18 Korean wheat genotypes were cultured in vitro to develop an efficient method of callus formation and plant regeneration, and to compare the responses of both embryo cultures. Immature and mature embryos were placed on a solid agar medium containing the MS salts and vitamins, 30g/l maltose, 2 mg/l 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), and amino acids. The developed calli were maintained on regeneration medium containing MS salts and B5 vitamins, 20 g/l sucrose, and the combination of two plant growth regulators, 6-benzylaminopurine (BAP) and indole-3-acetic acid (IAA). Immature embryos in most genotypes showed high efficiency of callus induction except three genotypes; Eunpamil, Chunggemil, and Namhaemil, and significant differences among the genotypes. Plant regeneration of calli induced from immature embryos showed high efficiency in Geurumil (56.5%), Tapdongmil (50.5%), Gobunmil (45.5%), and Urimil(42.2%). The analysis of variance showed significant differences for regeneration frequency among the genotypes. Mature embryos showed low callus induction frequency compared with that in immature embryos, and significant differences among the genotypes. Plant regeneration of calli induced from mature embryos showed high efficiency in Keumkangmil (33.33%), Tapdongmil(28.13%), and Geurumil (27.78%). The analysis of variance showed significant differences for plant regeneration frequency among the genotypes.
Ion-pair reverse phase HPLC techniques were used to compare the contents of IAA and IAAsp in the embryogenic and non-embryogenic calli derived from ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer) root tissues. The contents of IAA and IAAsp of the embryogenic callus were much higher (7 to 18 X respectively) than those of non-embryogenic callus. There is a distinct fluorescent peak of an unknown component in the HPLC profile of the extract for indolic compounds from non-embryo-genic callus. This distinct difference may be employed as a promising parameter to screen the culture pieces for obtaining the calli with high potential for embryoid formation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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