Kim, Young-Sook;Ji, Suk;Jung, Hong-Moon;Woo, Kyung-Mi;Choi, Young-Nim
International Journal of Oral Biology
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v.32
no.3
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pp.103-107
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2007
We hypothesized that plaque-associated bacteria may have a role in maintenance of alveolar bone. To test it, immortalized gingival epithelial HOK-16B cells were co-cultured with live or lysed eight plaque bacterial species and the expression levels of bone morphogenetic protein (BMP)-2 and -4 were examined by real time reverse transcription-polymerase chain reaction. Un-stimulated HOK-16B cells expressed both BMP-2 and -4. Co-culture with plaque bacterial lysates had significant effects on the level of BMP-2 but not on that of BMP-4. Five species including Streptococcus sanguinis, S. gordonii, Veillonella atypica, Porphyromonas gingivalis, and Treponema denticola substantially up-regulated the level of BMP-2. In contrary to the upregulatory effect of lysate, live T. denticola suppressed the expression of BMP-2. In addition, in vitro osteoblastic differentiation assay using C2C12 cells and the conditioned medium of HOK-16B cells confirmed the production of BMPs by gingival epithelial cells and the modulation of BMP expression by the lysates of S. sanguinis and T. denticola. In conclusion, we have shown that plaque bacteria can regulate the expression of BMP-2 by gingival epithelial cells, the physiologic meaning of which needs further investigation.
Indole-3-acetic acid (IAA) production is a typical mechanism of plant growth promotion by some rhizobacteria. However, a functional genomic study is necessary to unravel the function and mechanism of IAA signaling during rhizobacteria-plant interactions. In this study, the expression of SlIAA1 and SlIAA9 among the auxin response genes in tomato was examined during the interaction between IAA-producing Acinetobacter guillouiae SW5 and tomato plants. When 3-day grown tomato seedlings were treated for 30 min with 10~100 µM of IAA produced by bacteria from tryptophan, the relative mRNA levels of SlIAA1 and SlIAA9 increased significantly compared with those of the control, demonstrating that IAA produced by this bacterium can induce the expressions of both genes. Inoculation of live A. guillouiae SW5 to tomato seedlings also increased the expressions of SlIAA1 and SlIAA9, with more mRNA produced at higher bacterial density. In contrast, treatment of tomato seedlings with dead A. guillouiae SW5 did not significantly affect the expression of SlIAA1and SlIAA9. When 3-day bacterial culture in tomato root exudates was administered to tomato seedlings, the relative mRNA level of SlIAA1 increased. This result indicated that the plant may take up IAA produced by bacteria in plant root exudates, which may increase the expression of the auxin response genes, with resulting promotion of plant growth.
JaeKal, Jun;Abraham, Edward;Azam, Tania;Netea, Mihai G.;Dinarello, Charles A.;Lim, Jong-Seok;Yang, Young;Yoon, Do-Young;Kim, Soo-Hyun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.11
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pp.1862-1867
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2007
An individual's immune response is critical for host protection from many different pathogens, and the responsiveness can be assessed by the amount of cytokine production upon stimulating bacterial components such as lipopolysaccharide (LPS). The difference between individuals in their peripheral blood mononuclear cells (PBMC) responsiveness to LPS, a Gram-negative endotoxin, was investigated from 27 healthy individuals. We observed a large variation in $IFN{\gamma}$ production among different individuals. The PBMC of the consistently three highest and three lowest $IFN{\gamma}$ producers were investigated. Since previous studies described that a single point mutation in the coding region of TLR2 and TLR4 is linked to the individual responsiveness to pathogenic bacterial infections, we first examined the known point mutations in the coding region of $TLR2^{Pro681His}$, $TLR4^{Pro714His}$ located in the cytoplasmic regions of the Toll-like domain as well as $TLR4^{Asp299Gly}$ located in the extracellular region. None of these mutations were associated with an individual's responsiveness to LPS, despite the presence of $TLR4^{Asp299Gly}$ mutation. Further investigation revealed that the variation of PBMC responsiveness to LPS among healthy individuals was due to constitutive expression levels of TLR4 and TLR2. This result is consistent with an aging-related low expression of Toll-like receptors in the mouse model of LPS responsiveness. The present study therefore suggests that the constitutive expression levels of TLR2 and TLR4 may contribute to the individual response to LPS.
The intestinal environment plays a critical role in maintaining swine health. Many factors such as diet, microbiota, and host intestinal immune response influence the intestinal environment. Intestinal alkaline phosphatase (IAP) is an important apical brush border enzyme that is influenced by these factors. IAP dephosphorylates bacterial lipopolysaccharides (LPS), unmethylated cytosine-guanosine dinucleotides, and flagellin, reducing bacterial toxicity and consequently regulating toll-like receptors (TLRs) activation and inflammation. It also desphosphorylates extracellular nucleotides such as uridine diphosphate and adenosine triphosphate, consequently reducing inflammation, modulating, and preserving the homeostasis of the intestinal microbiota. The apical localization of IAP on the epithelial surface reveals its role on LPS (from luminal bacteria) detoxification. As the expression of IAP is reported to be downregulated in piglets at weaning, LPS from commensal and pathogenic gram-negative bacteria could increase inflammatory processes by TLR-4 activation, increasing diarrhea events during this phase. Although some studies had reported potential IAP roles to promote gut health, investigations about exogenous IAP effects or feed additives modulating IAP expression and activity yet are necessary. However, we discussed in this paper that the critical assessment reported can suggest that exogenous IAP or feed additives that could increase its expression could show beneficial effects to reduce diarrhea events during the post weaning phase. Therefore, the main goals of this review are to discuss IAP's role in intestinal inflammatory processes and present feed additives used as growth promoters that may modulate IAP expression and activity to promote gut health in piglets.
Kim, Grace Yoon-Hee;Hong, Chang-Wan;Park, Jung-Hyun
IMMUNE NETWORK
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v.11
no.1
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pp.1-10
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2011
Interleukin-7 (IL-7) is an essential cytokine for T cells. However, IL-7 is not produced by T cells themselves such that T cells are dependent on extrinsic IL-7. In fact, in the absence of IL-7, T cell development in the thymus as well as survival of naive T cells in the periphery is severely impaired. Furthermore, modulating IL-7 availability in vivo either by genetic means or other experimental approaches determines the size, composition and function of the T cell pool. Consequently, understanding IL-7 expression is critical for understanding T cell immunity. Until most recently, however, the spatiotemporal expression of in vivo IL-7 has remained obscured. Shortage of such information was partly due to scarce expression of IL-7 itself but mainly due to the lack of adequate reagents to monitor IL-7 expression in vivo. This situation dramatically changed with a recent rush of four independent studies that describe the generation and characterization of IL-7 reporter mice, all utilizing bacterial artificial chromosome transgene technology. The emerging consensus of these studies confirmed thymic stromal cells as the major producers of IL-7 but also identified IL-7 reporter activities in various peripheral tissues including skin, intestine and lymph nodes. Strikingly, developmental and environmental cues actively modulated IL-7 reporter activities in vivo suggesting that IL-7 regulation might be a new mechanism of shaping T cell development and homeostasis. Collectively, the availability of these new tools opens up new venues to assess unanswered questions in IL-7 biology in T cells and beyond.
Pleurotus ostreatus, the oyster mushroom, is one of the most important edible mushrooms. It is especially susceptible to bacterial blotch disease, which is caused by Pseudomonas tolaasii. In order to develop bacterial blotch disease-resistant transgenic mushroom, NUECIN cDNA, a gene for an antibacterial peptide cloned from Bombyx mori, was overexpressed in Pleurotus ostreatus. NUECIN cDNA was fused to the ${\beta}$-TUBULIN promoter of oyster mushroom and co-transformed with the pTRura3-2 vector into the uracil auxotrophic mutant strain. Twelve transformants containing the NUECIN gene were identified by genomic PCR and Southern blot analysis. NUECIN gene expression was confirmed by Northern blot analysis. Three transformants showed the transcriptional expression of the gene. However, we could not detect expression of the protein in the transformants. This study showed the possibility of transgenic mushroom development for disease resistance.
Rezaee Mohammad Ahangarzadeh;Rezaee Abbas;Moazzeni Seyed Mohammad;Salmanian Ali Hatef;Yasuda Yoko;Tochikubo Kunio;Pirayeh Shahin Najar;Arzanlou Mohsen
Journal of Microbiology
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v.43
no.4
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pp.354-360
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2005
Heat-labile enterotoxin B subunit (LTB) of enterotoxigenic Escherichia coli (ETEC) is both a strong mucosal adjuvant and immunogen. It is a subunit vaccine candidate to be used against ETEC-induced diarrhea. It has already been expressed in several bacterial and plant systems. In order to construct yeast expressing vector for the LTB protein, the eltB gene encoding LTB was amplified from a human origin enterotoxigenic E. coli DNA by PCR. The expression plasmid pLTB83 was constructed by inserting the eltB gene into the pYES2 shuttle vector immediately downstream of the GAL1 promoter. The recombinant vector was transformed into S. cerevisiae and was then induced by galactose. The LTB protein was detected in the total soluble protein of the yeast by SDS-PAGE analysis. Quantitative ELISA showed that the maximum amount of LTB protein expressed in the yeast was approximately $1.9\%$ of the total soluble protein. Immunoblotting analysis showed the yeast-derived LTB protein was antigenically indistinguishable from bacterial LTB protein. Since the whole-recombinant yeast has been introduced as a new vaccine formulation the expression of LTB in S. cerevisiae can offer an inexpensive yet effective strategy to protect against ETEC, especially in developing countries where it is needed most.
Despite evidence that bacteria-sensing Toll-like receptors (TLRs) are activated in salivary gland tissues of Sjogren syndrome (SS) patients, the role of oral bacteria in SS etiopathogenesis is unclear. We previously reported that two SS-associated oral bacteria, Prevotella melaninogenica (Pm) and Rothia mucilagenosa (Rm), oppositely regulate the expression of major histocompatibility complex class I (MHC I) in human salivary gland (HSG) cells. Here, we elucidated the mechanisms underlying the differential regulation of MHC I expression by these bacteria. The ability of Pm and Rm to activate TLR2, TLR4, and TLR9 was examined using TLR reporter cells. HSG cells were stimulated by the TLR ligands, Pm, and Rm. The levels of MHC I expression, bacterial invasion, and viability of HSG cells were examined by flow cytometry. The hypoxic status of HSG cells was examined using Hypoxia Green. HSG cells upregulated MHC I expression in response to TLR2, TLR4, and TLR9 activation. Both Pm and Rm activated TLR2 and TLR9 but not TLR4. Rm-induced downregulation of MHC I strongly correlated with bacterial invasion and cell death. Rm-induced cell death was not rescued by inhibitors of the diverse cell death pathways but was associated with hypoxia. In conclusion, Pm upregulated MHC I likely through TLR2 and TLR9 activation, while Rm-induced hypoxia-associated cell death and the downregulation of MHC I, despite its ability to activate TLR2 and TLR9. These findings may provide new insight into how oral dysbiosis can contribute to salivary gland tissue damage in SS.
Park, Sang-Ryeol;Cha, Eun-Mi;Kim, Tae-Hun;Han, Se-Youn;Hwang, Duk-Ju;Ahn, Il-Pyung;Cho, Kwang-Soo;Bae, Shin-Chul
Journal of Life Science
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v.22
no.2
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pp.177-183
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2012
Bacterial wilt (brown rot) caused by Ralstonia solanacearum (Rs) is one of the most devastating bacterial plant diseases in potatoes. To isolate bacterial wilt disease resistance-related genes from the potato, the StACRE (HM749652) gene was isolated and a sequenced search was performed using functional orthologs of Solanaceae from potatoes. StACRE is homologous to the tobacco NtACRE 132 protein and belongs to the ATL family involved in ubiquitination. To analyze the expression pattern of this gene, RT-PCR was performed with potato treated with salicylic acid (SA) and Rs (KACC 10722). StACRE was strongly induced 3 hours after treatment with SA and 12 hours after infection with Rs. To investigate its biological functions in the potato, we constructed a vector for overexpression in the potato by the Gateway system, and then generated transgenic potato plants. The gene expression of transgenic potato was analyzed by northern blot analysis. In the results of disease resistance assay in relation to bacterial wilt, StACRE overexpressed transgenic potato plants were shown to have more resistance than wild-type potato.
Although microorganisms are, in fact, the most diverse and abundant type of organism on Earth, the ecological functions of microbial populations remains poorly understood. A variety of bacteria including marine Vibrios encounter numerous ecological challenges, such as UV light, predation, competition, and seasonal variations in seawater including pH, salinity, nutrient levels, temperature and so forth. In order to survive and proliferate under variable conditions, they have to develop elaborate means of communication to meet the challenges to which they are exposed. In bacteria, a range of biological functions have recently been found to be regulated by a population density-dependent cell-cell signaling mechanism known as quorum-sensing (QS). In other words, bacterial cells sense population density by monitoring the presence of self-produced extracellular autoinducers (AI). N-acylhomoserine lactone (AHL)-dependent quorum-sensing was first discovered in two luminescent marine bacteria, Vibrio fischeri and Vibrio harveyi. The LuxI/R system of V. fischeriis the paradigm of Gram-negative quorum-sensing systems. At high population density, the accumulated signalstrigger the expression of target genes and thereby initiate a new set of biological activities. Several QS systems have been identified so far. Among them, an AHL-dependent QS system has been found to control biofilm formation in several bacterial species, including Pseudomonas aeruginosa, Aeromonas hydrophila, Burkholderia cepacia, and Serratia liquefaciens. Bacterial biofilm is a structured community of bacterial cells enclosed in a self-produced polymeric matrix that adheres to an inert or living surface. Extracellular signal molecules have been implicated in biofilm formation. Agrobacterium tumefaciens strain NT1(traR, tra::lacZ749) and Chromobacterium violaceum strain CV026 are used as biosensors to detect AHL signals. Quorum sensing in lactic acid bacteria involves peptides that are directly sensed by membrane-located histidine kinases, after which the signal is transmitted to an intracellular regulator. In the nisin autoregulation process in Lactococcus lactis, the NisK protein acts as the sensor for nisin, and NisR protein as the response regulator activatingthe transcription of target genes. For control over growth and survival in bacterial communities, various strategies need to be developed by which receptors of the signal molecules are interfered with or the synthesis and release of the molecules is controlled. However, much is still unknown about the metabolic processes involved in such signal transduction and whether or not various foods and food ingredients may affect communication between spoilage or pathogenic bacteria. In five to ten years, we will be able to discover new signal molecules, some of which may have applications in food preservation to inhibit the growth of pathogens on foods.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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