Two bacterial strains producing extracellular man nanase were isolated from doenjang, a traditionally fermented soybean paste in Korea. The isolates, WL-6 and WL-11, were identified as Bacillus subtiis on the basis of their 16S rRNA gene sequences, morphological, and biochemical properties. Two genes encoding the mannanase of both B. subtilis WL-6 and B. subtilis WL-11 were each cloned into Escherichia coli, and their nucleotide sequences were determined. Both mannanase genes consisted of 1,086 nucleotides, encoding polypeptides of 362 amino acid residues. The deduced amino acid sequences of the two WL-6 and WL-11 mannanases, designated Man6 and Man11, respectively, differed from each other by eight amino acid residues, and they were highly homologous to those of mannanases belonging to the glycosyl hydrolase family 26. The 26 amino acid stretch in the N-terminus of Man6 and Man11 was a predicted signal peptide. Both Man6 and Man11 were localized at the level of 94–95% in an intracellular fraction of recombinant E. coli cells. The enzymes hydrolyzed both locust bean gum and mannooligosaccharides, including mannotriose, mannotetraose, mannopentaose, and mannohexaose, forming mannobiose and mannotriose as predominant products. The optimal reaction conditions were 55°C and pH 6.0 for Man6, and 60°C and pH 5.5 for Man11. Man11 was more stable than Man6 at high temperatures.
In order to reproduce and improve quality of traditional kochujang, various raw materials were added to prepare kochujang by replacing part of the glutinous rice. Chemical composition, microbial characteristics and enzyme activities were investigated during fermentation. Crude protein and salt contents of kochujang did not change significantly during fermentation, but moisture contents increased linearly. The pH and titratable acidity of kochujang changed little in garlic added group. The viable cell counts of aerobic bacteria and yeasts in the kochujang increased until 60 days of fermentation and then decreased slowly except for the garlic added group in which they increased during the last period of fermentation. Aerobic bacterial count did not show any remarkable differences among the samples and slowly decreased after 60 days of fermentation. The activities of liquefying and saccharifying amylases decreased until 45 days, but increased at 60th day. Acidic protease activities of each group were strong during the initial period, but neutral protease showed the highest activity from the 30 to 45 days of fermentation. Protease activities increased by addition of soy sauce, Chinese matrimony vine and purple sweet potato.
Bee pollen is produced by honeybees and is considered one of the most balanced and nourishing nutritional supplements available. Historically, bee pollen has been prescribed for its healing properties and consumed for its high-energy supply. Recent research has provided evidence that bee pollen has diverse biological activities, such as anti-oxidant, anti-inflammatory, anti-bacterial, and even anti-cancer effects. However, the outer membrane of the pollen grain, exine, is highly resistant to most acidic solutions, high pressure, and even digestive enzymes, and the resulting low bioavailability limits its nutritional and clinical applications. This study applied a wet-grinding method to destroy the exine effectively, and it then examined the pollen's enhanced biological activity. First, microscopic observations provided strong evidence that wet grinding destroyed the exine time-dependently. In addition, the content of polyphenols, well-known ingredients of bee pollen and used as internal standards for the quality control of commercial pollen preparations, increased up to 11-fold with wet grinding. Further, the anti-oxidant activity demonstrated on the ABTS anti-oxidant assay, as well as the DPPH radical scavenging assay, was also dramatically increased. Together, the results presented here support a new technology by which bee pollen can be used as a resource for medical, nutritional, and cosmetic applications.
Keratinase is widely used in certain industrial applications. The present study sought to improve the culture conditions of Bacillus subtilis SMMJ-2 to facilitate mass production of keratinase. Strain SMMJ-2 was irradiated by ultraviolet light and the resulting isolates were tested for keratinase activity. Isolates displaying elevated keratinase activity were selected and used to determine the optimum temperature (24, 30, 37, 45, $55^{\circ}C$) for bacterial keratinase production during a 4 day incubation period. The highest enzyme activity (55 units/mL/min), from a Bacillus subtilis SMMJ-2 mutant (mutant No. 2) was demonstrated following incubation at $30^{\circ}C$. The effects of carbon and nitrogen sources on keratinase production were confirmed by measuring the enzyme activity from the culture broth of the mutant strain cultured in various media containing different carbon source and nitrogen sources during a 4 day period. The optimal medium composition for producing keratinase consisted of 1% glucose, 0.7% $K_2HPO_4$, 0.2% $K_2HPO_4$, and 1.2% soybean meal. Optimal initial pH and temperature for producing keratinase were 7.0 and $30^{\circ}C$, respectively. Keratinases produced by B. subtilis SMMJ-2 and the mutant No. 2 were purified from the culture broth which used soybean meal as a nitrogen source. Membrane ultrafiltration, DEAE-sephacel ion exchange and Sephadex G-100 gel chromatography were used to purify the enzymes. The purified keratinases from both B. subtilis SMMJ-2 and the mutant No. 2 showed single bands and their molecular weights were estimated as 28 kDa and 42 kDa, respectively on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis.
Lim Kyoung-Suk;Son Shung-Hui;Kang Ho Young;Jun Hong-Ki
Journal of Life Science
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v.15
no.4
s.71
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pp.657-663
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2005
Collagenases are generally defined as enzymes that are capable of degrading the polypeptide backbone of native collagen under conditions that do not denature the protein. An extracellular collagenase-producing bacterial strain was isolated from kimchi and identified to be Bacillus subtilis JS-17 through morphological, cultural, biochemical characteristics and 16S rDNA sequence analysis. Optimum culture condition of Bacillus subtilis JS-17 for the production of collagenase was $1.5\%$ fructose, $1\%$ yeast extract, $0.5\%\;K_2HPO_4,\;0.4\%\;KH_2PO_4,\;0.01\%\;MgSO_4\cdot7H_2O,\;0.01\%\; MnSO_4\cdot4H_2O,\;,0.1\%$ citrate and $0.1\%\;CaCl_2$. The production of collagenase was optimal at $30^{\circ}C$ for 72 hr. A collagenase was isolated from the culture filtrate of Bacillus subtilis JS-17. The enzyme was purified using Amberlite IRA-900 column chromatography, Sephacryl S-300 HR column chromatography and DEAE-Sephadex A-50 column chromatography The purified collagenase has an specific activity 192.1 units/mg. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 28 kDa by SDS-PACE. The purified collagenase has $100\%$ activity up to $55^{\circ}C$.
It is extremely important to destroy the antigenicity of milk proteins for dietetic treatment of infants with milk allergy. Enzymatic digestion of milk protein is not only effective for destroying antigenicity, but it also is less liable to alter the nutritive value. Bovine casein was hydrolyzed with eight different commercial proteases derived from bacterias or fungi, either individually or in combination to eliminate protein allergenicity. The average molecular weight of casein hyrdolysates determined by size exclusion chromatography is about 550${\sim}$2,300 dalton range. Antigenicity of the casein hyrdolysates was not detected by heterologous passive cutaneous anaphylaxis in guinea pig-rabbit antiserum system. The inhibition test on the enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) showed that the antigenicity of casein hydrolysates is lowed up to 1/8,000 than that of intact bovine casein. As the enzyme reaction was carried out by the combination of bacterial and fungal protease, casein hydrolysates showed much lower bitterness and antigenicity. It suggests that these hydrolysates will be applied to many kinds of foods including the development of hypo-allergenic infant formula.
As an opportunistic bacterial pathogen, Pseudomonas aeruginosa PAO1 contains two phenazine-producing gene operons, phzA1B1C1D1E1F1G1 (phz1) and phzA2B2C2D2E2F2G2 (phz2), each of which is independently capable of encoding all enzymes for biosynthesizing phenazines, including phenazine-1-carboxylic acid and its derivatives. Other previous study reported that the RpoS-deficient mutant SS24 overproduced pyocyanin, a derivative of phenazine-1-carboxylic acid. However, it is not known how RpoS mediates the expression of two phz operons and regulates pyocyanin biosynthesis in detail. In this study, with deletion of the rpoS gene in the $PA{\Delta}phz1$ mutant and the $PA{\Delta}phz2$ mutant respectively, we demonstrated that RpoS exerted opposite regulatory roles on the expression of the phz1and phz2 operons. We also confirmed that the phz1 operon played a critical role and especially biosynthesized much more phenazines than the phz2 operon when the rpoS gene was knocked out in P. aeruginosa. By constructing the translational reporter fusion vector lasR'-'lacZ and the chromosomal fusion mutant $PA{\Delta}lasR::lacZ$, we verified that RpoS deficiency caused increased expression of lasR, a transcription regulator gene in a first quorum sensing system (las) that activates overexpression of the phz1 operon, suggesting that in the absence of RpoS, LasR might act as an intermediate in overproduction of phenazine biosynthesis mediated by the phz1 operon in P. aeruginosa.
Objective : Portulaca oleracea (PO) has been used as an important traditional medicine for inflammatory and bacterial diseases in East Asia. However, the protective effects of PO on acute pancreatitis (AP) is not well-known. Therefore, this study was performed to identify the anti-inflammatory and prophylactic effects of PO on cerulein-induced AP. Methods : AP was induced in mice via intraperitoneal injection of supramaximal concentrations of the stable cholecystokinin analogue cerulein ($50{\mu}g/kg$) given every hour for 6 times. Water extracts of PO (100, 300, or 500 mg/kg) was administrated intra-peritoneally 1 h prior to the first injection of cerulein. The mice were killed at 6 h after the final cerulein injection. Pancreas and lung were rapidly removed for morphologic and histochemical examination, myeloperoxidase (MPO) assay. Blood samples were taken to determine serum amylase and lipase activities. Results : Administration of PO significantly inhibited pancreatic weight/body weight ratio, pancreas and lung histological injury. And MPO activity which indicates neutrophil infiltration was inhibited by PO extracts on cerulein-induced pancreatitis. In addition, PO administration inhibited digestive enzymes such as serum amylase and lipase activity on cerulein-induced pancreatitis. Conclusion : Our results could suggest that pre-treatment of PO reduces the severity of cerulein-induced AP, thereby, PO could be used as a protective agent against AP. Also, this study could give a clinical basis that PO could be a drug or agent to prevent AP.
Carotenoids are red, orange, and yellow fat-soluble pigments that exist in nature, and are known as physiologically active substances with various functions, such as provitamin A, antioxidant, anti-inflammatory, and anticancer. Because of their physiological activity and color availability, carotenoids are widely used in the food, cosmetics, and aquaculture industries. Currently, most carotenoids used industrially use chemical synthesis because of their low production cost, but natural carotenoids are in the spotlight because of their safety and physiologically active effects. However, the production of carotenoids in plants and animals is limited for economic reasons. Carotenoids produced by bacteria have a good advantage in replacing carotenoids produced by chemical synthesis. Since carotenoids produced from bacteria have limited industrial applications due to low productivity, studies are continuously being conducted to increase the production of carotenoids by bacteria. Studies conducted to increase carotenoid production from bacteria include the activity of enzymes in the bacterial carotenoid biosynthesis pathway, the development of mutant strains using physical and chemical mutagens, increasing carotenoid productivity in strain construction through genetic engineering, carotenoid accumulation through stress induction, fermentation medium composition, culture conditions, co-culture with other strains, etc. The aim of this article was to review studies conducted to increase the productivity of carotenoids from bacteria.
Hye Won Lee;You Ah Kim;Byoung Jun Park;Sang Keun Han
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.49
no.3
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pp.277-283
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2023
Fraxinus rhynchophylla Hance (F. rhynchophylla) is a traditional medicinal plant that has been widely used in East Asia and has been used for chronic bronchitis, bacterial dysentery and improved eyesight. F. rhynchophylla contains various type of coumarins such as esculin, esculetin, fraxin and fraxetin. Esculetin possesses versatile activities including antioxidant, anti-inflammatory, antimicrobial, anticancer properties and improvement of atopic dermatitis. However, there is no research on the process of increasing active components in F. rhynchophylla. The objectives of the present study were to apply biotransformation technology to F. rhynchophylla for increasing the content of esculetin, and enhancing anti-inflammatory and antioxidant activities. F. rhynchophylla extract (FRE) treated with viscozyme L (FRE-VL) showed 3.1 times higher content of esculetin than FRE, and exhibited effects such as increased anti-inflammatory activity and DPPH radical scavenging activity. Based on the these results, it is concluded that biotransformed FRE-VL could be potentially applicable as a new active ingredient in the cosmetic field.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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