The prokaryotic molecular chaperone Hsp33 achieves its holdase activity upon response to oxidative stress particularly at elevated temperature. Despite many structural studies of Hsp33, which were conducted mainly by X-ray crystallography, the actual structures of the Hsp33 in solution remains controversial. Thus, we have initiated NMR study of the reduced, inactive Hsp33 monomer and backbone NMR assignments were obtained in the present study. Based on a series of triple resonance spectra measured on a triply isotope-[$^2H/^{13}C/^{15}N$]-labeled protein, sequence-specific assignments of the backbone amide signals observed in the 2D-[$^1H/^{15}N$]TROSY spectrum could be completed up to more than 96%. However, even considering the small portion of non-assigned resonances due to the lack of sequential connectivity, we confirmed that the total number of observed signals was quite smaller than that expected from the number of amino acid residues in Hsp33. Thus, it is postulated that peculiar dynamic properties would be involved in the solution structure of the inactive Hsp33 monomer. We expect that the present assignment data would eventually provide the most fundamental and important data for the progressing studies on the 3-dimensional structure and molecular dynamics of Hsp33, which are critical for understanding its activation process.
WW domains are small protein modules consisting of three-stranded antiparallel β-sheet, and involved in the protein-protein interaction for various biological systems. We overexpressed and purified WW2 domain from human AIP4/Itch (a member of Nedd4 family) using a pH/temperature dependent cleavage system. The backbone assignments of WW2 domain were completed, and secondary structure was predicted. Furthermore, backbone flexibility of WW2 domain was determined by 1H-15N heteronuclear NOE and amide hydrogen exchange experiments. The structural information would contribute to the structural determination of WW2 domain as well as the interaction study of WW2 domain with various binding partners.
The HP0902, a homodimeric 22.1 kDa protein, has been suggested as a putative secretory protein from Helicobacter pylori, although the protein possesses no signal peptide for secretion. Since it may be associated with the virulence of the bacterium, NMR study has been initiated in terms of structural genomics. In our previous effort to assign the backbone NMR resonances, using 800MHz NMR machine at pH 7.8, the resonances from eight of the 99 residues could not be assined due to missing of the signals. In this work, to enhance the extent of assignments, a 900 MHz machine was employed and the sample pH was reduced down to 6.5. Finally, almost all signals, except for those from G9 and S24, could be clearly assigned. The determined secondary structure using the assined chemical shifts indicated that the HP0902 consists of 11 ${\beta}$-strands with no helices. In our database search result, HP0902 was predicted to interact with VacA (Vacuolating cytotoxin A), which is a representative virulence factor secreted from Helicobacter pylori. Thus, molecular interaction between HP0902 and VacA would be worthy of investigation, on the basis of the present results of NMR assignments.
Lee, Yoo-Sup;Yoon, Won-Su;Chung, Il;Chung, Ka Young;Won, Hyung-Sik;Seo, Min-Duk
Journal of the Korean Magnetic Resonance Society
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v.19
no.1
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pp.36-41
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2015
The causative agent of shigellosis, Shigella flexneri, is a Gram-negative anaerobic bacterial pathogen that causes one of the most infectious bacterial dysenteries in humans. It originates infection by invading cells of the colonic epithelium using a type III secretion system. Despite S. flexneri is closely linked with the human disease, structural study is very deficient. Here, we have initiated NMR study of SF1002 which is the uncharacterized protein from S. flexneri strain 5a M90T. Based on a series of triple resonance spectra, sequence-specific assignments of the backbone amide resonances of SF1002 could be completed. This NMR study would contribute to the structural genomics of S.flexneri.
Mushtaq, Ameeq Ul;Cho, Hye Young;Byun, Youngjoo;Jeon, Young Ho
Journal of the Korean Magnetic Resonance Society
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v.20
no.2
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pp.50-55
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2016
Backbone $^1H$, $^{13}C$ and $^{15}N$ resonance assignments are presented for the anticodon binding domain (residues 557-674) of human glycyl-tRNA synthetase (GRS). Role of the anticodon binding domain (ABD) of GRS as an anticancer ligand has recently been reported and its role in other diseases like Charcot-Marie-Tooth (CMT) and polymyositis have increased its interest. NMR assignments were completed using the isotope [$^{13}C/^{15}N$]-enriched protein and chemical shifts based secondary structure analysis with TALOS+ demonstrate similar secondary structure as reported in X-ray structure PDB 2ZT8, except some C-terminal residues. NMR signals from the N-terminal residues 557 to 571 and 590 to 614 showed very weak or no signals exhibiting dynamics or conformational exchange in NMR timescale.
Park, Sung-Jean;Kim, Ji-Sun;Son, Woo-Sung;Ahn, Hee-Chul;Lee, Bong-Jin
BMB Reports
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v.36
no.5
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pp.505-507
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2003
One of the small proteins from Helicobacter pylori, acyl carrier protein (ACP), was investigated by NMR. ACP is related to various cellular processes, especially with the biosynthesis of fatty acid. The basic NMR resonance assignment is a prerequisite for the validation of a heterologuous protein interaction with ACP in H.pylori. Here, the results of the backbone $^1H$, $^{15}N$, and $^{l3}C$ resonance assignments of the H. pylori ACP are reported using double- and triple-resonance techniques. About 97% of all of the $^1HN$, $^{15}N$, $^{13}CO$, $^{13}C{\alpha}$, and $^{13}C{\beta}$ resonances that cover 76 of the 78 non-proline residues are clarified through sequential- and specific-assignments. In addition, four helical regions were clearly identified on the basis of the resonance assignments.
Replication Protein A (RPA) is the eukaryotic single-stranded DNA binding protein. It involves in DNA replication, repair, and damage response. Among three subunits, RPA70 has a protein-protein binding domain (RPA70N) at the N-terminal. It has known that the domain recruits several damage response proteins to the damaged site. Also, it is suggested that there are more candidates that interact with RPA70N. Even though several studies performed on the structural aspects of RPA70N and its ligand binding, the backbone assignments of RPA70N is not available in public. In this study, we present the backbone assignments of RPA70N.
HP0892 (SwissProt/TrEMBL ID O25552) is a 90-residue conserved hypothetical protein from Helicobacter pylori strain 26695, with a calculated pI of 9.38 and a molecular mass of 10.41 kDa. It belongs to the Plasmid stabilization system protein family (PF05016) in the Pfam database. Proteins with sequence similarity to HP0892 exist in Vibrio choierae, Enterococcus faecalis, Campylobacter jejuni, Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, Escherichia coli O157. Here we report the sequence-specific backbone resonance assignments of HP0892 using multidimentional heteronuclear NMR spectroscopy. About 97.0% (422/435) of the HN, N, CO, $C{\beta}$, $C{\alpha}$ resonances of 90 residues of HP0892 were assigned. On the basis of the resonance assignments, three helical regions and four strand regions were identified using the CSI program. This study is a prerequisite for calculating the solution structure of HP0892, and will be useful for studying its interaction with other molecules.
Transthyretin (TTR) is an important transporter protein for thyroxine (T4) and a holo-retinol protein in human. In its native state, TTR forms a tetrameric complex to construct the hydrophobic binding pocket for T4. On the other hand, this protein is also infamous for its amyloidogenic propensity, which causes various human diseases, such as senile systemic amyloidosis and familial amyloid polyneuropathy/cardiomyopathy. In this work, to investigate various structural features of TTR with solution-state nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy, we conducted backbone NMR signal assignments. Except the N-terminal two residues and prolines, backbone 1H-15N signals of all residues were successfully assigned with additional chemical shift information of 13CO, 13Cα, and 13Cβ for most residues. The chemical shift information reported here will become an important basis for subsequent structural and functional studies of TTR.
The gene coding for APG8a (At4g21980), a protein from Arabidopsis thaliana, is involved in the autophagy process. The protein is an interesting candidate for structure determination by NMR spectroscopy. Toward this end, APG8a has been produced recombinantly in Escherichia coli and typical NMR experiments such as $^{15}N-HSQC$, HNCA, HN(CO)CA, CBCA(CO)NH, HCCH-TOCSY, HNCO were performed. The backbone resonances, HN, N, CA, CB, and C' were sequence-specifically assigned, and the secondary structures including 3 $\alpha$ helices and $4\beta$ strands were deduced based on the assignments. Due to the intrinsic flexibility or the effect of the denaturant, the backbone resonances were not fully observed. Since the structure calculation by NMR data was not possible, the 3-dimensional model was built based on the sequence homology, and compared with the NMR results. The overall structure of the model could explain and complement the NMR derived secondary structures.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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