An novel amylolytic yeast, Saccharomyces cerevisiae HA 27, isolated from nuruk, displayed resistance against high sugar (50% glucose) and alcohol (15%). Maximal production of amylolytic enzyme by S. cerevisiae HA 27 was achieved on 9 days of cultivation at the optimal temperature $20^{\circ}C$ and pH 6.0. The activity of amylolytic enzyme produced by S. cerevisiae HA 27 was stable, even at $70^{\circ}C$, and over a broad pH range (4.0-11.0). Also, the amylolytic enzyme of S. cerevisiae HA 27 showed optimal activity in pH 5.0 at $50^{\circ}C$. S. cerevisiae HA 27 exhibited 6.2%(v/v) alcohol fermentation ability using starch as a carbon source.
Kwon, Yong Min;Choi, Hyun Seok;Lim, Ji Yeon;Jang, Hyeong Seok;Chung, Dawoon
Mycobiology
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v.48
no.3
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pp.195-203
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2020
Marine yeasts have tremendous potential in industrial applications but have received less attention than terrestrial yeasts and marine filamentous fungi. In this study, we have screened marine yeasts for amylolytic activity and identified an amylase-producing strain PH-Gra1 isolated from sea algae. PH-Gra1 formed as a coral-red colony on yeast-peptone-dextrose (YPD) agar; the maximum radial growth was observed at 22 ℃, pH 6.5 without addition of NaCl to the media. Based on the morphology and phylogenetic analyses derived from sequences of internal transcribed spacer (ITS) and a D1/D2 domain of large subunit of ribosomal DNA, PH-Gra1 was designated Sporidiobolus pararoseus. S. pararoseus is frequently isolated from marine environments and known to produce lipids, carotenoids, and several enzymes. However, its amylolytic activity, particularly the optimum conditions for enzyme activity and stability, has not been previously characterized in detail. The extracellular crude enzyme of PH-Gra1 displayed its maximum amylolytic activity at 55 ℃, pH 6.5, and 0%-3.0% (w/v) NaCl under the tested conditions, and the activity increased with time over the 180-min incubation period. In addition, the crude enzyme hydrolyzed potato starch more actively than corn and wheat starch, and was stable at temperatures ranging from 15 ℃ to 45 ℃ for 2 h. This report provides a basis for additional studies of marine yeasts that will facilitate industrial applications.
The production of single cell protein using the amylolytic fusant obtained from cell fusion between Hansenula anomala and Saccharomyces cerevisiae was studied. The fusant12 strain was selected for single cell protein production from starchy materials among five fusants. Optimum nitrogen source and its concentration for the growth of fusant12 were ammonium sulfate and 0.1%, respectively. Optimum concentration of soluble starch and optimum pH of the basal medium were lord and pH 5.6, respectively. Autolysis of fusant12 was effectively carried out by addition of 5% (v/v) ethyl acetate to the cell suspension and liquidization for 30 min before incubation for 24 hr at 3$0^{\circ}C$. Coculture of fusant12 and non-amylolytic yeast, Torulopsis candida YA-l5, resulted in the increase of the mass as compared to the monoculture of fusant12. The cell mass on tapioca medium was increased about 2.5 times as on soluble starch medium. The content of crude protein and nucleic acid of the dry cell were 39% and 5.8%, respectively.
The amylolytic yeasts were isolated from natural sources. Among them, a strain FRI YO-32 was selected as one of the genetically potential microorganisms and was identified as a strain of Hansenula anomala var anomala. Genetic markers were introduced into the isolated haploid strains of the strain FRI YO-32 and Saccharomyces cerevisiae by conventional mutagenic procedures with EMS or MNNG.
In beer, glutathione works as the main antioxidant compound, which also correlates with the stability of the beer flavor. In addition, high residual sugars in beer contribute to major nonvolatile components, which are reflected in a high caloric content. Therefore, in this study, the Saccharomyces cerevisiae GSH1 gene encoding glutamylcysteine synthetase and the Saccharomycopsis fibuligera ALP1 gene encoding ${\alpha}$-amylase were coexpressed in industrial brewing yeast strain Y31 targeting the ${\alpha}$-acetolactate synthase (AHAS) gene (ILV2) and alcohol dehydrogenase gene (ADH2), resulting in the new recombinant strain TY3. The glutathione content in the fermentation broth of TY3 increased to 43.83 mg/l as compared with 33.34 mg/l in the fermentation broth of Y31. The recombinant strain showed a high ${\alpha}$-amylase activity and utilized more than 46% of the starch as the sole carbon source after 5 days. European Brewery Convention tube fermentation tests comparing the fermentation broths of TY3 and Y31 showed that the flavor stability index for TY3 was 1.3-fold higher, whereas its residual sugar concentration was 76.8% lower. Owing to the interruption of the ILV2 gene and ADH2 gene, the contents of diacetyl and acetaldehyde as off-flavor compounds were reduced by 56.93% and 31.25%, respectively, when compared with the contents in the Y31 fermentation broth. In addition, since no drug-resistant genes were introduced to the new recombinant strain, it should be more suitable for use in the beer industry, owing to its better flavor stability and other beneficial characteristics.
Studies were conducted on the conditions for preparation of yeast protoplasts utilizing Hansenula anomala var. anomala FRI YO-32 as well as Saccharomyces cerevisiae KFCC 32356 and a lytic enzyme from the snail Helix pomatia. The cell wails of the strain FRI YO-32 and S cerevisiae were found to be resistant to activity of the snail lytic enzyme if they were not treated with thiol compounds. Dithiothreitol was found to be more effective than 2-mercaptoethanol, but the latter was considered to be practical. As factors influencing the formation of yeast protoplast, it was considered to be concentration and incubation time of 2-mercaptoethanol or the lytic enzyme, growth stages in yeast cultivation, initial number of yeast cells, and concentration of osmotic stabilizer (KCI). Optimum conditions for the preparation of yeast protoplasts were determined.
Using a modified yeast secretory expression vector, $\alpha$-amylase of Schwanniomyces occidentalis was produced from Saccharomyces cerevisiae. The expression vector contains the a-amylase gene (AMY) harboring its own promoter without the regulatory region and the adenine base at the -3 position from the ATG start codon, its own signal sequence, CYC1 transcription terminator, and SV40 enhancer. The expressed $\alpha$-amylase activity from cells carrying the plasmid was approximately 26 times higher than that from the cells harboring an unmodified plasmid. When Saccharomyces diastaticus was transformed with this modified vector, a 2.5 times higher level of amylolytic activity than that from Sch. occidentalis was observed.
Two genes encoding probable α-ʟ-arabinofuranosidase (E.C. 3.2.1.55) isozymes (ABFs) with 92.3% amino acid sequence identity, ABF51A and ABF51B, were found from chromosomes 3 and 5 of Saccharomycopsis fibuligera KJJ81, an amylolytic yeast isolated from Korean wheat-based nuruk, respectively. Each open reading frame consists of 1,551 nucleotides and encodes a protein of 517 amino acids with the molecular mass of approximately 59 kDa. These isozymes share approximately 49% amino acid sequence identity with eukaryotic ABFs from filamentous fungi. The corresponding genes were cloned, functionally expressed, and purified from Escherichia coli. SfABF51A and SfABF51B showed the highest activities on p-nitrophenyl arabinofuranoside at 40~45℃ and pH 7.0 in sodium phosphate buffer and at 50℃ and pH 6.0 in sodium acetate buffer, respectively. These exoacting enzymes belonging to the glycoside hydrolase (GH) family 51 could hydrolyze arabinoxylo-oligosaccharides (AXOS) and arabino-oligosaccharides (AOS) to produce only ʟ-arabinose, whereas they could hardly degrade any polymeric substrates including arabinans and arabinoxylans. The detailed product analyses revealed that both SfABF51 isozymes can catalyze the versatile hydrolysis of α-(1,2)- and α-(1,3)-ʟ-arabinofuranosidic linkages of AXOS, and α-(1,2)-, α-(1,3)-, and α-(1,5)-linkages of linear and branched AOS. On the contrary, they have much lower activity against the α-(1,2)- and α-(1,3)-double-substituted substrates than the single-substituted ones. These hydrolases could potentially play important roles in the degradation and utilization of hemicellulosic biomass by S. fibuligera.
In order to study ecology of microorganisms during Takju brewing, microflora changes were examined fromm the start to the sixth day of Takju fermentation in 24 hours intervals. Takju made from rice, flour and dried sweet potato in a liter volume open container at the laboratory and a sanple of Takju brewing factory were studied for their microflora and their changes during fermentationl together with a sample of Kokja. Results obtained were as follows ; 1. The followings were the identified microorganisms in Kokja. The molds ; Absidia spinosa, Aspergillus parasiticus. The yeasts ; Candida melinii, Candida Solani, Hansenula anomala. The bacteria ; Luctobacillus casei, Leuconostoc mesenteroides, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus. 2. Torulopsis inconspicua, Lactobacillus casei, Leuconotoc mesenteroides, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus were isolated from main mash of laboratory-made Takju samples. The yeast, Torupsis inconspicua which was not present in Kokja and, probably of a contaminant yeast, dominated the yeast flora of Takju mash of rice, flour and sweet potato of labotatory brewing. The laboratory brewing lost also always showed large population of lactic acid bacteria flora. 3. None of the wild yeasts which were present in Kokja appeared in Takju mashes. The Kokja appears to be of no use as the yeast source for Takju fermentation. Also the Kokja appears to be of not so effective amylolytic and proteolytic enzyme sources considering the microflora characteristics. Probably the major role of Kokja in Takju fermentation may be to contribute in taste formation. 4. Inoculation of Sacharomyces cerevisiae into the mash to the level of $10^7$ ml at the start of fermentation greatly changed the ecological aspects eliminating conditions of rather slow rising of natural contaminant yeast populaiton and fermentation which might give rise to prosperity of lactic acid and Bacillus bacteria that would be avoidable. 5. Examination of microflora of the large factory scale Takju fermentation showed the quite similar pattern of microflora and their changes to that of the cultured yeast-inoculated laboratory batch Takju fermentation. The cultured yeast dominated as the only predominant microflora, and the lactic acid bacteria flora were completely suppressed and aerobic bacteria, greatly. Probably this may be the regular microflora pattern of normal Takju fermentation. The role of lactic acid bacteria and aerobic bacteria in Takju fermentation may not be clear yet from this experiment alone.
Park, Wan-Soo;Koo, Young-Jo;Shin, Dong-Hwa;Min, Byong-Yong
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.15
no.1
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pp.51-55
/
1983
It was investigated under several cultural conditions to produce biomass directly from starch by an strictly aerobic and amylolytic yeast, Sporobolomyces holsaticus FRI Y-5. Its optimal temperature and initial pH of medium for growth were $23^{\circ}C$ and 6.9, respectively. Activation energy, Ea, for growth was calculated to be 17.33 Kcal/mole from the Arrhenius relationship. When each of 13 nitrogen sources was added to the basal medium, $(NH_2)_2CO$ had the best effect, on which concentration of cell after 3 day incubation was 10.6 g/l and cell yield was 0.451. The yeast growth was affected by $MgSO_4,\;K_2SO_4\;and\;ZnSO_4$ as a mineral source and was best on the medium containing all of them. The addition of yeast extract (5g/l) could enhance the production of biomass and cell yield to 77% and 32%, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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