Probing Streptomyces albus ATCC 21838 chromosomal DNA with a proline tRNA sequence resulted in an isolation of a putative integrating element in the 6.4-kb EcoRI fragment. It was found that Streptomyces lividans TK-24 transformed with a cloned DNA fragment on a multicopy plasmid, produced a higher level of spore pigment and mycelial red pigment on a regeneration agar. Furthermore, the transformant S. lividans TK-24 produced a markedly increased level of undecylprodigiosin in a broth culture. A nucleotide sequence analysis of the cloned region revealed several open reading frames homologous to the integrases of integrating plasmids or temperate bacteriophages, signal-transducing regulatory proteins with a conserved ATP-binding domain, oxidoreductases ($\beta$-ketoacyl reductase), and an AraC-like transcriptional regulator. To examine the effect on antibiotic production, each coding region was overexpressed separately from the other genes in the region in S. lividans TK-24 with; pJHS3044 for the expression of the signal-transducing regulatory protein homologue, pJHS3045 for the homologue of oxidoreductase, and pJHS3051 for the homologue of the AraC-like transcriptional regulator. Phenotypic studies of S. lividans TK-24 strains harboring plasmids for the overexpression of individual genes suggested the following effects of the genes on antibiotic production: The oxidoreductase homologue stimulated the production of actinorhodin and undecylprodigiosin, which was influenced by the culture conditions; the homologue of the AraC-like transcriptional regulator was the most effective factor in antibiotic production within all the culture conditions tested; the signal-transducing regulatory protein homologue repressed the effect due to the homologue of the AraC-like transcriptional regulator, however, the antibiotic production was derepressed upon entering the stationary phase.
When S. fradiae was cultured in S medium, it stavted to produce neomycin in the middle of stationary phase of growth. Antibitoic production is regulated not only by glucose but also by metabolites formed from glucose. A chemically defined minimal salt broth was developen for the study of metabolites activating produition of antibiotic in a neomycin producer. When growth and production or antibiotic in minimal salt broth was examined with a full grown or a vefctativc mycelium, the medium was found not to be good for the growth, but to be good enough for the production of antibiotic with a full grown mycelium. When many carbotlydrates, organic acids, or alcohol were supplmented with instead of glucose in the medium suspcndcn with a full grown mycelium, the amount of antibiotic produced in the medium containing fumaratc was 5 times more than that in the medium with glucose. Further study indicated that the medium is not good also for the growth but good for the production of antibiotic. The antibiotic produced in this medium was identified to be neomycin. The activation of the production of neomycin by fumarate was further confirmed in a complex medium. Fuinarate is suspected to initiate and to activate the biosynthesis of neomycin at the gene level.
Kang, Jae Ku;Chang, Suk Min;Naruse, Kenji;Han, Jeung Whan;Park, Chang Sik;Jin, Dong Il
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제17권8호
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pp.1076-1079
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2004
Antibiotics are common additives in culture media during in vitro embryo development, but their effects on oocyte maturation in vitro have not been tested. The effects of penicillin, streptomycin and gentamicin on the maturational competence and subsequent development potential of goat follicular oocytes were examined after parthenogenetic activation in vitro. Maturation rates at 24 h after in vitro maturation, and parthenogenetic development at 48 h after activation, were evaluated by observing the protruding first polar body and the 4 cell stage cleavage, respectively. When streptomycin was present in the maturation medium, the percentages of matured oocytes 24 h after activation were significantly (p<0.01) lower than those from the other groups (42.5-45.7% vs. 69.1-73.8%). Penicillin and gentamicin treatment did not affect the maturation rates or the percentages reaching the 4 cell stage 48 h after activation. There was no significant difference in cleavage rates among the different antibiotic treatments 48 h after activation. Therefore, streptomycin suppresses the in vitro maturation of immature goat oocytes, but does not influence their subsequent development.
Sequencing analysis of a 5-kb DNA fragment from Streptomyces venezuelae ATCC 15439 revealed the presence of one 3.1-kb open reading frame(ORF), designated as afsR-sv. The deduced product of afsR-sv(1,056 aa) was found to have high homology with the global regulatory protein AfsR. Homology-based analysis showed that aftR-sv represents a transcriptional activator belonging to the Streptomyces antibiotic regulatory protein(SARP) family that includes an N-terminal SARP domain containing a bacterial transcriptional activation domain(BTAD), an NB-ARC domain, and a C-terminal tetratricopeptide repeat domain. Gene expression analysis by reverse transcriptase PCR(RT-PCR) demonstrated the activation of transcription of genes belonging to pikromycin production, when aftR-sv was overexpressed in S. venezuelae. Heterologous expression of the aftR-sv in different Streptomyces strains resulted in increased production of the respective antibiotics, suggesting that afsR-sv is a positive regulator of antibiotics biosynthesis.
Lee, Hyerim;Jin, Bo-Eun;Jang, Eunkyeong;Lee, A Reum;Han, Dong Soo;Kim, Ho-Youn;Youn, Jeehee
IMMUNE NETWORK
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제14권1호
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pp.38-44
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2014
K/BxN serum can transfer arthritis to normal mice owing to the abundant autoantibodies it contains, which trigger innate inflammatory cascades in joints. Little is known about whether gut-residing microbes affect host susceptibility to autoantibody-mediated arthritis. To address this, we fed C57BL/6 mice with water containing a mixture of antibiotics (ampicillin, vancomycin, neomycin, and metronidazol) for 2 weeks and then injected them with K/BxN serum. Antibiotic treatment significantly reduced the amount of bacterial genomic DNA isolated from fecal samples, in particular a gene encoding 16S ribosomal RNA derived from segmented filamentous bacteria. Arthritic signs, as indicated by the arthritic index and ankle thickness, were significantly attenuated in antibiotic-treated mice compared with untreated controls. Peyer's patches and mesenteric lymph nodes from antibiotic-treated mice contained fewer IL-17-expressing cells than those from untreated mice. Antibiotic treatment reduced serum C3 deposition in vitro via the alternative complement pathway. IL-$17^{-/-}$ congenic C57BL/6 mice were less susceptible to K/BxN serum-transferred arthritis than their wild-type littermates, but were still responsive to treatment with antibiotics. These results suggest that gut-residing microbes, including segmented filamentous bacteria, induce IL-17 production in GALT and complement activation via the alternative complement pathway, which cause the host to be more susceptible to autoantibody-mediated arthritis.
Objective: The study was conducted to investigate the dephosphorylation of Pseudomonas aeruginosa flagellin (PA FLA) by sweet potato purple acid phosphatase (PAP) and the effect of the enzyme on the flagellin-mediated inflammatory response in the A549 lung epithelial cell line. Methods: The activity of sweet potato PAP on PA FLA was assayed at different pH (4, 5.5, 7, and 7.5) and temperature (25℃, 37℃, and 55℃) conditions. The release of interleukin-8 (IL-8) and the activation of nuclear factor kappa- light-chain-enhancer of activated B cells (NF-κB) in A549 cells exposed to PA FLA treated with or without sweet potato PAP was measured using IL-8 and NF-κB ELISA kits, respectively. The activation of toll-like receptor 5 (TLR5) in TLR5-overexpressing HEK-293 cells exposed to PA FLA treated with or without sweet potato PAP was determined by the secreted alkaline phosphatase-based assay. Results: The dephosphorylation of PA FLA by sweet potato PAP was favorable at pH 4 and 5.5 and highest at 55℃. PA-FLA treated with the enzyme decreased IL-8 release from A549 cells to about 3.5-fold compared to intact PA FLA at 1,000 ng/mL of substrate. Moreover, PA-FLA dephosphorylated by the enzyme repressed the activation of NF-κB in the cells compared to intact PA FLA. The activation of TLR5 by PA-FLA was highest in TLR-overexpressing HEK293 cells at a substrate concentration of 5,000 ng/mL, whereas PA FLA treated with the enzyme strongly repressed the activation of TLR5. Conclusion: Sweet potato PAP has the potential to be a new alternative agent against the increased antibiotic resistance of P. aeruginosa and may be a new conceptual feed additive to control unwanted inflammatory responses caused by bacterial infections in animal husbandry.
Park, Gyoung Lim;Park, Minkyung;Min, Jeong-Ki;Park, Young-Jun;Chung, Su Wol;Lee, Seon-Jin
BMB Reports
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제54권11호
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pp.545-550
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2021
Anisomycin is known to inhibit eukaryotic protein synthesis and has been established as an antibiotic and anticancer drug. However, the molecular targets of anisomycin and its mechanism of action have not been explained in macrophages. Here, we demonstrated the anti-inflammatory effects of anisomycin both in vivo and in vitro. We found that anisomycin decreased the mortality rate of macrophages in cecal ligation and puncture (CLP)- and lipopolysaccharide (LPS)-induced acute sepsis. It also declined the gene expression of proinflammatory mediators such as inducible nitric oxide synthase, tumor necrosis factor-α, and interleukin-1β as well as the nitric oxide and proinflammatory cytokines production in macrophages subjected to LPS-induced acute sepsis. Furthermore, anisomycin attenuated nuclear factor (NF)-κB activation in LPS-induced macrophages, which correlated with the inhibition of phosphorylation of NF-κB-inducing kinase and IκB kinase, phosphorylation and IκBα proteolytic degradation, and NF-κB p65 subunit nuclear translocation. These results suggest that anisomycin prevented acute inflammation by inhibiting NF-κB-related inflammatory gene expression and could be a potential therapeutic candidate for sepsis.
Dental caries, the most common oral disease, is a multifactorial disease caused by interactions among bacteria within the dental plaque, food, and saliva, resulting in tooth destruction. Streptococcus mutans has been strongly implicated as the causative organism in dental caries and is frequently isolated from human dental plaque. Photodynamic therapy (PDT) is a technique that involves the activation of photosensitizer by light in the presence of tissue oxygen, resulting in the production of reactive radicals capable of inducing cell death. Postantibiotic effect (PAE) is defined as the duration of suppressed bacterial growth following brief exposure to an antibiotic. In this study, the in vitro PAE of PDT using erythrosine and light emitting diode on S. mutans ATCC 25175 was investigated. The PAE of PDT for 1 s irradiation and 3 s irradiation were 1.65 h and 2.1 h, respectively. The present study thus confirmed PAE of PDT using erythrosine on S. mutans.
We demonstrate that radicicol, a macrocyclic antifungal antibiotic originally isolated from Monosporium bonorden, inhibits LPS-induced expression of iNOS gene in RAW 264.7 cells. Treatment of peritoneal macrophages and RAW 264.7 cells with radicicol inhibited LPS-stimulated nitric oxide production in a dose-related manner. Immunohistochemical staining of iNOS and RTPCR analysis showed that the decrease of NO was due to the inhibition of iNOS gene expression in RAW 264.7 cells. Immunostaining of p65, EMSA, and reporter gene assay showed that radicicol inhibited $NF-\kappa/Rel$ nuclear translocation. DNA binding, and transcriptional activation, respectively. Collectively, these series of experiments indicate that radicicol inhibits iNOS gene expression by blocking $NF-\kappa/Rel$ nuclear translocation. Due to the critical role that NO release plays in mediating inflammatory responses, the inhibitory effects of radicicol on iNOS suggest that radicicol may represent a useful anti-inflammatory agent.
Salmonella enterica serovar Typhimurium (S. Typhimurium) is a facultative intracellular pathogen that causes salmonellosis and mortality worldwide. S. Typhimurium infects macrophages and survives within phagosomes by avoiding the phagosome-lysosome fusion system. Phagosomes sequentially acquire different Rab GTPases during maturation and eventually fuse with acidic lysosomes. Lysophosphatidylcholine (LPC) is a bioactive lipid that is associated with the generation of chemoattractants and reactive oxygen species (ROS). In our previous study, LPC controlled the intracellular growth of Mycobacterium tuberculosis by promoting phagosome maturation. In this study, to verify whether LPC enhances phagosome maturation and regulates the intracellular growth of S. Typhimurium, macrophages were infected with S. Typhimurium. LPC decreased the intracellular bacterial burden, but it did not induce cytotoxicity in S. Typhimurium-infected cells. In addition, combined administration of LPC and antibiotic significantly reduced the bacterial burden in the spleen and the liver. The ratios of the colocalization of intracellular S. Typhimurium with phagosome maturation markers, such as early endosome antigen 1 (EEA1) and lysosome-associated membrane protein 1 (LAMP-1), were significantly increased in LPC-treated cells. The expression level of cleaved cathepsin D was rapidly increased in LPC-treated cells during S. Typhimurium infection. Treatment with LPC enhanced ROS production, but it did not affect nitric oxide production in S. Typhimurium-infected cells. LPC also rapidly triggered the phosphorylation of IκBα during S. Typhimurium infection. These results suggest that LPC can improve phagosome maturation via ROS-induced activation of NF-κB pathway and thus may be developed as a therapeutic agent to control S. Typhimurium growth.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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