Kim, Hyun-Soo;Oh, Kwang-Keun;Lee, Cheol-Woo;Lee, Jae-Heung;Jeon, Yeong-Joong
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.25
no.6
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pp.630-635
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1997
Decolorization of congo red, methyl orange, poly R478, remazol brilliant blue R and crystal violet by white-rot fungus Trametes sp. CJ-105, isolated in Korea, was investigated. Remazol blue and methyl orange were almost completely decolorized after 2 days of culture, but congo red, crystal violet and poly R478 were decolorized by about 80%, 40% and 30% after 10 days of culture, respectively. As a result of determination of cell mass and enzyme activity, it was shown that color removal efficiency was related to cell mass and enzyme activity, and also found that only laccase (E.C.1.10.3.2) activity was existed in the culture broth. The decolorization ratios of remazol blue in the concentrations of 100ppm to 3, 000 ppm were 85% and above after 2 days of culture. In this study, we found that white-rot fungus, Trametes sp. CJ-105, was effective in decolorizing a wide range of structurally different synthetic dyes.
Kim, Sam-Sun;Joo, Gil-Jae;Uhm, Jae-Youl;Kim, Young-Jae;Rhee, In-Koo
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.25
no.5
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pp.527-533
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1997
From apple skin, we isolated a bacterial strain which strongly inhibited the growth of apple white rot fungus, Botryosphaeria dothidea. The isolated strain, designated as SS279, was identified to be the genus Bacillus. The antifungal activity of Bacillus sp. SS279 was found in the culture filtrate. The production of antifungal substances occurred during logarithmic phase and was the highest when cultures reached the stationary growth phase. The optimum ranges of temperature and pH for its production were 25-30$\circ$C and 4.5-9.0, respectively. The culture filtrate of Bacillus sp. SS279 exhibited a strong inhibitory effect on the spore germination and germ tube elongation of B. dothidea. Autoclaved culture filtrate of Bacillus sp. SS279 showed only a slight decrease in antifungal activity, indicating that the Bacillus sp. SS279 produce heat-stable antifungal substances. In in vivo bioassay, Bacillus sp. SS279 also showed antagonistic activity against apple white rot caused by B. dothidea.
Biodegradation of endocrine-disrupting bisphenol A was investigated with several white rot fungi (Irpex lacteus, Trametes versicolor, Ganoderma lucidum, Polyporellus brumalis, Pleurotus eryngii, Schizophyllum commune) isolated in Korea and two transformants of T. versicolor (strains MrP 1 and MrP 13). I. lacteus degraded 99.4% of 50 mg/l bisphenol A in 3 h incubation and 100% in 12 h incubation. which was the highest degradation rate among the fungal strains tested. T. versicolor degraded 98.2% of 50 mg/l bisphenol A in 12 h incubation. Unexpectedly, the transformant of the Mn-repressed peroxidase gene of T. versicolor, strain MrP 1, degraded 76.5% of 50 mg/l bisphenol A in 12 h incubation, which was a lower degradation rate than wild-type T. versicolor. The removal of bisphenol A by I. lacteus occurred mainly by biodegradation rather than adsorption. Optimum carbon sources for biodegradation of bisphenol A by I. lacteus were glucose and starch, and optimum nitrogen sources were yeast extract and tryptone in a minimal salts medium; however, bisphenol A degradation was higher in nutrient-rich YMG medium than that in a minimal salts medium. The initial degradation of endocrine disruptors was accompanied by the activities of manganese peroxidase and laccase in the culture of I. lacteus.
Jung, Paul Eunil;Fong, Jonathan J.;Park, Myung Soo;Oh, Seung-Yoon;Kim, Changmu;Lim, Young Woon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.24
no.10
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pp.1301-1307
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2014
White-rot fungi of the genus Bjerkandera are cosmopolitan and have shown potential for industrial application and bioremediation. When distinguishing morphological characters are no longer present (e.g., cultures or dried specimen fragments), characterizing true sequences of Bjerkandera is crucial for accurate identification and application of the species. To build a framework for molecular identification of Bjerkandera, we carefully identified specimens of B. adusta and B. fumosa from Korea based on morphological characters, followed by sequencing the internal transcribed spacer region and 28S nuclear ribosomal large subunit. The phylogenetic analysis of Korean Bjerkandera specimens showed clear genetic differentiation between the two species. Using this phylogeny as a framework, we examined the identification accuracy of sequences available in GenBank. Analyses revealed that many Bjerkandera sequences in the database are either misidentified or unidentified. This study provides robust reference sequences for sequence-based identification of Bjerkandera, and further demonstrates the presence and dangers of incorrect sequences in GenBank.
With an aim to evaluate dye decolorization by white rot fungus on natural living conditions, reproducing by solid-state fermentation, the process of triphenylmethane dyes decolorization using the white rot fungus P. ostreatus BP, cultivated on rice straw solid-state medium, has been demonstrated. Three typical dyes, including malachite green, bromophenol blue, and crystal violet, were almost completely decolorized by the fungus after 9 days of incubation. During the process of dye decolorization, the activities of enzyme secreted by the fungus, and the contents of soluble components, such as phenolic compounds, protein, and sugar, changed regularly. The fungus could produce ligninolytic, cellulolytic, and hemicellulolytic enzymes and laccase was the most dominant enzyme in solid-state medium. Laccase, laccase isoenzyme, and the laccase mediator could explain the decolorization of malachite green, bromophenol blue, and crystal violet by the fungus in solid-state medium, respectively. It is worth noting that the presence of the water-soluble phenolic compounds could stimulate the growth of fungus, enhance the production of laccase, and accelerate dye decolorization.
The hazards associated with the polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) are known to be recalcitrant by their structure, but white rot fungi are capable of degrading recalcitrant organic compounds. Phlebia brevispora KUC9045 isolated from Korea was investigated its efficiency of degradation of four PAHs, such as phenanthrene, anthracne, fluoranthene, and pyrene. And the species secreted extracellular laccase and MnP (Manganese dependent peroxidase) during degradation. P. brevispora KUC9045 demonstrated effective degradation rates of phenanthrene (66.3%), anthracene (67.4%), fluoranthene (61.6%), and pyrene (63.3%), respectively. For enhancement of degradation rates of PAHs by the species, Remazol Brilliant Blue R (RBBR) was preferentially supplemented to induce ligninolytic enzymes. The biodegradation rates of the three PAHs including phenanthrene, fluoranthene, and pyrene were improved as higher concentration of Remazol Brilliant Blue R was supplemented. However, anthracene was degraded with the highest rate among four PAHs after two weeks of the incubation without RBBR addition. According to the previous study, RBBR can be clearly decolorized by P. brevispora KUC9045. Hence, the present study demonstrates simultaneous degradation of dye and PAHs by the white rot fungus. And it is considered that the ligninolytic enzymes are closely related with the degradation. In addition, it indicated that dye waste water might be used to induce ligninolytic enzymes for effective degradation of PAHs.
Im, Kyung Hoan;Nguyen, Trung Kien;Choi, Jaehyuk;Lee, Tae Soo
Mycobiology
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v.44
no.1
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pp.48-53
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2016
Lenzites betulinus, known as gilled polypore belongs to Basidiomycota was isolated from fruiting body on broadleaf dead trees. It was found that the mycelia of white rot fungus Lenzites betulinus IUM 5468 produced ethanol from various sugars, including glucose, mannose, galactose, and cellobiose with a yield of 0.38, 0.26, 0.07, and 0.26 g of ethanol per gram of sugar consumed, respectively. This fungus relatively exhibited a good ethanol production from xylose at 0.26 g of ethanol per gram of sugar consumed. However, the ethanol conversion rate of arabinose was relatively low (at 0.07 g of ethanol per gram sugar). L. betulinus was capable of producing ethanol directly from rice straw and corn stalks at 0.22 g and 0.16 g of ethanol per gram of substrates, respectively, when this fungus was cultured in a basal medium containing 20 g/L rice straw or corn stalks. These results indicate that L. betulinus can produce ethanol efficiently from glucose, mannose, and cellobiose and produce ethanol very poorly from galactose and arabinose. Therefore, it is suggested that this fungus can ferment ethanol from various sugars and hydrolyze cellulosic materials to sugars and convert them to ethanol simultaneously.
The production of manganese peroxidase (MnP) by Irpex lacteus, purified to electrophoretic homogeneity by acetone precipitation, HiPrep Q and HiPrep Sephacryl S-200 chromatography, was shown to correlate with the decolorization of textile industry wastewater. The MnP was purified 11.0-fold, with an overall yield of $24.3\%$. The molecular mass of the native enzyme, as determined by gel filtration chromatography, was about 53 kDa. The enzyme was shown to have a molecular mass of 53.2 and 38.3 kDa on SDS-PAGE and MALDI-TOF mass spectrometry, respectively, and an isoelectric point of about 3.7. The enzyme was optimally active at pH 6.0 and between 30 and $40^{\circ}C$. The enzyme efficiently catalyzed the decolorization of various artificial dyes and oxidized Mn (II) to Mn (III) in the presence of $H_2O_2$. The absorption spectrum of the enzyme exhibited maxima at 407, 500, and 640 nm. The amino acid sequence of the three tryptic peptides was analyzed by ESI Q- TOF MS/MS spectrometry, and showed low similarity to those of the extracellular peroxidases of other white-rot basidiomycetes.
The objective of this study is to investigate optimum condition for lignin peroxidase production by white rot fungi Phanerochaete chysosporium IFO 31249 immobilized in a rotating bioreactor. The maximum lignin peroxidase activity of batch culture in rotating bioreactor was 300 U/L. The optimum rotating speed and packing ratio of support for lignin peroxidase production in a rotating bioreactor were 1 rpm and 20%, respectively. The optimum concentration of $MnSO_4$$\cdot$$H_2O$ for manganese-dependent peroxidase production in a rotating bioreactor was 50 ppm. The sufficient supply of oxygen was the most important factor to achieve maximum lignin peroxidase production. It was possible to produce lignin peroxidase (LiP) and manganese-dependent peroxidase (MnP) for at least 3 times successive repeated-batch cultures, respectively.
Two white rot fungi, Ceriporia sp. ZLY-2010 (CER) and Stereum hirsutum (STH) were used as biocatalysts for the biotransformation of (-)-${\alpha}$-pinene. After 96 hr, CER converted the bicyclic monoterpene hydrocarbon (-)-${\alpha}$-pinene into ${\alpha}$-terpineol (yield, 0.05 g/L), a monocyclic monoterpene alcohol, in addition to, other minor products. Using STH, verbenone was identified as the major biotransformed product, and minor products were myrtenol, camphor, and isopinocarveol. We did not observe any inhibitory effects of substrate or transformed products on mycelial growth of the fungi. The activities of fungal manganese-dependent peroxidase and laccase were monitored for 15 days to determine the enzymatic pathways related to the biotransformation of (-)-${\alpha}$-pinene. We concluded that a complex of enzymes, including intra- and extracellular enzymes, were involved in terpenoid biotransformation by white rot fungi.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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