An avian rotavirus (AvRV-2) was isolated from feces of broilers suffering from acute gastroenteritis in 2011. It was the first avian rotavirus isolated in Korea. To investigate the molecular characteristics of AvRV-2, the VP4, VP6, VP7 and NSP4 gene nucleotide sequences were determined and compared with those of rotavirus strains available in the GenBank database. The phylogenetic tree of VP7 gene showed that AvRV-2 had a high degree of nucleotide sequence homology (93.4% to 94.7%) with those of rotaviruses belonging to genotype G19 cluster. The phylogenetic tree of the VP4 gene revealed a high degree of nucleotide sequence homology (95.8% to 95.9%) with genotype P[30] rotaviruses isolated from chickens. The VP6 and NSP4 gene nucleotide sequences showed the highest identities with those of avian strains with 95.3% to 96.4% and 90.3% to 92.2%, respectively. Genetic characterization of the VP4, VP6, VP7 and NSP4 showed that AvRV-2 strain was most closely related to chicken rotavirus strains from Germany and Japan. Comparative nucleotide sequences and phylogenetic analysis indicated that avian rotavirus isolated from broilers belonged to genotype G19P[30] and it was the first report on avian rotavirus infection in Korea.
The VP2 gene of aquatic birnavirus, Korean isolate (GC-1) was cloned and expressed using the baculovirus expression system. The VP2 gene and VP2 partial gene, which contained a neutralizing epitope, were constructed for recombinant transfer vectors, for baculovirus expression. The expressed recombinant proteins were confirmed by indirect immuno fluorescence antibody (IFA), SDS-PAGE and Western blot. The level of expression was checked at regular time using IFA and Western blot. To measure the neutralizing activity of recombinant proteins against GC-1 strain, the antisera against recombinant proteins were produced by using guinea pigs. The result showed that the antisera neutralized the GC-1 strain. However, the neutralizing titer was higher in antisera against the VP2 gene expressed recombinant protein than that of VP2 partial gene recombinant protein.
The VP2 full gene of Korean infectious bursal disease virus(IBDV) strain, SH/92, three attenuated vaccine strains, Bur706, Bursine-2 and CEV/AC strains, were amplified by reverse transcriptase-polymerase chain reaction and sequenced and compared with published VP2 gene sequences of IBDVs. The VP2 nucleotide sequence similarity between SH/92 and three vaccine stains was 95.6~96.5% whereas the nucleic acid similarity among three vaccine strains was 97.5~98.5%. The amino acid sequence similarity of VP2 of SH/92 compared with three vaccine strains was between 94.4 and 97.6% while the amino acid similarity among three vaccine strains was between 97.4 and 98.4%. The amino acid similarity between SH/92 and classical virulent strain, 52/70 and STC strain was 96.4 and 96.5%, respectively. The serine-rich heptapeptide was conserved in CEVAC and Bursine-2 as well as SH/92 but not in Bur706. The phylogenetic tree developed from amino acid sequences showed that SH/92 was categorized with vv IBDVs(HK46, OKYM, KKI, UPM94/273, SH95) in one branch while three vaccine strains were catagorized with STC strain in the other branch.
Expression of the cDNA of the VP1 gene on the genome RNA B segment of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) DRT strain in E. coli and a recombinant baculovirus were carried out. The VP1 gene in the pMal-pol clone (Lee et al. 1995) was cleaved with XbaI and transferred into baculovirus transfer vector, pBacPAK9 and it was named pBacVP1 clone. The VP1 gene in the pBacVP1 clone was double-digested with SacI and PstI and then inserted just behind T5 phage promoter and the $6{\times}His$ region of the pQE-3D expression vector, and it was called pQEVPl. Again, the $6{\times}$His-tagged VP1 DNA fragment in the pQEVP1 was cleaved with EcoRI and transferred into the VP1 site of the pBacVP1, resulting pBacHis-VP1 recombinant. The pBacHis-VP1 DNA was cotransfected with LacZ-Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus (LacZ-HcNPV) DNA digested with Bsu361 onto S. frugiperda cells to make a recombinant virus. One VP1-gene inserted recombinant virus was selected by plaque assay. The recombinant virus was named VP1-HcNPV-1. The $6{\times}$His-tagged VP1 protein produced by the pQEVP1 was purified with Ni-NTA resin chromatography and analyzed by SDS-PAGE and Western blot analysis. The molecular weight of the VP1 protein was 94 kDa. The recombinant virus, VP1-HcNPV-1 did not form polyhedral inclusion bodies and expressed VP1 protein with 95 kDa in the infected S. frugiperda cells, which was detected by Western blot. The titer of the VP1-HcNPV-1 in the first infected cells was $2.0{\times}10^5\;pfu/ml$ at 7 days postinfection.
To detect the genetic variations among infectious bursal disease (IBD) vaccine strains, the hypervariable region of VP2 gene of seven IBDV vaccine strains were amplified using reverse transcriptase/polymerase chain reation(RT/PCR). Ampllified PCR products of IBDV were cloned, sequenced, and compared with published sequences for IBDV. Vaccine strains (JOONG, HAN, B7, IB, BU2, G2, CIL) used in Korea and Korean field isolates (SH/92, K1, 310) had 81%(310 and HAN) ~ 98%(SH/92 and CIL) amino acid sequence similarity. Vaccine strains had 80%(HAN and IB) ~ 99%(JOONG and BU2) amino acid sequence similartiy. Intermediate plus vaccine strain, CIL was not substituted at positions 279(D $\rightarrow$ N) and 284(A $\rightarrow$ T), and conserved in serine-rich heptapeptide. At the two hydrophilic region, JOONG, IB and Bu2 strains had identical amino acid sequence comparing with STC strain. By phylogenetic analysis, JOONG and DAE strains were categorized in same group with BU2. The CIL and STC strains closely related but seperated from G2, HAN, B7 and IB strains.
This study was carried out to evaluate the vaccination effects of recombinant fusion protein rVP19+28 against WSSV in shrimp, Litopenaeus vannamei. The VP19+28 gene fused with VP19 and VP28 genes was inserted into pET-28a(+) expression vector and cloned in E. coli BL21 (DE3) to produce fused gene product recombinant VP19+VP28 as a single protein. For the vaccination, the shrimps were fed with pellets coated with purified recombinant protein, rVP19+28, for 2 weeks. Then, constant amounts of WSSV at $1{\times}10^2$ diluted stocks were injected to the muscle of the shrimp for the in vivo challenge tests. Non-vaccinated shrimps showed a cumulative mortality of 100% at 11 days post-challenge. The shrimps vaccinated with the inactivated E. coli BL21 as a host cell control showed cumulative mortality of 100% at 17 days post-challenge. The shrimps vaccinated with rVP19, rVP28 and rVP19+28 showed mortalities of 66.7%, 41.7% and 41.7% at 21 days post-challenge, respectively. These results indicated that the rVP28 and rVP19+28 had relatively high vaccination effects against WSSV infection. However, this study suggests that the fusion protein rVP19+28 was more effective for the protection of shrimp against WSSV than rVP28, even though the cumulative mortalities were the same 21 days post-challenge.
The VP2 gene of infectious bursal disease virus (IBDV) Chinju which was previously detected in Chinju, Korea was cloned and sequenced to establish the information for the development of genetically engineered vaccines and diagnostic reagents against IBDV. The nucleotide sequence of the entire Chinju VP2 gene consisted of 1,356 bases long encoding 452 amino acids in a single open reading frame (ORF). It consisted of 368 adenine (27.1%), 363 cytosine (26.8%), 339 guanine (25.0%) and 286 thymine (21.1%) residues. The predicted $M_r$ of the Chinju VP2 protein was 48 kDa, and the protein contained 13 phosphorylation sites by protein kinase C, casein kinase II or tyrosine kinase, whereas 3 asparagine-linked glycosylation sites were recognized. The nucleotide sequence of Chinju VP2 ORF had a very close phylogenetic relationship with 98-99% homology to that of the very virulent IBDVs (vvIBDVs) HK46, OKYM, D6948, UK661, UPM97/61 and BD3/99. Also, the Chinju VP2 protein revealed a very close phylogenetic relationship with 99-100% homology to that of these vvIBDVs. The Chinju VP2 protein had 100% amino acid identity in the variable region of residues 206-360 with that of the D6948, HK46, OKYM and UK661, as well as 100% identity in two hypervariable regions of residues 212-224 and 314-324 with those of the D6948, HK46, OKYM, UK661, UPM97/61 and BD3/99. The amino acid sequence of the chinju VP2 protein contained a serine-rich heptapeptide of SWSASGS as in these vvIBDVs.
A VP6 fragments was subcloned with BamHI in the binary pMBP-1 vector under Califlower Mosaic Virus (CaMV) 355 promoter and neomycin phosphotransferase II (npt II) gene. The recombinant binary vector was mobilized into Agrobacterium-tumefaciens LBA4404 by the freeze-thaw method and potato (Solanum tubensum L. cv Desiree) was transformed by modified leaf-disc cocultivation. Shoots were induced on MS medium with 0.01 mg/L NAA, 0.1 mg/L GA$_3$, 2.0 mg/L Zeatin, 100.0 mg/L kanamycin, 500.0 mg/L carbenicillin. In order to identify the copy number of VP6 into potato plant, total genomic DNA was isolated from transgenic potato and analysed by Southern blotting. Genomic DNA and total mRNA analysis demonstrated the incorporation of the foreign gene into the potato genome, as well as their transcription.
Rotaviruses are the most common cause of severe vomiting and diarrhea in children worldwide and classified as a genus in the family Reoviridae. Rotavirus has eleven segmented dsRNAs and the virion consists of three shells. Outer capsid VP7 and VP4 induce neutralizing antibodies and are classified into G types (glycoprotein VP7) and P types (protease-sensitive VP4). Characterization of VP7 gene of Korean isolates of human rotavirus was performed using multiplex PCR and nucleotide sequence analysis. After RT-PCR amplification of full length (1,062 bp) of VP7 genes, the amplified PCR products were G typed by multiplex PCR and the nucleotide sequences were compared with those of reference rotavirus from GenBank. The G type analysis revealed that 25% (2/8) belong to G1, whereas 37.5% (3/8) benong to G2 and G4, respectively. The Korean isolates within the same serotypes showed high homology of nucleotide sequences and could be discriminated from foreign isolates exception with two strains (CAU009 and CAU022). But Korean isolates CAU009 and CAU022 were close related into japanease isolates 417 (99.2%) and indian isolates (97.6%) than Korean isolatese. Our results showed that these two strains were supposed to be originated from abroad. As a results, The G typing and nucleotide sequence analysis of VP7 gene of rotavirus isolated from infants in Korea could be used for identification, serotying and determination of novel or unusual strains of rotaviruses.
The neuropeptide vasopressin (VP) is a nine- amino acid hormone synthesized as preprohormone in the cell bodies of hypothalamic magnocellular neurons. The tumor in magnocellular neurons of the hypothalamus is associated with disfunctions of the cell bodies, leading to the diabetes insipidus. In order to produce the disease models with a defect in VP synthesis and its secretion, we have produced the transgenic mice regulated by VP constructs containing 3.8 kbp of the 5'flanking region and all the exons and introns in the mouse VP gene, which was fused at the end of exon 3 to a SV40 Tag. The two VP-transgene constructs differed by the lengths of their VP gene 3' flanking regions (2.1 versus 3.6 kbp). (omitted)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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