In the mouse leukemic monocyte cell line RAW 264.7, the vacuolar-type $(H^+)$-ATPase (V-ATPase) inhibitor bafilomycin $A_1$ at 10 and 100 nM decreased cell growth and survival as determined by 3-(4,5-dimethyl(thiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay in a concentration-dependent manner. At such concentrations, bafilomycin $A_1$ induced nitric oxide (NO) production through the expression of inducible nitric oxide synthase (iNOS). The bafilomycin $A_1$-induced NO production was inhibited by the NOS inhibitor $N^G$-monomethyl-L-arginine acetate (L-NMMA). Our findings suggest that the V-ATPase inhibitor bafilomycin $A_1$ induces NO production through the expression of iNOS protein.
Despite the importance of the receptor activator of nuclear factor (NF)-kappaB ligand (RANKL)-RANK signaling mechanisms on osteoclast differentiation, little has been studied on how RANK expression is regulated or what regulates its expression during osteoclastogenesis. We show here that insulin signaling increases RANK expression, thus enhancing osteoclast differentiation by RANKL. Insulin stimulation induced RANK gene expression in time- and dose-dependent manners and insulin receptor shRNA completely abolished RANK expression induced by insulin in bone marrow-derived monocyte/macrophage cells (BMMs). Moreover, the addition of insulin in the presence of RANKL promoted RANK expression. The ability of insulin to regulate RANK expression depends on extracellular signal-regulated kinase 1/2 (ERK1/2) since only PD98059, an ERK1/2 inhibitor, specifically inhibited its expression by insulin. However, the RANK expression by RANKL was blocked by all three mitogen-activated protein (MAP) kinases inhibitors. The activation of RANK increased differentiation of BMMs into tartrate-resistant acid phosphatase-positive ($TRAP^+$) osteoclasts as well as the expression of dendritic cell-specific transmembrane protein (DC-STAMP) and d2 isoform of vacuolar ($H^+$) ATPase (v-ATPase) Vo domain (Atp6v0d2), genes critical for osteoclastic cell-cell fusion. Collectively, these results suggest that insulin induces RANK expression via ERK1/2, which contributes to the enhancement of osteoclast differentiation.
This study was performed in order to investigate the effect of nifedipine, a vasodilating drug which acts through calcium antagonism, on renal function using mongrel dog. Nifedipine, when given interavenously in doses ranging from 1.5 to 5.0$\mu\textrm{g}$/kg, elicited diuresis along with less changes of glomerular filtration rate and significant increases of renal plasma flow, so that the filtration fraction(FF) decreased significantly, at the same time both osmolar and free water clearances increased, and amount of sodium, potassium and calcium excreted in urine increased significantly. Nifedipine, when infused into a renal artery in doses from 0.05 to 0.15$\mu\textrm{g}$/kg/min, exhibited identical responses to the actions of intraveneous nifedipine except significant increase of glomerular filtration rate and no change of FF, which was confined only to the infused kidney. The renal action of nifedipine into a renal artery were not influenced by renal denervation, decreased significantly by ouabain, Na$^+$-K$^+$-ATPase inhibitor, which was given into a renal artery. Nifedipine infused into a renal artery in dog pretreated with propranolol i.v. produced diuresis associated with the increase of electrolytes excretion by reduction of electrolyte reabsorption and with no changes of glomerular filtration rate and renal plasma flow. Thus, it is concluded that nifedipine infused into a renal aretery produces diuretic action along with both improvement of hemodynamics and inhibition of electrolytes reabsorption, which may be related to sympathetic $\beta$-receptor or Na$^+$-K$^+$-ATPase activity because the action of nifedipine in kidney is blocked by propranolol or ouabain.
The present study examined the effects of Taekunyukmijiwhang-tang (TV) on blood pressure and renal function in nitric oxide (NO)-dependent hypertensive rats. A phamacological inhibition of nitric oxide synthase (NOS) for 4-6 weeks produces renal vasoconstriction, renal dysfunction, and progressive severe hypertension. Treatment of rats with NG-Nitro-L-arginie methylester (L-NAME) (100 mg/L, 6 weeks), which is a nonspecific NOS inhibitor, cause a sustained increase in systolic blood pressure (SBP), along with the decrease in expression of ecNOS in the kidney and thoracic aorta. The expression of Na, K-ATPase α1 subunit in the kidney was also reduced in the L-NAME induced hypertensive rats group. The renal functional parameters including urine osmolality (Uosm), creatinine clearance (Ccr), which is an index of glomerular filtration (GFR) were decreased in rat with L-NAME induced hypertension. while solute-free water reabsoption (TcH₂O) was unchanged in all experimental group. However, the group combined treated with TV and L-NAME did not develop hypertension and expression of ecNOS in the aorta was restored. The expression of Na/sup +/, K/sup +/-ATpase α1 subunit in the kidney was markedly restored in L-NAME-induced hypertension rats by administration of TV along with the restoration of urinary volume (UV) and sodium excretion (UNaV), whlie Na/sup +/, K/sup +/-ATPase /β1 subunit was not altered. These results suggest that TV attenuates an increase in SSP in the L-NAME induced hypertension and restores partially renal function, which seems to be caused by up-regulation of expression of Na/sup +/, K/sup +/-ATPase α1 subunit in the kidney and ecNOS in thoracic aorta.
Kainic acid (KA) causes neurodegeneration, but no consensus has been reached concerning its mechanism. Nitric oxide may be a regulator of the mechanism. We identified differentially expressed genes in the hippocampus of mice treated with kainic acid, together with or without L-NAME, a nonselective nitric oxide synthase inhibitor, using a new differential display PCR method based on annealing control primers. Eight genes were identified, including clathrin light polypeptide, TATA element modulatory factor 1, neurexin III, ND4, ATPase, $H^+$ transporting, V1 subunit E isoform 1, and N-myc downstream regulated gene 2. Although the functions of these genes and their products remain to be determined, their identification provides insight into the molecular mechanism(s) involved in KA-induced neuronal cell death in the hippocampal CA3 area.
So, Keum Young;Kim, Sang Hun;Sohn, Hong Moon;Choi, Soo Jin;Parajuli, Shankar Prasad;Choi, Seok;Yeum, Cheol Ho;Yoon, Pyung Jin;Jun, Jae Yeoul
Molecules and Cells
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제27권5호
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pp.525-531
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2009
We studied the effect of carbachol on pacemaker currents in cultured interstitial cells of Cajal (ICC) from the mouse small intestine by muscarinic stimulation using a whole cell patch clamp technique and $Ca^{2+}$-imaging. ICC generated periodic pacemaker potentials in the current-clamp mode and generated spontaneous inward pacemaker currents at a holding potential of -70 mV. Exposure to carbachol depolarized the membrane and produced tonic inward pacemaker currents with a decrease in the frequency and amplitude of the pacemaker currents. The effects of carbachol were blocked by 1-dimethyl-4-diphenylacetoxypiperidinium, a muscarinic $M_3$ receptor antagonist, but not by methotramine, a muscarinic $M_2$ receptor antagonist. Intracellular $GDP-{\beta}-S$ suppressed the carbachol-induced effects. Carbachol-induced effects were blocked by external $Na^+$-free solution and by flufenamic acid, a non-selective cation channel blocker, and in the presence of thapsigargin, a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in the endoplasmic reticulum. However, carbachol still produced tonic inward pacemaker currents with the removal of external $Ca^{2+}$. In recording of intracellular $Ca^{2+}$ concentrations using fluo 3-AM dye, carbachol increased intracellular $Ca^{2+}$ concentrations with increasing of $Ca^{2+}$ oscillations. These results suggest that carbachol modulates the pacemaker activity of ICC through the activation of non-selective cation channels via muscarinic $M_3$ receptors by a G-protein dependent intracellular $Ca^{2+}$ release mechanism.
Park, In-Ho;Hwang, Moon-Young;Woo, Jae-Suk;Jung, Jin-Sup;Kim, Yong-Keun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제3권5호
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pp.529-538
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1999
This study was undertaken to examine the effect of ethanol on $Na^+ -dependent$ phosphate $(Na^+-P_i)$ uptake in opossum kidney (OK) cells, an established renal proximal tubular cell line. Ethanol inhibited ^Na^+-dependent$ component of phosphate uptake in a dose-dependent manner with $I_{50}$ of 8.4%, but it did not affect $Na^+-independent$ component. Similarly, ethanol inhibited $Na^+-dependent$ uptakes of glucose and amino acids (AIB, glycine, alanine, and leucine). Microsomal $Na^+-K^+-ATPase$ activity was not significantly altered when cells were treated with 8% ethanol. Kinetic analysis showed that ethanol increased $K_m$ without a change in $V_{max}$ of $Na^+-P_i$ uptake. Inhibitory effect of n-alcohols on $Na^+-P_i$ uptake was dependent on the length of the hydrocarbon chain, and it resulted from the binding of one molecule of alcohol, as indicated by the Hill coefficient (n) of 0.8-1.04. Catalase significantly prevented the inhibition, but superoxide dismutase and hydroxyl radical scavengers did not alter the ethanol effect. A potent antioxidant DPPD and iron chelators did not prevent the inhibition. Pyrazole, an inhibitor of alcohol dehydrogenase, did not attenuate ethanol-induced inhibition of $Na^+-P_i$ uptake, but it prevented ethanol-induced cell death. These results suggest that ethanol may inhibit $Na^+-P_i$ uptake through a direct action on the carrier protein, although the transport system is affected by alterations in the lipid environment of the membrane.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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