In Saccharomyces cerevisiae, Paf1 complex consists of five proteins, and they are structurally and functionally well conserved in yeast, fruit fly, plants, and human. With binding to RNA polymerase II from transcription start site to termination site, Paf1 complex functions as a platform for recruiting many types of transcription factors to RNA polymerase II. Paf1 complex contributes to H2B ubiquitination and indirectly influences on H3K4 di- and tri-methylation by histone crosstalk. But the individual effects of five components in Paf1 complex on these two histone modifications including H2B ubiquitination and H3K4 methylation largely remained to be identified. In this study, we constructed the single-gene knockout mutants of each Paf1 complex component and observed H3K4 mono-, di-, and trimethylation as well as H2B ubiquitination in these mutants. Interestingly, in each ${\Delta}paf1$, ${\Delta}rtf1$, and ${\Delta}ctr9$ strain, we observed the dramatic defect in H3K4 monomethylation, which is independent of H2B ubiquitination, as well as H3K4 di- and trimethylation. However, the protein level of Set1, which is methyltransferase for H3K4, was not changed in these mutants. This suggests that Paf1 complex may directly influence on H3K4 methylation by directly regulating the activity of Set1 or the stability of Set1 complex in an H2B ubiquitination independent manner.
ARF is an alternative reading frame product of the INK4a/ARF locus, inactivated in numerous human cancers. ARF is a key regulator of cellular senescence, an irreversible cell growth arrest that suppresses tumor cell growth. It functions by sequestering MDM2 (a p53 E3 ligase) in the nucleolus, thus activating p53. Besides MDM2, ARF has numerous other interacting partners that induce either cellular senescence or apoptosis in a p53-independent manner. This further complicates the dynamics of the ARF network. Expression of ARF is frequently disrupted in human cancers, mainly due to epigenetic and transcriptional regulation. Vigorous studies on various transcription factors that either positively or negatively regulate ARF transcription have been carried out. However, recent focus on posttranslational modifications, particularly ubiquitination, indicates wider dynamic controls of ARF than previously known. In this review, we discuss the role and dynamic regulation of ARF in senescence and cancer.
Post-translational covalent modifications by small molecules or peptides remodel target proteins. One such modification, made by ubiquitin or small ubiquitin-related modifier (SUMO), is a rapidly expanding field in cell signaling pathways. Ubiquitin attachment controls the turnover and degradation of target proteins while SUMO conjugation regulates their activity and function. Recent studies report many examples of cross-talk between ubiquitin and SUMO pathways, indicating that the boundary is no longer clear. Here, we review recent progress concerning how ubiquitin and SUMO participate in new regulatory roles in plant cell, and how ubiquitination and sumoylation control plant growth and development.
Imbalance of protein homeostasis (proteostasis) is known to cause cellular malfunction, cell death, and diseases. Elaborate regulation of protein synthesis and degradation is one of the important processes in maintaining normal cellular functions. Protein degradation pathways in eukaryotes are largely divided into proteasome-mediated degradation and lysosome-mediated degradation. Proteasome is a multisubunit complex that selectively degrades 80% to 90% of cellular proteins. Proteasome-mediated degradation can be divided into 26S proteasome (20S proteasome + 19S regulatory particle) and free 20S proteasome degradation. In 1980, it was discovered that during ubiquitination process, wherein ubiquitin binds to a substrate protein in an ATP-dependent manner, ubiquitin acts as a degrading signal to degrade the substrate protein via proteasome. Conversely, 20S proteasome degrades the substrate protein without using ATP or ubiquitin because it recognizes the oxidized and structurally modified hydrophobic patch of the substrate protein. To date, most studies have focused on protein degradation via 26S proteasome. This review describes the 26S/20S proteasomal pathway of protein degradation and discusses the potential of proteasome as therapeutic targets for cancer treatment as well as against diseases caused by abnormalities in the proteolytic system.
Kim, Youngmi;Kim, Hyuna;Park, Deokbum;Jeoung, Dooil
Molecules and Cells
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v.38
no.6
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pp.562-572
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2015
We previously reported the role of histone deacetylase 3 (HDAC3) in response to anti-cancer drugs. The decreased expression of HDAC3 in anti-cancer drug-resistant cancer cell line is responsible for the resistance to anti-cancer drugs. In this study, we investigated molecular mechanisms associated with regulation of HDAC3 expression. MG132, an inhibitor of proteasomal degradation, induced the expression of HDAC3 in various anti-cancer drug-resistant cancer cell lines. Ubiquitination of HDAC3 was observed in various anti-cancer drug-resistant cancer cell lines. HDAC3 showed an interaction with SIAH2, an ubiquitin E3 ligase, that has increased expression in various anti-cancer drug-resistant cancer cell lines. miRNA array analysis showed the decreased expression of miR-335 in these cells. Targetscan analysis predicted the binding of miR-335 to the 3'-UTR of SIAH2. miR-335-mediated increased sensitivity to anti-cancer drugs was associated with its effect on HDAC3 and SIAH2 expression. miR-335 exerted apoptotic effects and inhibited ubiquitination of HDAC3 in anti-cancer drug-resistant cancer cell lines. miR-335 negatively regulated the invasion, migration, and growth rate of cancer cells. The mouse xenograft model showed that miR-335 negatively regulated the tumorigenic potential of cancer cells. The down-regulation of SIAH2 conferred sensitivity to anti-cancer drugs. The results of the study indicated that the miR-335/SIAH2/HDAC3 axis regulates the response to anti-cancer drugs.
Rho guanine nucleotide dissociation inhibitor 1 (RhoGDI1) plays important roles in numerous cellular processes, including cell motility, adhesion, and proliferation, by regulating the activity of Rho GTPases. Its expression is altered in various human cancers and is associated with malignant progression. Here, we show that RhoGDI1 interacts with Cullin 3 (CUL3), a scaffold protein for E3 ubiquitin ligase complexes. Ectopic expression of CUL3 increases the ubiquitination of RhoGDI1. Furthermore, potassium channel tetramerization domain containing 5 (KCTD5) also binds to RhoGDI1 and increases its interaction with CUL3. Ectopic expression of KCTD5 increases the ubiquitination of RhoGDI1, whereas its knockdown by RNA interference has the opposite effect. Depletion of KCTD5 or expression of dominant-negative CUL3 (DN-CUL3) enhances the stability of RhoGDI1. Our findings reveal a previously unknown mechanism for controlling RhoGDI1 degradation that involves a CUL3/KCTD5 ubiquitin ligase complex.
Herpesvirus saimiri (HVS), a member of the $\delta$-herpesvirus family, encodes an oncoprotein called Saimiri Transforming Protein (STP) which is required for lymphoma induction in non-human primates. Previous study has shown that STP-C, an oncoprotein of HVS, activates NF-$\kappa$B signaling pathway. However, the detailed mechanism of STP-Cmediated NF-$\kappa$B activation has not been reported yet. We first report that STP-C interacts with TRAF6 protein in vivo and in vitro and further investigation shows that $Glu_{12}$ residue of STP-C is critical for binding to TRAF6. Introduction of ubiquitin together with STP-C augments NF-$\kappa$B activity compared to that of STP-C expression alone. STP-C expression further induces ubiquitination of endogenous TRAF6. In addition, either a deubiquitination enzyme, CYLD or a dominant negative E2-conjugation enzyme reduced NF-$\kappa$B activity in spite of the presence of STP-C, supporting that the interaction between STP-C and TRAF6 induces ubiquitination of TRAF6. NF-$\kappa$B activation by STP-C through the ubiquitinated TRAF6 causes the increased production of IL-8, an inflammatory chemokine and the enhanced expression of costimulatory molecule ICAM, which might ultimately contribute cellular transformation by the exposure of HVS-infected cells with inflammatory microenvironment and chronic activation.
Park, Su-Hyun;Jung, Eun-Ho;Kim, Geun-Young;Kim, Byung-Chul;Lim, Jae Hyang;Woo, Chang-Hoon
Molecules and Cells
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v.38
no.1
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pp.20-25
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2015
TGF-${\beta}$ regulates pleiotropic cellular responses including cell growth, differentiation, migration, apoptosis, extracellular matrix production, and many other biological processes. Although non-Smad signaling pathways are being increasingly reported to play many roles in TGF-${\beta}$-mediated biological processes, Smads, especially receptor-regulated Smads (R-Smads), still play a central mediatory role in TGF-${\beta}$ signaling for epithelial-mesenchymal transition. Thus, the biological activities of R-Smads are tightly regulated at multiple points. Inhibitory Smad (I-Smad also called Smad7) acts as a critical endogenous negative feedback regulator of Smad-signaling pathways by inhibiting R-Smad phosphorylation and by inducing activated type I TGF-${\beta}$ receptor degradation. Roles played by Smad7 in health and disease are being increasingly reported, but the molecular mechanisms that regulate Smad7 are not well understood. In this study, we show that E3 ubiquitin ligase Itch acts as a positive regulator of TGF-${\beta}$ signaling and of subsequent EMT-related gene expression. Interestingly, the Itch-mediated positive regulation of TGF-${\beta}$ signaling was found to be dependent on Smad7 ubiquitination and its subsequent degradation. Further study revealed Itch acts as an E3 ubiquitin ligase for Smad7 polyubiquitination, and thus, that Itch is an important regulator of Smad7 activity and a positive regulator of TGF-${\beta}$ signaling and of TGF-${\beta}$-mediated biological processes. Accordingly, the study uncovers a novel regulatory mechanism whereby Smad7 is controlled by Itch.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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