Genomic DNAs were extracted from the leaves of 182 ginkgo trees (Ginkgo biloba L.) planted in 6 regions and subjected to the analysis of both I-SSR and RAPD markers. A total of 227 amplicon variants were generated by PCR using 15 I-SSR primers and 67 amplicons by PCR with 5 RAPD primers. Levels of genetic diversity within 6 populations were turned out to be similar (Shannon's Index, I-SSR : 0.35~0.40; mean of 0.38, RAPD : 0.31~0.38; mean of 0.35, combined : 0.35~0.40; mean of 0.37). Ranks of the level of genetic diversity estimated from I-SSR, RAPD, and combined data were not coincided each other. Majority of genetic diversity was allocated among individuals within populations (I-SSR : 94.31%, RAPD : 93.62%, combined : 93.57%), which resulted in pretty low level of population differentiation. Genetic differentiation between male and female groups was turned out to be quite low (I-SSR : 0.03, RAPD : 0.091, combined : 0.043), which slightly fluctuated when analysis was restricted to the data obtained from 3 regions where both male and female trees were sampled (I-SSR : 0.038, RAPD : 0.084, combined : 0.047). Genetic relationships among the populations, reconstructed by UPGMA, were not coincided with geographic affinity, which might be resulted from sharing of seed sources in some regions. Whereas independent cluster analyses with I-SSR data and RAPD data, respectively, reclassified by sexes revealed two sexual groups in which all the male and the female populations were clustered together, cluster analysis with combined data did not show clear sexual grouping.
To analyze the genetic relationships among Korean potato cultivars and to develop cultivar identification method using DNA markers, we carried out genotyping using simple sequence repeats (SSR) analysis and developed multiplex-SSR set. Initially, we designed 92 SSR primer combinations reported previously and applied them to twenty four Korean potato cultivars. Among the 92 SSR markers, we selected 14 SSR markers based on polymorphism information contents (PIC) values. PIC values of the selected 14 markers ranged from 0.48 to 0.89 with an average of 0.76. PIC value of PSSR-29 was the lowest with 0.48 and PSSR-191 was the highest with 0.89. UPGMA clustering analysis based on genetic distances using 14 SSR markers classified 21 potato cultivars into 2 clusters. Cluster I and II included 16 and 5 cultivars, respectively. And 3 cultivars were not classified into major cluster group I and II. These 14 SSR markers generated a total of 121 alleles and the average number of alleles per SSR marker was 10.8 with a range from 3 to 34. Among the selected markers, we combined three SSR markers, PSSR-17, PSSR-24 and PSSR-24, as a multiplex-SSR set. This multiplex-SSR set used in the study can distinguish all the cultivars with one time PCR and PAGE (Polyacrylamide gel electrophoresis) analysis and PIC value of multiplex-SSR set was 0.95.
The principal objective of this study was to analyze 16S rDNA-ARDRA of the humus forest soil via an improved manual method and an ISOIL kit on the basis of the UPGMA clustering of the 16S rDNA combined profile, 44 ARDRA clusters of 76 clones via the ISOIL kit method and 45 ARDRA clusters of 136 clones via the improved manual method. On the basis of the 16S rDNA sequences, 44 clones from the ARDRA clusters by the ISOIL kit were classified into 3 phyla : ${\alpha}-,\;{\beta}-,\;{\gamma}-,\;{\delta}-Proteobacteria$, Acidobacteria and Actinobacteria. Using the improved manual method, the specimens were classified into 6 phyla : the ${\alpha}-,\;{\beta}-,\;{\gamma}-,\;{\delta}-Proteobacteria$, Acidobacteria, Bacteroides, Verrucomicrobia, Planctomycetes and Gemmatomonadetes. As a result, the modified manual method indicated greater phylogenetic diversity than was detected by the ISOIL kit. Approximately 40 percent of the total clones were identified as ${\alpha}-Proteobacteria$ and 30 percent of the total clones were ${\gamma}-Proteobacteria$ and assigned to dominant phylogenetic groups using the ISOIL kit. Using the modified manual method, 41 percent of the total clones were identified as Acidobacteria and 28 percent of total clones were identified as ${\alpha}-proteobacteria$ and assigned to dominant phylogenetic groups.
In Malaysia, Labisia pumila Benth & Hook f, popularly known as 'Kacip Fatimah' has been used traditionally to treat various elements of the woman's health in Malay community. The objective of this study was to develop randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) based DNA markers for the identification of L. pumila and to distinguish its three varieties from each other. Total DNA from nine accessions of L. pumila was extracted by CTAB method and polymerase chain reactions (PCR) were carried out to amplify the segments of DNA using different primers to develop DNA barcode using RAPD technique. To find out variety-specific DNA marker/s, twenty different 10-mer primer sequences with annealing temperature from 36-$40^{\circ}C$ were evaluated in triplicate. Out of 20 random primers, two primers (OPA-1 and OPA-2/A10) were selected which produced reliable RAPD band patterns. To have DNA based handle, two RAPD amplification products were cloned and sequenced to determine the identity of the DNA. RAPD analysis using two random primers generated 72 discrete bands ranging in size 200 bp-3,000 bp. Fifty nine of these were polymorphic loci (82%) and thirteen were non-polymorphic loci (18%). A total of 32 bands polymorphic loci (72%) were amplified with primer OPA-1 and analyzed by cluster analysis and UPGMA (Unweighted Pair Group Method with Arithmetic) to present a dendogram depicting the degree of genetic relationship among nine accessions of L. pumila. Our results shows the reasonable genetic diversity among the L. pumila varieties and within varieties; and two RAPD marker sequences obtained could be used to identify L. pumila at species level.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.130-130
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2003
Gummy stem blight pathogen is very difficult not only to monitor the inoculum levels prior to host infection, and also it is destructive and hard to control in field condition. We have applied RAPD technique to elucidate the genetic diversity of the genomic DNA of Didymella bryoniae and also to generate specific diagnostic DNA probe useful for identification and detection. The 40 primers produced clear bands consistently from the genomic DNA of twenty isolates of Didymella bryoniae, and two hundred seventy-three amplified fragments were produced with 40 primers. The combined data from 273 bands was analyzed by a cluster analysis using UPGMA method with an arithmetic average program of NTSYS-PC (Version 1.80) to generate a dendrogram. At the distance level of 0.7, two major RAPD groups were differentiated among 20 strains. RAPD group (RG) I included 8 isolates from watermelon except one isolate from melon. RAPD group (RG) IV included 12 isolates from squash, cucumber, watermelon and melon.. In amplification experiment with SCAR specific primer RG1F-RG1R resulted in a single band of 650bp fragment only for 8 isolates out of 20 isolates that should be designated as RAPD Group 1. However, same set of experiment done with RGIIF-RGIIR did not result in any amplified product.. Our attempts to detect intraspecific diversity of ITS region of rDNA by amplifying ITS region and 17s rDNA region for 20 isolates and restriction digestion of amplified fragment with 12 enzymes did not reveal polymorphic band. In order to develop RAPD markers for RGIV specific primer, a candidate PCR fragment( ≒1.4kb) was purified and Southern hybridized to the amplified fragment RGIV isolates. This promising candidate probe recognized only RGIV isolates
Randomly and specifically amplified polymorphic DNA band patterns based on polymerase chain reaction (PCR) analysis were used to assess genetic variation of somaclonal variants obtained from tissue culture of lisianthus (Eustoma grandiflorum). Five different types of variant were classified by morphological characters such as leaflet number, leaf shape, caulicle length, plant height, and leaf area. Five primers out of 20 primers (10 mer) resulted in 34 random amplified DNA fragments with polymorphisms (64.7%) in all tested plants. The dissimilarity coefficient was from 0.71 to 0.91 by UPGMA cluster analysis. Based on the presence of polymorphic bands, normal plant and five somaclonal variants were divided into two groups at the similarity coefficient value of 0.79.
Twenty isolates of Didymella bryoniae were isolated from infected cucurbit plants in various growing areas of southern Korea in 2001 and 2002. Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) group [RG] I of D. bryoniae was more virulent than RG IV to watermelon. Virulence of the RG I isolate was strong to moderate to cucumber, whereas that of the RG IV varied from strong, moderate to weak. Two hundred seventy-three amplified fragments were produced with 40 primers, and were analyzed by a cluster analysis using UPGMA method with an arithmetic average program of NTSYSPC. At the distance level of 0.7, two major genomic DNA RAPD groups were differentiated among 20 isolates. The RG I included 7 isolates from watermelon and one isolate from melon, whereas the RG IV included 12 isolates from squash, cucumber, watermelon and melon. Amplification of internal transcribed spacer (ITS) region and small subunit rRNA region from the 20 isolates yielded respectively a single fragment. Restriction pattern with 12 restriction enzymes was identical for all isolates tested, suggesting that variation in the ITS and small subunit within the D. bryoniae were low. Amplification of the genomic DNAs of the tested isolates with the sequence characterized amplified regions (SCAR) primer RG IF-RG IR specific for RG I group resulted in a single band of 650bp fragment for 8 isolates out of the 20 isolates. Therefore, these 8 isolates could be assigned into RG I. The same experiments done with RG IIF-RG IIR resulted in no amplified PCR product for the 20 isolates tested. An about 1.4 kb-fragment amplified from the RG IV isolates was specifically hybridized with PCR fragments amplified from genomic DNAs of the RG IV isolates only, suggesting that this PCR product could be used for discriminating the RG IV isolates from the RG I isolates as well other fungal species.
We developed and characterized 36 polymorphic microsatellite markers for the oyster mushroom (Pleurotus ostreatus). In total, 169 alleles were identified with an average of 4.7 alleles per locus. Values for observed ($H_o$) and expected ($H_E$) heterozygosities ranged from 0.027 to 0.946 and from 0.027 to 0.810, respectively. Nineteen loci deviated from Hardy-Weinberg equilibrium. Significant (P<0.05) excess heterozygosity was observed at nine loci. Linkage disequilibrium (LD) was significant (P<0.05) between pairs of locus alleles. Cluster analysis revealed that five species of genus Pleurotus made a distinct group, and the individual cultivars were grouped into major five groups from G-1 to G-5. The diverse cultivars of P. ostreatus were discriminated and the other four species revealed a different section in the UPGMA tree. These microsatellite markers proved to be very useful tools for genetic studies, including assessment of the diversity and population structure of P. ostreatus.
An, Hyejin;Jo, Ick-Hyun;Oh, Youn-Lee;Jang, Kab-Yeul;Kong, Won-Sik;Sung, Jwa-Kyung;So, Yoon-Sup;Chung, Jong-Wook
Mycobiology
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v.47
no.4
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pp.527-532
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2019
We designed 170 new simple sequence repeat (SSR) markers based on the whole-genome sequence data of button mushroom (Agaricus bisporus), and selected 121 polymorphic markers. A total of 121 polymorphic markers, the average major allele frequency (MAF) and the average number of alleles (NA) were 0.50 and 5.47, respectively. The average number of genotypes (NG), observed heterozygosity (HO), expected heterozygosity (HE), and polymorphic information content (PIC) were 6.177, 0.227, 0.619, and 0.569, respectively. Pearson's correlation coefficient showed that MAF was negatively correlated with NG (-0.683), NA (-0.600), HO (-0.584), and PIC (-0.941). NG, NA, HO, and PIC were positively correlated with other polymorphic parameters except for MAF. UPGMA clustering showed that 26 A. bisporus accessions were classified into 3 groups, and each accession was differentiated. The 121 SSR markers should facilitate the use of molecular markers in button mushroom breeding and genetic studies.
This study was carried out to identify the genetic diversity of Penicillium isolates that were isolated from pears with postharvest decay in storage. URP-PCR was used to detect DNA diversity of 84 Penicillium isolates. Based on URP-PCR profiles, 18 Penicillium isolates were selected and their PCR polymorphic bands were produced by additional primers URP1F, URP2R, URP2F, and URP4R. UPGMA cluster analysis using the polymorphic bands showed four clustered groups and futhermore cultural and morphological features characterized the 18 Penicillium isolates. Group 1 was dominant, which occupies 70% in the four clustered groups and identified as P. expansum based on ITS sequence and morphological features.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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