본 연구는 화장품 소재로서 우절 에탄올추출물의 가능성을 확인하기 위한 것이다. 이를 위해 우리는 연근의 마디부분을 70%에탄올로 추출하여 사용하였으며 미백효능 및 주름개선 효과에 대한 생물학적 활성 평가를 수행하였다. 시료의 미백활성을 알아보기 위해 멜라닌세포(B16F10 cells)의 MTT assay를 이용한 샘플의 독성평가와 멜라닌 생성에 영향을 주는 관련 단백질의 발현량을 확인하였다. 시료의 주름활성억제 평가를 위해 collagenase inhibition assay를 수행하였다. 또한 UVB로 유도된 섬유아세포(CCD-986sk cells)의 MTT assay를 이용한 샘플의 독성평가와 matrix metalloprotease (MMP-1) inhibition 및 procollagen synthesis를 평가하였다. 미백활성 평가를 알아보기 위한 western bolt 결과, 멜라닌 생성과 관련된 두 단백질 Tyrosinase related protein-1 (TRP-1, Tyrosinase related protein-2 TRP-2)의 합성이 농도의존적으로 감소됨을 나타내었다. 게다가 우절 에탄올추출물의 collagenase inhibiion 실험의 결과, $500{\mu}g/ml$의 농도에서 대조군인 EGCG와 효능이 비슷한 80% 이상의 효과를 나타내었다. Procollagen synthesis 결과 UVB 자극군에 의해 콜라겐 합성은 68.8%로 감소되었으며 시료의 $25{\mu}g/ml$의 농도에서 80.2%의 콜라겐 합성에 회복능을 보였다. MMP-1 inhibition 실험결과는 $25{\mu}g/ml$ 농도에서 20.2%의 저해능을 나타내었다. 실험 결과는 NRN의 미백 및 주름 억제 효과를 검증하고, 향후 안전한 천연 화장품 재료로 사용될 수 있음을 확인했다.
Piper methysticum 뿌리의 에탄올 추출물은 멜라닌 세포 자극 호르몬 활성화 B16 흑색종 세포에서 멜라닌 생성을 억제하는 것으로 알려져 왔다. 이 추출물로부터 분리한 flavokawain B (FKB)와 flavokawain C (FKC)는 항멜라닌 생성 활성을 기반으로 멜라닌 생성을 억제하는 것으로 밝혀져 있다. 본 연구는 melan-a 세포에서의 멜라닌 합성에 대한 FKB 및 FKC의 억제 및 그 과정을 알아보고자 하였다. FKB와 FKC는 각각 10 μM, 5 μM 농도에서 melan-a 세포의 멜라닌 생성을 억제하였다. 그러나 FKB와 FKC 모두 세포 외 타이로시네이즈 활성은 억제하지 않았다. FKB는 타이로시네이즈 (tyrosinase, Tyr), 타이로시네이즈 연관 단백질 1 (tyrosinaserelated protein 1, TRP-1)과 2(tyrosinase-related protein 2, TRP-2), microphthalmia-associated transcription factor (MITF)의 단백질 발현량을 감소시켰으며 Tyr와 TRP-1의 mRNA 발현량을 감소시켰다. FKC는 TRP-2와 MITF의 단백질 발현량을 감소시켰으며 Tyr와 TRP-1의 mRNA 발현량을 감소시켰다. Tyr와 TRP-1의 감소된 발현은 주요 멜라닌 생성 단백질을 조절하는 MITF발현 감소로 인한 것임을 예상할 수 있었다. 다만 MITF의 mRNA 발현량은 FKB와 FKC 처리에 의해 변하지 않았기 때문에, MITF의 분해를 조절한다고 알려진 세포 외 신호 조절 키나아제(ERK)/AKT 인산화에 대한 FKB와 FKC의 영향을 확인하였다. FKB와 FKC는 AKT의 인산화를 증가시키지는 않았지만 ERK1/2의 인산화를 유의미하게 증가시켰다. 이러한 결과는 FKB와 FKC가 다양한 색소 침착 증상들에 대한 잠재적인 미백제로 도움이 될 수 있음을 말해준다.
We evaluated the antioxidant activity and anti-melanogenic effects of Oenothera laciniata methanol extract (OLME) in vitro by using melan-a cells. The total polyphenol and flavonoid content of OLME was 66.3 and 19.0 mg/g, respectively. The electron-donating ability, 2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) radical-scavenging activity, and superoxide dismutase (SOD)-like activity of OLME ($500{\mu}g/mL$) were 94.5%, 95.6%, and 63.6%, respectively. OLME and arbutin treatment at $50{\mu}g/mL$ significantly decreased melanin content by 35.5% and 14.2%, respectively, compared to control (p < 0.05). OLME and arbutin treatment at $50{\mu}g/mL$ significantly inhibited intra-cellular tyrosinase activity by 22.6% and 12.6%, respectively, compared to control (p < 0.05). OLME ($50{\mu}g/mL$) significantly decreased tyrosinase, tyrosinase-related protein-1 (TRP-1), TRP-2, and microphthalmia-associated transcription factor-M (MITF-M) mRNA expression by 57.1%, 67.3%, 99.0%, and 77.0%, respectively, compared to control (p < 0.05). Arbutin ($50{\mu}g/mL$) significantly decreased tyrosinase, TRP-1, and TRP-2 mRNA expression by 24.2%, 42.9%, and 48.5%, respectively, compared to control (p < 0.05). However, arbutin ($50{\mu}g/mL$) did not affect MITF-M mRNA expression. Taken together, OLME showed a good antioxidant activity and anti-melanogenic effect in melan-a cells that was superior to that of arbutin, a well-known skin-whitening agent. The potential mechanism underlying the anti-melanogenic effect of OLME was inhibition of tyrosinase activity and down-regulation of tyrosinase, TRP-1, TRP-2, and MITF-M mRNA expression.
본 연구에서는 80% 식물성 알코올을 추출 용매로 사용해 오디를 빛을 차단 후 실온에서 3일 간 추출하였다. 3회 여과한 후 최소 온도($40{\sim}60^{\circ}C$)에서 농축한 뒤 동결 건조하여 파우더 형태로 사용하였다. 오디(Morus alba)의 에탄올 추출물은 B16/F10 세포의 항산화 및 멜라닌 합성 억제 효과를 나타내었다. 멜라닌 함량과 세포 내 tyrosinase 활성을 Western blotting으로 측정 하였다. Tyrosinase와 tyrosinase-related protein (TRP) -1은 tyrosinase-related protein (TRP) -2보다 강력하게 억제되었으며, 이들 결과는 tyrosinase와 TRP-1은 흑갈색을 띠는 eumelanin의 생합성의 억제와 강한 상관관계가 있음을 보여 주었다. ${\alpha}$-melanocyte-stimulating hormone (${\alpha}$-MSH) 처리 한 B16/F10 흑색 종 세포에서 M. alba 에탄올 추출물은 멜라닌 생성 연관 단백질의 발현 및 멜라닌 생성이 용량 의존적으로 억제 하였다. 멜라닌 함량과 세포 내 tyrosinase 활성을 Western blotting으로 측정 하였다. 또한 DPPH와 SOD를 사용하여 항산화 활성을 분석하였고 총 폴리 페놀과 총 플라보노이드 함량을 측정 하였다. MTT assay 분석을 사용하여 M. alba 에탄올 추출물의 세포 독성을 측정 하였다. B16/F10 멜라닌 생성 세포의 tyrosinase 저해 활성 및 사멸 효과가 일반적으로 효과적이었다. 따라서 M. alba 에탄올 추출물은 항산화 및 미백 효과를 나타내며, 기능성 화장품의 천연 성분으로서 우수한 것으로 여겨진다.
선학초 추출물을 기능성 화장품 소재로 활용하기 위하여 미백효과를 검증하였다. 세포 내 tyrosinase 저해활성 측정결과 선학초 에탄올 추출물 $500{\mu}g/mL$에서 42%의 저해활성을 나타내었다. 이는 선학초 추출물이 세포 내 tyrosinase 발현을 억제시킴으로서 멜라닌 합성 또한 저해 하는 것임을 확인 할 수 있었다. 선학초 추출물의 단백질 발현과 mRNA 발현 억제효과를 검토한 결과 선학초 열수 및 에탄올 추출물을 처리한 B16F10군에서는 tyrosinase protein의 발현이 처리하지 않은 군보다 감소함을 확인할 수 있었다. 결과적으로 선학초 추출물의 미백효능을 확인할 수 있었으며, 식품 및 화장품의 기능성 소재로 이용이 가능할 것으로 판단된다.
본 연구는 참까막살 에탄올 추출물이 천연 미백 소재로의 가능성을 알아보기 위해 멜라닌 함량, 세포내 tyrosinase 활성 측정 및 Western blotting 실험이 수행되었다. 참까막살 에탄올 추출물의 농도에 따른 MTT assay를 통해 세포 생존율 및 증식에 큰 영향을 미치지 않는 $500{\mu}g/ml$ 농도까지를 실험 조건으로 설정하였다. B16F10 melanoma cell의 melanin 생성에 미치는 영향을 측정한 결과 대조군에 비하여 ${\alpha}-MSH$만 처리한 경우 뚜렷하게 증가하였고, 참까막살 에탄올 추출물을 100, 300, $500{\mu}g/ml$의 농도로 각각 처리한 결과 ${\alpha}-MSH$만을 처리한 것에 비해 25%, 30%, 35%로 농도 의존적으로 감소하였다. Tyrosinase 활성도 100, 300, $500{\mu}g/ml$의 농도로 처리한 결과 ${\alpha}-MSH$만을 처리한 것에 비해 6%, 12%, 21%로 감소하였다. 참까막살 에탄올 추출물의 멜라닌 합성 관련 단백질 발현에 대한 영향을 확인하기 위하여 Western blot으로 미백관련 전사인자인 MITF, TRP-1, TRP-2, Tyrosinase 발현을 조사하였다. ${\alpha}-MSH$을 단독 처리한 경우에 각 단백질의 발현이 현저하게 증가하는 것을 확인 할 수 있었고 반면 참까막살 에탄올 추출물을 처리한 경우 농도 의존적으로 감소하는 것으로 나타났으며 특히 $500{\mu}g/ml$의 농도에서 매우 효과적으로 억제되었다. 본 연구 결과 참까막살 에탄올 추출물은 멜라닌 생합성에 관련된 유전자인 MITF, TRP-1, TRP-2, Tyrosinase의 발현을 억제하는 것으로 나타나, 향후 기능성 화장품 개발에 있어 효과적인 미백 기능성 해양 소재로 활용될 것으로 기대된다.
Objective : The present study was designed to assess the potential inhibitory activity of an ethanol extract of Belamcandae Rhizoma (EBR) on the alpha-melanocyte stimulating hormone (${\alpha}$-MSH)-induced melanogenesis signal pathway in B16F10 melanoma cells. Methods : Several experiments were performed in B16F10 melanoma cells. We studied tyrosinase activity, melanin content, cell-free tyrosinase activity and DOPA stain, and performed Western blots and RT-PCR for proteins and mRNA involved in melanogenesis. Results : ${\alpha}$-MSH-induced tyrosinase activity and melanin content were inhibited significantly by EBR. EBR markedly suppressed the protein expression level of tyrosinase in B16F10 melanoma cells. On the other hand, the expression of tyrosinase-related protein-1 (TRP-1) and -2 (TRP-2; DCT) were not affected by EBR. To elucidate the mechanism of the depigmenting property of EBR, we examined the involvement EBR in cAMP response element binding (CREB) protein phosphorylation and microphthalmia-associated transcription factor (MITF) signalling induced by ${\alpha}$-MSH. EBR did not regulate CREB phosphorylation and MITF expression by ${\alpha}$-MSH. Nevertheless, the mRNA expression of tyrosinase was significantly attenuated by EBR treatment without changes in the expression of TRP-1 and -2 mRNA. Conclusion : Our study suggested that EBR inhibits ${\alpha}$-MSH-induced melanogenesis by suppressing tyrosinase mRNA.
The green marine algae, Capsosiphon fulvescens (CF) is a food supplement cultivated in south coast of Southern Korea. The purpose of this study was to investigate the mechanism of CF-induced hypopigmentation. The present study was designed to determine the effect of CF extracton melanogenesis in B16 cells, particularly its specific effects on tyrosinase and tyrosinase-related protein 2 (TRP-2). We measured melanin contents and analyzed melanosome associated protein levels using Western blot and Reverse transcription-polymerase chian reaction (RT-PCR) analysis. CF extract markedly inhibited melanin synthesis and tyrosinase activity. In addition, cellular dendricity was slightly decreased by CF extract. In further experiments, CF extract significantly reduced the protein levels of tyrosinase and TRP-2 in B16 cells. RT-PCR analysis revealed that tyrosinase and TRP-2 mRNA levels were unaffected by CF treatment. Therefore, these results suggest that hypopigmentary effect of CF was due to post-translational degradationof tyrosinase and TRP-2.
Melanogenesis is induced mainly by ultraviolet radiation of sunlight and ${\alpha}-melanocyte$-stimulating hormone (${\alpha}-MSH$) which binds to a specific G protein coupled receptor. The purpose of this study was to investigate the mechanism of melanogenesis inhibition in B16/F10 cells by methanol extract of Rubus coreanus Miquel (RCM). In the present study, ${\alpha}-MSH$ and forskolin led to a stimulation of melanin synthesis that appeared to result from an increased tyrosinase activity and melanin content. However, RCM inhibited the ${\alpha}-MSH$- and forskolin-induced melanin synthesis. In addition, RCM abolished the ${\alpha}-MSH$- and forskolin-induced cytoplasmic dendricity. Regarding protein levels of the melanogenic enzymes, the amounts of tyrosinase and tyrosinase-related protein 1 (TRP-1) were increased after incubation with α-MSH and forskolin. The treatment of RCM decreased the ${\alpha}-MSH$- and forskolin-induced expression levels of tyrosinase and TRP-1. Based on these findings, it is likely that RCM exerts its depigmenting effects in B16/F10 cells through the suppression of tyrosinase and TRP-1 expression, which are key enzymes for melanogenesis.
TYR (Tyrosinase) and TYRP1 (Tyrosinase-related protein 1) play crucial roles in determining the coat color of birds. In this paper, we aimed to characterize the relationship of TYR and TYRP1 genes with plumage colors in Korean quails. The SNPs were searched by cDNA sequencing and PCR-SSCP in three plumage color Korean quails (maroon, white and black plumage). Two SNPs ($367T{\rightarrow}C$ and $1153C{\rightarrow}T$) were found in the coding region of TYRP1 gene, but had no significant association with plumage phenotype in Korean quails. The expression of TYR was higher in black plumage quails than that in maroon plumage quails. In contrast, the expression of TYRP1 was lower in black plumage quails than that in maroon plumage quails. This study suggested that the melanic plumage color in Korean quails may be associated with either increased production of TYR or decreased production of TYRP1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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