돼지유행성설사 바이러스(porcine epidemic diarrhea virus: PEDV)는 자돈에게 감염 시 수양성설사를 동반한 급성 장염을 유발하며 매우 높은 폐사율을 보이는 그룹 1 코로나바이러스이다. PEDV는 다른 그룹 1 코로나바이러스와 마찬가지로 숙주 세포에 감염 시 aminopeptidase N (APN)을 세포 수용체로 이용한다고 알려져 있다. 코로나바이러스의 spike(S) 단백질은 숙주세포의 표면에 부착과 관련하여 감염 개시에 있어 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있으며 특히 S 단백질의 S1 도메인은 세포 수용체에 특이적인 결합을 매개하는 수용체 결합 도메인(receptor binding domain: RBD)을 포함하고 있는 것으로 알려져 있다. 이미 많은 코로나바이러스의 RBD의 위치가 확인되어져 있지만 PEDV의 RBD에 대해서는 아직까지 알려진 바가 없다. 본 연구에서는 돼지 APN 수용체와 결합을 매개하는 PEDV의 RBD를 규명하기 위해 S1 도메인을 주형으로 하는 일련의 재조합 truncated variant들을 제작하였고 각각의 truncated들이 실제로 pAPN과의 결합을 이루는지에 대하여 실험을 통해 확인하였다. 그 결과 S1 도메인의 N 말단 부분이 pAPN과의 결합에서 중요한 부위임을 확인할 수 있었다. 본 연구에서 도출된 결과는 향후 PEDV의 S 단백질과 pAPN간의 분자적 상호작용을 이해하는 데에 도움을 줄 것으로 판단된다.
A 2-D gel protein analysis of Lactobacillus reuteri ATCC 55739 produced spots corresponding to subunits of the pyruvate dehydrogenase complex, as identified by N-terminal protein sequencing. Oligonucleotide probes specific for the subunits of the pyruvate dehydrogenase complex were synthesized ,md used to screen a L. reuteri genomic library to clone the structural genes. Two positive clones were isolated and identified as having the same 2.2 kb insert. A pdhB encoding the $\beta$-subunit of El subunit (pyruvate dehydrogenase component) of the pyruvate dehydrogenase complex was located in the middle of the insert. Furthermore, a 5' truncated pdhA encoding the $\alpha$-subunit of the E1 subunit and a 3' truncated pdhC encoding the E2 subunit (dihydrolipoamide acetyltransferase) were also located upstream and downstream of the pdhB, respectively.
The xynC gene, which encodes high molecular weight xylanase from Paenibacillus sp. DG-22, was cloned and expressed in Escherichia coli, and its nucleotide sequence was determined. The xynC gene comprised a 4,419bp open reading frame encoding 1,472 amino acid residues, including a 27 amino acid signal sequence. Sequence analysis indicated that XynC is a multidomain enzyme composed of two family 4_9 carbohydrate-binding modules (CBMs), a catalytic domain of family 10 glycosyl hydrolases, a family 9 CBM, and three S-layer homologous domains. Recombinant XynC was purified to homogeneity by heat treatment, followed by Avicel affinity chromatography. SDS-PAGE and zymogram analysis of the purified enzyme identified three active truncated xylanase species. Protein sequencing of these truncated proteins showed that all had identical N-terminal sequences. In the protein characterization, recombinant XynC exhibited optimal activity at pH 6.5 and $65^{\circ}C$ and remained stable at neutral to alkaline pH (pH 6.0-10.0). The xylanase activity of recombinant XynC was strongly inhibited by 1 mM $Cu^{2+}$ and $Hg^{2+}$, whereas it was noticeably enhanced by 10 mM dithiothreitol. The enzyme exhibited strong activity towards xylans, including beechwood xylan and arabinoxylan, whereas it showed no cellulase activity. The hydrolyzed product patterns of birchwood xylan and xylooligosaccharides by thin-layer chromatography confirmed XynC as an endoxylanase.
Bacillus thuringiensis Cyt2Aa toxin is a mosquito-larvicidal and cytolytic $\delta$-endotoxin, which is synthesized as a protoxin and forms crystalline inclusions within the cell. These inclusions are solubilized under alkaline conditions and are activated by proteases within the larval gut. In order to assess the functions of the N-and C-terminal regions of the protoxin, several N- and C-terminal truncated forms of Cyt2Aa were constructed. It was determined that amino acid removal at the N-terminal, which disrupts the $\beta$1 structure, might critically influence toxin production and inclusion formation. The deletion of 22 amino acids from the C-terminus reduced the production and solubility of the toxin. However, the removal of more than 22 amino acids from the C-terminus or the addition of a bulky group to this region could result in the inability of the protein to adopt the proper folding. These findings directly demonstrated the critical roles of N- and C-terminal amino acids on the production and folding of the B. thuringiensis cytolytic $\delta$-endotoxin.
일반적으로 대장균을 숙주로 이용하여 고등생물 유래 막단백질을 발현시킬 경우 발현된 막단백질은 숙주 세포에 치명적인 독성을 보인다. 우리가 발현을 시도한 15개의 인간 막단백질 중에서 특히 퓨린수용체 $P2X_4$ 발현은 대장균에 강한 독성을 보였다. 이러한 독성의 원인을 알아보기 위해 hydroxylamine을 사용하여 하여 인간 $P2X_4$ 유전자를 돌연변이 시키고 독성이 약해진 돌연변이체를 선별하였다. 돌연변이체 단백질을 면역블랏으로 분석한 결과 야생형에 비해 모두 단백질의 크기가 작았다. 크기가 제법 큰 돌연변이 두 개를 골라 DNA 서열분석을 해보니 130번째, 또는 194번째 Trp 코돈이 종결코돈으로 바뀜으로써 두 번째 막통과 도메인이 사라진 truncated protein이라는 사실을 알았다. 이들 돌연변이체의 세포내 위치를 추적해보니 둘 다 세포막에 삽입되어 있지는 않았다. 이런 결과를 종합해 볼 때 $P2X_4$의 발현이 대장균에 독성을 보이기 위해서는 전체 단백질의 올바른 세포막 삽입이 중요함을 시사한다.
A native strain of Pasteurella multocida was isolated from pigs suffering from severe atrophic rhinitis at domestic farms in Gyeonggi Province, Korea, and was identified as capsular serogroup 'D' and somatic serotype '4' by disc diffusion decapsulation and gel diffusion precipitation tests, respectively. The P. multocida (D:4) induced atrophic rhinitis in healthy pigs by the secondary infection. The gene for outer membrane protein H (ompH) of P. multocida (D:4) was cloned in Escherichia coli DH5$\alpha$ by PCR. The open reading frame of the ompH was composed of 1,023 bp, possibly encoding a protein with 341 amino acid residues containing a signal peptide of 20 amino acids at N-terminus, and the gene product with molecular mass of ca. 38 kDa was identified by SDS-PAGE. Hydropathy profiles indicated that there are two variable domains in the OmpH. To express the ompH in E. coli, the gene was manipulated in various ways. Expression of the truncated as well as full-length forms of the recombinant OmpH was fatal to the host E. coli BL21 (DE3). However, the truncated OmpH fused with GST was consecutively expressed in E. coli DH5$\alpha$. A large quantity of the fused polypeptide was purified through GST-affinity chromatography.
The optic nerve often suffers regenerative failure after injury, leading to serious visual impairment such as glaucoma. The main inhibitory factors, including Nogo-A, oligodendrocyte myelin glycoprotein, and myelin-associated glycoprotein, exert their inhibitory effects on axonal growth through the same receptor, the Nogo-66 receptor (NgR). Oncomodulin (OM), a calcium-binding protein with a molecular weight of an ~12 kDa, which is secreted from activated macrophages, has been demonstrated to have high and specific affinity for retinal ganglion cells (RGC) and promote greater axonal regeneration than other known polypeptide growth factors. Protamine has been reported to effectively deliver small interference RNA (siRNA) into cells. Accordingly, a fusion protein of OM and truncated protamine (tp) may be used as a vehicle for the delivery of NgR siRNA into RGC for gene therapy. To test this hypothesis, we constructed OM and tp fusion protein (OM/tp) expression vectors. Using the indirect immunofluorescence labeling method, OM/tp fusion proteins were found to have a high affinity for RGC. The gel shift assay showed that the OM/tp fusion proteins retained the capacity to bind to DNA. Using OM/tp fusion proteins as a delivery tool, the siRNA of NgR was effectively transfected into cells and significantly down-regulated NgR expression levels. More importantly, OM/tp-NgR siRNA dramatically promoted axonal growth of RGC compared with the application of OM/tp recombinant protein or NgR siRNA alone in vitro. In addition, OM/tp-NgR siRNA highly elevated intracellular cyclic adenosine monophosphate (cAMP) levels and inhibited activation of the Ras homolog gene family, member A (RhoA). Taken together, our data demonstrated that the recombinant OM/tp fusion proteins retained the functions of both OM and tp, and that OM/tp-NgR siRNA might potentially be used for the treatment of optic nerve injury.
COVID-19 is an emerging disease that poses a severe threat to global public health. As such, there is an urgent demand for vaccines against SARS-CoV-2, the virus that causes COVID-19. Here, we describe a virus-like nanoparticle candidate vaccine against SARS-CoV-2 produced by an E. coli expression system. The fusion protein of a truncated ORF2-encoded protein of aa 439~608 (p170) from hepatitis E virus CCJD-517 and the receptor-binding domain of the spike protein from SARS-CoV-2 were expressed, purified and characterized. The antigenicity and immunogenicity of p170-RBD were evaluated in vitro and in Kunming mice. Our investigation revealed that p170-RBD self-assembled into approximately 24 nm virus-like particles, which could bind to serum from vaccinated people (p < 0.001) and receptors on cells. Immunization with p170-RBD induced the titer of IgG antibody vaccine increased from 14 days post-immunization and was significantly enhanced after a booster immunization at 28 dpi, ultimately reaching a peak level on 42 dpi with a titer of 4.97 log10. Pseudovirus neutralization tests showed that the candidate vaccine induced a strong neutralizing antibody response in mice. In this research, we demonstrated that p170-RBD possesses strong antigenicity and immunogenicity and could be a potential candidate for use in future SARS-CoV-2 vaccine development.
PEP-1 peptide has been used for transduction of native protein into mammalian cells. This work describes the findings that the fusion of PEP-1 to target proteins led to protein truncation likely in a non-protein-specific manner. Approximately 75% of PEP-1-MsrA fusion protein was truncated in the N-terminal region of MsrA between Lys-27 and Val-28 during expression in Escherichia coli and purification. This large protein truncation was also observed in another PEP-1 fused protein, PEP-1-MsrB2, in the N-terminal region of MsrB2. The full-length PEP-1-MsrA protein was rapidly transduced into keratinocyte cells within 15 min. The transduced PEP-1-MsrA was functionally active and could protect skin cells against oxidative stress- and ultraviolet radiation-induced cell death. Collectively, our data demonstrated the protective roles of MsrA in skin cells and, moreover, may raise a concern of protein truncation caused by fusion of PEP-1 about the general use of this peptide for protein transduction.
To analyze subcellular localization of betanodavirus protein B2, a plasmid expressing Betanodavirus protein B2 fused to enhanced green fluorescent protein (EGFP-Nl) was constructed. The transient expression of full-length B2 fused to EGFP in GF cells confirmed the equal distribution of protein B2 between cytoplasm and nucleus. However, transfection of N-terminal half of the B2 revealed that this truncated form predominantly localized to the cytoplasm. By using several deletion mutants and point mutants, we determined the regions and/or motif responsible for the subcellular localization of betanodavirus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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