The cultivation area and use of genetically modified (GM) crops have been increased continuously over the world. Seed distribution and transgenes to environmental ecosystem is one of the most important factors in risk assessment and risk management of GM crop. Safe management for the development and commercialization of GM crops is required according to The Act on Transboundary Movements of Living Modified Organisms,etc (LMO Act) in Korea. This study was conducted to setup the environmental monitoring system of GM zoysiagrass (event JG21 and JG21-MS). The monitoring was performed in 4 GMO confined fields, Sungwhan, Ochang, Jeju University and Jeju Namwon. In the result of monitoring, we could not found any gene flow and distribution of GM zoysiagrass in the 3 fields, but one spill of JG21 was found in the Namwon field in 2012. These results suggest that continuous monitoring is necessary to detect the occurrence of GM zoysiagrass for preventing genetic contamination in natural environment.
This study was carried out to investigate the tissue-specific expression of ${\beta}$-glucuronidase (gus) gene driven by endosperm-specific promoter (Z4 promoter) in the transgenic tobacco and to find out inheritance pattern of transgene to the next generation. Tobacco (Nicotiana tabaccum cv. Havana SR1) was transformed with Agrobacterium tumerfaciens LBA4404 harboring BV3 construct containing gus gene driven by Z4 promoter and a kanamycin resistant gene. Seven hundred bp PCR products, indicating the presence of npt II gene, were found in the all eight transformants by PCR analysis using nptII primers. To study the expression pattern of the two different kind of promoters, leaf disks of the Z4pro-gus-transformed plants and 35Spro-gus-transformed plants were analyzed histochemically for gus activity. As a result, leaf disks of Z4pro-gus-transformed plants showed very weak and partial positive gus activity. In contrast, leaf disks of 35Spro-gus-transformed plants showed relatively strong positive gus activity. To investigate the expressed position of Z4 promoter, seeds from Z4pro-gus-transformed plants and 35Spro-gus-transformed plants were analyzed histochemically for gus activity. Z4pro-gus-transformed seeds showed positive gus activity restricted to the endosperm. However, the blue-colored product in 35Spro-gus-transformed seeds was observed in all the area including endosperm. Kanamycin resistance assay showed that transgenes were stably inherited to next generation in all lines.
A system for the production of transgenic plants has been developed for tall fescue (Festuca arundinacea Schreb.) via Agrobacterium-mediated transformation of mature seed-derived embryogenic callus. Seed-derived calli were infected and co-cultured with Agrobacterium EHA101 carrying standard binary vector pIG121Hm encoding the hygromycin phosphotransferase (HPT), neomycin phosphotransferase II (NPTII) and intron-containing $\beta$-glucuronidase (intron-GUS) genes in the T-DNA region. The effects of several factors on transformation and the expression of the GUS gene were investigated. Inclusion of $200\mu\textrm{M}$ acetosyringone (AS) in inoculation and co-culture media lead to a increase in stable transformation efficiency. Transformation efficiency was increased when embryogenic calli were co-cultured for 5 days on the co-culture medium. The highest transformation efficiency was obtained when embryogenic calli were inoculated with Agyobacterium in the presence of 0.1% Tween20 and $200\mu\textrm{M}$ AS. Hygromycin resistant calli were developed into complete plants via somatic embryogenesis. GUS histochemical assay and Southern blot analysis of transgenic plants demonstrated that transgenes were successfully integrated into the genome of tall fescue.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.26
no.4
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pp.193-198
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2006
Effects of acetosyringone and on Agrobacterium-mediated transformation of orchardgrass were investigated. Embryogenic calli induced from 3 varieties, Frontier, Potomac and Roughrider, were infected and co-cultured with Agrobacterium EHA101 carrying standard binary vector pIG121Hm encoding the hygromycin phosphotransferase(HPT), neomycin phosphotransferase II(NPTII) and intron-containing ${\beta}-glucuronidase$ (intron-GUS) genes in the T-DNA region. The effects of varieties and acetosyringone(AS) concentrations on transformation and the expression of the GUS gene were investigated. Inclusion of $200{\mu}M$ AS in inoculation and co-cultivation media lead to a significant increase in stable transformation efficiency. Hygromycin resistant calli were developed into complete plants via somatic embryogenesis. GUS histochemical assay and PCR analysis of transgenic plants demonstrated that transgenes were integrated into the genome of orchardgrass.
This study was carried out to develop a model system using selection method for disease resistant plant breeding programs using a herbicide bialaphos-resistant patII gene as a gene-based marker. Spraying bialaphos could eliminate the susceptible plants from the segregating populations such as ${F_2}^{\prime}s$ and thereafter. Tomato cv. Momotaro-yoke was transformed with patII gene 60 independent transformants were acquired. Total 42 transformants were analyzed in transgene copy numbers by Southern blotting and the segregation ratios for the bialaphos resistance. Statistical analysis revealed that the transgene copy numbers and the segregation ratios were not always coincided, especially having the tendency of underestimating the real numbers of the transgenes in the multicopy lines. A two-stepwise screening method was applied to select $T_1$ tomato plants which linked the transgenic patII to a disease resistance gene (I2 and Ve). Based on the resistant to susceptible ratios, T-20 plant was finally selected due to the estimated linkage 12-13 cM between the patII gene to the I2 gene on chromosome 11. This newly developed system could be applied to any economical crop in breeding programs.
The pBT-L transgenic mice carrying human TPO gene in conjunction with bovine $\beta$-casein promoter express human TPO in milk during lactation. In this study, stability of germ line transmission and expression of pBT-L transgene integrated into host chromosome were monitored up to generation F10 of transgenic pBT-L/15 line. When male mouse of generation F8 was crossbred with normal females, approximately half of offsprings (51.3$\pm$18.98%) were identified as transgenic mice. Generation F9 and F 10 mice also showed similar transmission rates (43.8$\pm$18.98% and 71.4$\pm$26.98%, respectively), implying that pBT-L transgene can be transmitted stably up to long term generation in the transgenic mice. Expression levels of human TPO from milk of generation F9 and F10 mice were 1.1$\pm$0.33 mg/ml and 1.1 $\pm$0.45 mg/ml, respectively, which are similar to expression level of generation F2 mice. In conclusion, our results suggest that transgenic animals once established will continuously pass their transgenes to the progeny through the breeding program with the same productivity of human protein in their milk.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.29
no.3
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pp.165-170
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2009
A system for the production of transgenic plants has been developed for perennial ryegrass (Lolium perenne L.) via Agrobacterium-mediated transformation. Included in this study were two factors which may affect the gene transfer efficiency: concentrations of acetosyringone (AS, 0 to 300 ${\mu}M$), and co-culture period (1 to 7 days). Both factors were very important to achieve high efficiency gene transformation in the perennial ryegrass. The highest transformation efficiency was obtained when embryogenic calli were inoculated with Agrobacterium in the presence of 100 ${\mu}M$ AS with the culture medium for 5 days. Phosphinothricin resistant calli were developed with into complete plants. GUS histochemical assay, polymerase chain reaction (PCR) and Northern blot analysis of transgenic plants demonstrated that transgenes were integrated into the genome of perennial ryegrass. Using this protocol, it was possible to obtain transformants efficiently for further study.
Oxycarotenoids are oxygenated carotenoids that perform critical roles in plants. $\beta$-Carotene hydroxylase adds hydroxyl groups to the $\beta$-rings of carotenes and has been cloned from several bacteria and plants including Arabidopsis. This study was carried out to investigate the effect of $\beta$-carotene hydroxylase gene (Chyb) on the oxycarotenoids biosynthesis in the transgenic Arabidopsis. Construct of pGCHYB containing Chyb was established onto Gateway vector system (pENTR3C gateway vector and pH2GW7 destination vector). Arabidopsis thaliana (cv. Columbia) was transformed with Agrobacterium tumerfacience GV3101 harboring pGCHYB construct driven by 35S promoter and hygromycin resistant gene. Seven hundred bases paired PCR products, indicating the presence of Chyb gene, were found in the transformants by PCR analysis using Chyb primers. Hygromycin resistance assay showed that transgenes were stably inherited to next generation. The overexpression of the Chyb gene resulted in the decrease carotenoid content. Especially, astaxanthin unusual oxycarotenoid in wild type Arabidopsis was detected in the transgenic plants. This means that decreased carotenoids might be converted into astaxanthin metabolism with the aid of silent gene in the host.
Kim, Hyo-Jin;Lee, Hye-Jin;Go, Young-Sam;Roh, Kyung-Hee;Lee, Young-Hwa;Jang, Young-Seok;Suh, Mi-Chung
Journal of Plant Biotechnology
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v.37
no.3
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pp.319-326
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2010
An interest in the production of seed-oil based fuel and raw materials, which comes from renewable plant sources, has been intrigued by the phenomenon of global warming and shortage of fossil fuels. Rapeseed (Brassica napus) is the most important oilseed crop, which produces seeds with 40% oil. It is desirable to develop genetically modified rapeseed producing oils, which can be easily converted to biodiesel. As an initial step for development of genetically modified rapeseed for the production of biofuels or bio-based materials, Korean rapeseed cultivars, Naehan, Youngsan, Tammi and Halla, were analyzed. Four Korean rapeseed cultivars produce 32 to 40% oil of seed dry weight, which is rich in oleic acid (more than 60 mole%). The cotyledonary petioles of rapeseed cultivar, Halla, were transformed using Agrobacterium tumefaciens strain GV3101, carrying the uidA gene encoding $\beta$-glucuronidase (GUS) as a reporter gene and the phosphinothricin acetyltransferase (PAT) gene as a selectable marker. The stable integration of PAT gene in the genome of transgenic rapeseeds was confirmed by PCR analysis. Expression of uidA gene in various rapeseed organs was determined by fluorometric assay and histochemical staining. Transformation efficiency of a Korean rapeseed Halla cultivar was 10.4%. Genetic inheritance of transgenes was confirmed in $T_2$ generation.
Lee Ki-Won;Lee Sang-Hoon;Kim Do-Hyun;Lee Dong-Gi;Won Sung-Hye;Lee Hyo-Shin;Lee Byung-Hyun
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.26
no.2
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pp.77-82
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2006
An efficient transformation system for the production of transgenic plants has been developed for tall fescue (Festuca arundinacea Schreb.) via Agrobacterium-mediated transformation of seed-derived callus. From the point of morphogenetic capacity, three types of callus were selected. High frequency of plant regeneration was obtained by selection of type II callus, and the plant regeneration frequency was 52.6% when embryogenic callus were cultured on the regeneration medium. Supplementation of the media with 10 mg/L $AgNO_3$ and 40 mg/L cysteine enhanced frequencies of plant regeneration up to 65.3%. The highest transformation efficiency was also obtained when type II callus were inoculated with Agrobacterium. Southern blot analysis of PCR products of transgenic plants demonstrated that transgenes were successfully integrated into the genome of tall fescue. Efficient regeneration system and transformation established in this study will be useful for molecular breeding of tall fescue through genetic transformation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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