Since the identification and characterization of toll-like receptors (TLR) in Drosophila, numerous scientific studies have examined the role of TLRs in host innate immunity. Recent studies have suggested a convergence of the nuclear factor kappa B (NF-${\kappa}B$) signaling and cytokine production regulated by the cytosolic elicitor known as NLRs (nucleotide-binding domain and leucine-rich repeat containing domain receptors) as a key modulator in inflammatory diseases. Among the NLRs, NOD1 and NOD2 have been intensively investigated for its role in inflammatory bowel disease (IBD). On the other hand, NLRs such as NLRP3, NLRP1, and NLRC4 (also known as IPAF) have been identified to form the inflammasome to activate downstream signaling molecules in response to pathogenic microbes. There is evidence to suggest that substantial crosstalk exists for the TLR and NLR signaling pathway in response to pathogen associated molecular pattern (PAMP). However, the substrate and the mechanistic role of NLRs are largely unknown in innate immune response. Understanding the signaling mechanisms by which NLRs recognize PAMP and other danger signals will shed light on elucidating the pathogenesis of various human inflammatory diseases such as IBD.
Collaboration of TLR and non-TLR pathways in innate immune cells, which acts in concert for the induction of inflammatory cytokines, can mount a specific adaptive immune response tailored to a pathogen. Here, we show that murine DC produced increased IL-23 and IL-6 when they were treated with LPS together with curdlan that activates TLR4 and dectin-1, respectively. We also found that the induction of the inflammatory cytokine production by LPS and curdlan requires activation of IKK. However, the same treatment did not induce DC to produce a sufficient amount of TGF-${\beta}$. As a result, the conditioned media from DC treated with LPS and curdlan was not able to direct $CD4^+$ T cells to Th17 cells. Addition of TGF-${\beta}$ but not IL-6 or IL-$1{\beta}$ was able to promote IL-17 production from $CD4^+$ T cells. Our results showed that although signaling mediated by LPS together with curdlan is a potent stimulator of DC to secrete many pro-inflammatory cytokines, TGF-${\beta}$ production is a limiting factor for promoting Th17 immunity.
Gu, Gyo-Jeong;Eom, Sang-Hoon;Min, In Soon;Youn, Hyung-Sun
Biomedical Science Letters
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v.19
no.2
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pp.112-117
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2013
Toll-like receptors (TLRs) recognize pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) and regulate the activation of innate immunity. All TLR signaling pathways culminate in the activation of NF-${\kappa}B$, leading to the induction of inflammatory gene products such as cyclooxygenase-2 (COX-2). Triptolide (TP), a natural component of Tripterygium wilfordii Hook. F, has been used as folk remedies to treat many chronic diseases for many years. In the present report, we present biochemical evidence that TP inhibits the NF-${\kappa}B$ activation induced by polyriboinosinic polyribocytidylic acid (Poly[I:C], TLR3 agonist) and lipopolysaccharide (LPS, TLR4 agonist). TP also inhibits COX-2 expression induced by Poly[I:C] and LPS. These results suggest that TP can modulate the immune responses regulated by TLR3 and TLR4 signaling pathways.
Toll-like receptors (TLRs) induce innate immune responses that are essential for host defenses against invading microbial pathogens, thus leading to the activation of adaptive immune responses. In general, TLRs have two major downstream signaling pathways: the MyD88- and TRIF-dependent pathways, which lead to the activation of $NF-{\kappa}B$ and IRF3. Numerous studies have demonstrated that certain phytochemicals possessing anti-inflammatory effects inhibit $NF-{\kappa}B$ activation induced by pro-inflammatory stimuli, including lipopolysaccharides and $TNF{\alpha}$. However, the direct molecular targets for such anti-inflammatory phytochemicals have not been fully identified. Identifying the direct targets of phytochemicals within the TLR pathways is important because the activation of TLRs by pro-inflammatory stimuli can induce inflammatory responses that are the key etiological conditions in the development of many chronic inflammatory diseases. In this paper we discuss the molecular targets of resveratrol, (-)-epigallocatechin-3-gallate (EGCG), and curcumin in the TLR signaling pathways. Resveratrol specifically inhibited the TRIF pathway in TLR3 and TLR4 signaling, by targetting TBK1 and RIP1 in the TRIF complex. Furthermore, EGCG suppressed the activation of IRF3 by targetting TBK1 in the TRIF-dependent signaling pathways. In contrast, the molecular target of curcumin within the TLR signaling pathways is the receptor itself, in addition to $IKK{\beta}$. Together, certain dietary phytochemicals can modulate TLR-derived signaling and inflammatory target gene expression, and in turn, alter susceptibility to microbial infection and chronic inflammatory diseases.
Kim, Su-Yeon;Heo, Sung-Hye;Park, Sin-Aye;Youn, Hyung-Sun
Biomedical Science Letters
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v.25
no.1
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pp.60-65
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2019
Toll-like receptors (TLRs) are one of the families of pattern recognition receptors (PRR) operating in the innate immunity. TLRs have the ability to recognize relatively conserved microbial components, which are generally referred to as pathogen-associated molecular patterns (PAMPs). The activation of TLRs signaling leads to the activation of $NF-{\kappa}B$ and the expression of pro-inflammatory gene products such as cytokines and inducible nitric oxide synthase (iNOS). To evaluate the therapeutic potential of pristimerin, which is a naturally occurring triterpenoid compound from Celastraceae plants, iNOS expression induced by MALP-2 (TLR2 and TLR6 agonist), Poly[I:C] (TLR3 agonist), or LPS (TLR4 agonist) were examined. Pristimerin suppressed the iNOS expression induced by MALP-2, Poly[I:C], or LPS. These results suggest that pristimerin can modulate TLRs signaling pathways leading to decreased inflammatory gene expression.
Toll-like receptor 7 (TLR7) is critical for the triggering of innate immune response by recognizing the conserved molecular patterns of single-stranded RNA (ssRNA) viruses and mediated antigenic adaptive immunity. To understand how TLR7 distinguish pathogen-derived molecular patterns from the host self, it is essential to be able to identify TLR7 receptor interaction interfaces, such as active sites or R848-agonist binding sites. The functional interfaces of TLR7 can serve as targets for structure-based drug design in studying the TLR7 receptor's structure-function relationship. In contrast to mammalian TLR7, chicken TLR7 (chTLR7) is unknown for its important biological function. Therefore, it has been targeted to mediate contrasting evolutionary patterns of positive selection into non-synonymous SNPs across eleven species using TLR7 conservation patterns (evolutionary conserved and class-specific trace residues), where protein sequence differences to the TLR7 receptors of interest record mutation that have passed positive section across the species. In this study, we characterized the Lys609 residue on chTLR7-ECD homodimer interfaces to reflect the current tendency of evolving positive selection to be transfer into a stabilization direction of the R848-agonist/chTLR7-ECDs complex under the phylogenetically variable position across species and we suggest a potential indicator for contrasting evolutionary patterns of both the species TLR-ECDs.
Piras, Vincent;Selvarajoo, Kumar;Fujikawa, Naoki;Choi, Sang-Dun;Tomita, Masaru;Giuliani, Alessandro;Tsuchiya, Masa
Genomics & Informatics
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v.5
no.3
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pp.107-112
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2007
MicroRNAs (miRNAs) are known to negatively control protein-coding genes by binding to messenger RNA (mRNA) in the cytoplasm. In innate immunity, the role of miRNA gene silencing is largely unknown. In this study, we performed microarray-based experiments using lipopolysaccharide (LPS)-stimulated macrophages derived from wild-type, MyD88 knockout (KO), TRIF KO, and MyD88/TRIF double KO mice. We employed a statistical approach to determine the importance of the commonality and specificity of miRNA binding sites among groups of temporally co-regulated genes. We demonstrate that both commonality and specificity are irrelevant to define a priori groups of co-down regulated genes. In addition, analyzing the various experimental conditions, we suggest that miRNA regulation may not only be a late-phase process (after transcription) but can also occur even early (1h) after stimulation in knockout conditions. This further indicates the existence of dynamic interactions between miRNA and signaling molecules/transcription factor regulation; this is another proof for the need of shifting from a 'hard-wired' paradigm of gene regulation to a dynamical one in which the gene co-regulation is established on a case-by-case basis.
Background: Toll-like receptors (TLRs) play a fundamental role in innate immunity through their capacity to recognize pathogen-associated molecular patterns. Also, TLRs that are expressed in T cells are reported to function as co-stimulatory receptors. However, the functional capacity of TLRs on CD4 T and CD8 T cells has not been directly compared. Here we compared CD4 and CD8 T cell responses to TLR2 ligand plus TCR-mediated stimulation. Methods: TLR2 expression was analyzed on T cell subsets under naive and alloantigen-primed conditions. We analyzed the effects of TLR2 co-stimulation on proliferation and survival of T cell subsets in vitro when stimulated with soluble anti-CD3 in the presence or absence of synthetic ligand $Pam_3CSK_4$. Results: TLR2 expression on CD8 T cells was induced following activation; this expression was much higher than on CD4 T cells. Thus, the molecule was constitutively expressed on Listeriaspecific memory CD8 T cells. Based on these expression levels, proliferation and survival were markedly elevated in CD8 T cells in response to the TLR2 co-stimulation by $Pam_3CSK_4$ compared with those in CD4 T cells. Conclusion: Our data show that TLR2 co-stimulation is more responsible for proliferation and survival of CD8 T cells than for that of CD4 T cells.
Toll-like receptors (TLRs), which are pattern recognition receptors (PRRs), recognize pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) and regulate the activation of innate immunity. All TLR signaling pathways culminate in the activation of NF-${\kappa}B$, leading to the induction of inflammatory gene products such as cyclooxygenase-2 (COX-2) and inducible nitric oxide synthase (iNOS). Parthenolide, a sesquiterpene lactone isolated from the herb feverfew (Tanacetum parthenium), has been used as folk remedies to treat many chronic diseases for many years. In the present report, we present biochemical evidence that parthenolide inhibits the NF-${\kappa}B$ activation induced by TLR agonists and the overexpression of downstream signaling components of TLRs, MyD88, $IKK{\beta}$, and p65. Parthenolide also inhibits TLR agonists-induced COX-2 and iNOS expression. These results suggest that parthenolide can modulate the immune responses regulated by TLR signaling pathways.
Toll-like receptors (TLR) are important components of innate immunity in the defense against pathogens. TLRs recognize pathogen-associated common molecular patterns. TLRs are similar to the receptors involved in defense responses in plants. TLR protein is a type 1 membrane protein, consisting of an extracellular domain containing leucine-rich repeats and a cytoplasmic domain. The cytoplasmic domain delivers ligand recognition signals that result in production of anti-microbial agents. The cytoplasmic domain (amino acid 858-1032) of toll-like receptor 9 has been expressed using methylotrophic yeast Pichia pastoris. The protein expression was confirmed by Western-blot, N-terminal sequencing and MALDl-TOF mass spectrometry. The proteins have been purified by nickel affinity, cation exchange and gel-filtration chromatography.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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