An efficient, rapid and large-scale in vitro clonal propagation of agronomically important Indian cereal crop genotypes (NSH27 & K5) of Sorghum bicolor (L.) Moench. by enhanced shoot proliferation in shoot tip segments was designed. MS medium fortified with plant growth regulators and coconut water markedly influenced in vitro propagation of Sorghum bicolor. In vitro plantlet production system has been investigated on Murashige and Skoog (MS) medium with the synergistic combination of 6-benzyladenine ($22.2\;{\mu}M$), kinetin ($4.6\;{\mu}M$), adenine sulphate ($2.8\;{\mu}M$), 5% coconut water and 3% sucrose which promoted the maximum number of shoots as well as beneficial shoot length. Subculturing of shoot tip segments on a similar medium enabled continuous production of more than 100 healthy shoots with similar frequency. When the healthy shoot clumps were cultured on MS medium fortified with 6-benzyladenine ($22.2\;{\mu}M$), kinetin ($4.6\;{\mu}M$), adenine sulphate ($2.8\;{\mu}M$), ${\alpha}$-naphthaleneacetic acid ($2.7\;{\mu}M$), ascorbic acid ($30.0\;{\mu}M$) and 5% coconut water, a rapid production of axillary and adventitious buds was developed after 8 wk culture. More than 300 shoots were produced 10 wk after culture. Rooting was highest (100%) on half strength MS medium containing 22.8 mM IAA. Micropropagated plants established in garden soil, farmyard soil and sand (2:1:1) were uniform and identical to the donor plant with respect to growth characteristics. These plants grew normally without showing any traits.
Corm apical meristem cultures of thirteen glasshouse freesia cultivars were tested to investigate the possibility of micropropagation using MS basal medium supplemented with 2,4-D, NAA(0.1, 0.5, 1.0mg/L, respectively) and BA (0.5∼2.0mg/L). The majority of the tested cultivars could be induced callus and shoot buds in all culture condition. The combinations of NAA and BA appeared superior to that of 2,4-D and BA depending on cultivars for callus induction and shoot formation. Among the cultivars, 'Golden Yellow' showed the highest regeneration capacity on MS media with 0.5mg/L NAA and 1.0 mg/L BA. The highest percentage of regeneration and the greatest number of shoot from calli were obtained through successive subculture on MS medium supplimented with 0.5mg/L BA. In that condition, more than 60 % shoot regeneration and average of 25.1 shoots per explant was achieved. Transformed shoots on half-strength MS medium without plant growth regulators rooted easily.
Kang Gwan-Ho;Oh Owel-Sun;Goo Dae-Hoe;Eun Jong-Seon;Kim Hyung-Moo
Journal of Plant Biotechnology
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v.32
no.4
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pp.281-285
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2005
To establish the mass proliferation system of Ardisia pusilla DC, the shoot tips of Ardisia pusilla DC were cultured on the MS and half-strength MS medium supplemented with $0{\sim}5.0$ mg/L BA or $0{\sim}0.5$ mg/L thidiazuron(TDZ), respectively. A few multiple shoot formation observed when the shoots were cultured on MS medium containing TDZ. However, the frequency of multiple shoot formation was reached up to 82.4%, when the shoots were cultured on half-strength MS medium supplemented with 0.5 mg/L BA. Also the number of shoot per explant was 7.1. To promote rooting from multiple shoot, newly formed shoots were transferred to half-strength MS medium containing 0.5 mg/L IBA or 0.5 mg/L NAA, respectively. Regenerated plantlets were grown to normal mature plants in soil.
Volatile flavor compounds from the shoot and root of Angelica gigas Nakai were extracted by HE (Hydrodistillation extraction), SDE (Simultaneous steam distillation & extraction), and SFE (Supercritical fluid extraction system), and analyzed by GC-MS. The amount and the number of chemical components in essential oils from shoot and root by SFE was the higher than those by other extraction methods. Respectively, thirty one constituents were identified from the essential oil of the shoot and root by HE, twenty seven and twenty three constituents were identified from the essential oil of shoot and root by SDE, thirty one and forty five constituents were identified from the essential oil of shoot and root by SFE. The result showed large differences in extraction methods and in plant parts of Angelica gigas Nakai. Also, the bioactive compounds in root part was identified as nodakenin and decursinol (11.95% and 8.42%, respectively) by SFE. These results suggested that SFE was the best extraction method for the increasing of extraction yield, the determination of volatile components and the increasing of bioactive compounds in the shoot and root of Angelica gigas Nakai.
This study was conducted to refine a micropropagation method of water hyacinth (Eichhornia crassipes) in vitro. When young shoots were cultured on media with various concentrations of BA or TDZ alone, LS medium containing $5.0\;mgl^{-1}$ BA was found favorable for shoot proliferation from young shoots with a mean of 4.2 shoots. Using BA together with IAA, more shoots were obtained on LS medium containing $5.0\;mgl^{-1}$ BA and $1.0\;mgl^{-1}$ IAA with a mean of 5.7 shoots. In liquid medium, number of shoots and fresh weight per explant increased significantly. The best shoot proliferation and increasing of fresh weight were achieved on LS liquid medium containing $5.0\;mgl^{-1}$ BA and $1.0\;mgl^{-1}$ IAA with 6.9 shoots and more than 4,000 mg fresh weight. Of the different concentrations of LS salt, double strength of LS medium provided the highest shoot proliferation with 7.3 shoots, and fresh weight with 5,539 mg per explant. Shoot proliferation on LS medium containing $50\;gl^{-1}$ sucrose had better results with 8.7 shoots and 5,979 mg per explant in fresh weight than other conditions. In conclusion, the optimal level for shoot proliferation and biomass increase of water hyacinth was attained with the application of the double strength of LS medium containing $5.0\;mgl^{-1}$ BA, $1.0\;mgl^{-1}$ IAA and $50\;gl^{-1}$ sucrose.
Chung, Mi Young;Naing, Aung Htay;Khatun, Khadiza;Ahn, Hyung Geun;Lim, Ki Byung;Kim, Chang Kil
Journal of Plant Biotechnology
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v.43
no.4
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pp.438-443
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2016
The in vitro propagation of the commercially important Phalaeonopsis hybrid 'Little gem' was achieved by culturing the apical part and axillary buds excised from flower stalks. The explants were cultured on 5 different basal media: $3.0{\cdot}L^{-1}$ Hyponex and $4.0{\cdot}L^{-1}$ peptone ($H_3P_4$) and Murashige & Skoog (MS) media were shown to be suitable for shoot regeneration. The MS medium supplemented with $5.0mg{\cdot}L^{-1}$ 6-benzylaminopurine (BA) was found to be more efficient for shoot regeneration. However, the number of shoots induced by axillary buds was higher than that induced by the apical part. Incubation of the apical part under darkness for one week, as well as of the explants in the same medium with activated charcoal (AC) $0.5g{\cdot}L^{-1}$ promoted shoot regeneration and shoot growth; similar growth was not observed with axillary buds.
Optimum culture conditions for high frequency plant regeneration from leaf explants of Kalanchoe daigremontiana Hamet &Perrier were established. Shoot regeneration was achieved from leaf explant cultures using MS medium supplemented with indole-3-acetic acid (IAA) and thidiazuron (TDZ) or benzyladenine (BA). Percent regeneration was influenced by plant growth regulators and source of explants. MS medium supplemented with TDZ (1.0 mg/l) and IAA (0.4 mg/l) was the most effective, providing shoot regeneration for 76.7 % of ex vitro leaf explants associated with a high number of shoots per explant (9.5 mean shoots per explant), whereas 100% shoot regeneration associated with 12.4 shoots per explant occurred from in vitro leaf explants on the same medium. Clusters of shoots were multiplied and elongated on MS medium containing several concentrations of BA. MS medium supplemented with 0.25 mg/l BA was proved as the most effective shoot elongation medium. Elongated shoots (2-3 cm) were rooted at 100% on half-strength MS medium. Rooted plantlets were then transferred to potting soil. Regenerated plants were established in the soil with 90% success.
Callus and shoot formation from medicinal crop, Lycium chinense Mill. cv. 'Cheongyang', as influenced by various media, explant sources and plant growth regulators were investigated. The rate of shoots formation, number of shoots, and fresh weight of shoots were the best on MS medium followed by B$_{5}$, WPH, and SH. Callus induction was more effective in leaf than internode segments, and was the best on MS medium containing 0.5 mg/L NAA with 0.2 mg/L BA. Effects of plant growth regulators in shoot formation were more effective in BA than TDA combined with NAA. Shoot formation from callus induced in leaf and internode segments was the best on MS medium containing 0.01 mg/L NAA with 0.2 mg/L BA.
Cotyledon and epicotyl explants of P. aridum and P. zonale formed calli when cultured on MS medium supplemented with 2 mg/L NAA and 0.2 mg/L BA. Calli were subcultured on the same medium Upon transfer to MS medium with 0.1 to 0.5mg/L NAA and 0.25 to 2mg/L BA for P. aridum 0.1 to 0.5mg/L NAA and 1 to 2mg/L BA for P. zonale subcultured calli gave rise to the greatest number of shoots (0.78 shoot for P. aridum and 0.65 shoot per explant for P. zonale, respectively).Most shoots produced roots when cultured on 1/2MS basal medium. The regenerates were transferred to potting soil and grown to materity in a greenhouse.
Adventitious shoot buds, without an intervening callus phase, were induced from stem explants of Trichosanthes kirilowii on MS medium supplemented with 2 mg/L BA. The culture medium, carbon source as well as plant growth regulators were found to influence further shoot multiplication and eventual shoot growth. A maximum number of shoots was obtained on a MS medium containing 0.5 mg/L BA and 3% sucrose. Shoot produced in vitro were rooted on half-strength phytagelled 1/2MS medium prior to transfer to green house condition.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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