Jun Bong Lee;Yewon Cheong;Se Kye Kim;Jang Won Yoon
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.51
no.3
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pp.314-316
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2023
Colistin is one of the last-resort antibiotics used to treat multidrug-resistant Gram-negative bacterial infection in both human and animals. Here, we report the complete genome sequence of colistin-resistant Salmonella enterica serotype Enteritidis strain CRSE-01 isolated from poultry carcass in South Korea. The assembled genome consists of a 4,783,907-bp circular chromosome containing numerous antimicrobial resistance genes and a 59,372-bp plasmid.
A total of 22 Salmonella enterica serotype Enteritidis (S. Enteritidis) isolates from human and chicken sources were analyzed by pulsed field gel electrophoresis (PFGE) using XbaI restriction enzyme to assess the genetic relationships between strains from different sources. PFGE permitted the resolution of XbaI restriction fragments of the 22 S. Enteritidis into 6 distinct PFGE types (PFT), designated PFT1 to PFT6, and 2 subtypes within PFT2, and allowed to detect between 9 and 10 bands with fragments sizes in the range of $25\~635\;kb$. Four of twelve isolates from human showed an identical PFGE patterns with 2 isolates from chickens. Also, another one isolate from human showed an identical PFGE patterns with other 5 isolates from chickens. Only one isolate from chicken, however, showed a different pattern compared to other PFTs. These results suggested that sporadic human food-poisoning cases infections caused by S. Enteritidis in this study were due to the consumption of contaminated chicken meats and that a clonally highly similar strains exist and spread between human and chicken sources.
In this study, two cases of food poisoning caused by Salmonella that occurred in Gyeongsangnam-do in September 2021 are reported. One of the outbreaks occurred in a school and the other in a company. The molecular epidemiological characteristics of the isolated strains in the two outbreaks were analyzed. In the case of the school outbreak, 29 (4.9%) of 588 individuals experienced diarrhea and abdominal pain. As a result of a test of 36 individuals (patients, n=29; cook workers, n=7), Salmonella enterica serotype Enteritidis was detected in 17 (47.2%) patients, suggesting this serotype was the principal cause. Meanwhile, Salmonella spp. were not detected in 35 food and environmental samples. In the company outbreak, 87 (3.0%) of 2,900 individuals who had intaked from the same source experienced diarrhea, abdominal pain, and fever. In a test of 50 individuals (patients, n=40; cook workers, n=10), S. Enteritidis was detected in 28 patients (56.0%). Also, Vibrio cholerae (NAG) was detected in four patients with S. Enteritidis, and V. cholerae (NAG) only was detected in one patient. Salmonella spp. were not detected in 118 preserved foods, but S. Enteritidis was detected in one eaten food (toast) delivered in group by the company. Through PFGE genetic homology analysis of the isolated strains, all S. Enteritidis detected in patients and consumed foods were the same type. It seems that these S. Enteritidis isolates were the same type as detected in a previous school outbreak and in patients of group food poisoning in other regions, leading to an enhanced problem of food poisoning and epidemiology. Our analytic results can provide data for epidemiological management and food poisoning prevention based on molecular characteristics.
Salmonella species are the most important etiologic agents of food-borne acute gastroenteritis. The most common serotypes isolated from humans are Salmonella enterica serotype Typhimurium (S. Typhimurium) and S. Enteritidis. Traditional detection methods for Salmonella are based on cultures using selective media and characterization of suspicious colonies by biochemical and serological tests. These methods are generally time-consuming and not so highly sensitive. Recently, the polymerase chain reaction (PCR) has been used as a highly sensitive, specific, and rapid test for the presence of pathogenic bacteria. In this study, a multiplex PCR (m-PCR) was used to detect S. Typhimurium and S. Enteritidis. We selected m-PCR target genes, which were the spv (virulence plasmid specific for S. Enteritidis) and sefA (S. Enteritidis fimbrial antigen) genes, fliC (H1-i antigen specific for S. Typhimurium) and a randomly cloned sequence specific for the genus Salmonella. With m-PCR, random sequence was detected from all strains of Salmonella spp, spv and sefA were detected from all strains of S. Enteritidis (100%), and fliC was detected from all strains of S. Typhimurium (100%). This assay indicate that the specificity of the m-PCR make them potentially valuable tools for detection of S. Typhimurium and S. Enteritidis.
Salmonella, a major contributor to foodborne infections, typically causes self-limiting gastroenteritis. However, it is frequently invasive and disseminates across the intestinal epithelium, leading to deadly bacteremia. Although the genus is subdivided into >2,600 serotypes based on their antigenic determinants, only few serotypes are responsible for most human infections. In this study, a rapid dot-blot immunoassay was developed to diagnose multiple Salmonella enterica serotypes with high incidence rates in humans. The feasibility of 10 commercial antibodies (four polyclonal and six monoclonal antibodies) was tested using the 18 serotypes associated with 67.5% Salmonella infection cases in the United States of America (U.S.A) in 2016. Ab 3 (polyclonal; eight of 18 serotypes), Ab 8 (monoclonal; 13 of 18 serotypes), and Ab 9 (monoclonal; 10 of 18 serotypes) antibodies exhibited high detection rates in western blotting and combinations of two antibodies (Ab 3+8, Ab 3+9, and Ab 8+9) were applied to dot-blot assays. The combination of Ab 3+8 identified 15 of the tested 18 serotypes in 3 h, i.e., S. Enteritidis, S. Typhimurium, S. Javiana, S. I 4,[5],12:i:-, S. Infantis, S. Montevideo, S. Braenderup, S. Thompson, S. Saintpaul, S. Heidelberg, S. Oranienburg, S. Bareilly, S. Berta, S. Agona, and S. Anatum, which were responsible for 53.7% Salmonella infections in the U.S. in 2016. This cost-effective and rapid method can be utilized as an on-site colorimetric method for Salmonella detection.
Salmonella is an important food-and water-borne pathogen associated with acute gastrointestinal illnesses around the world. The most common serotypes isolated from humans are Salmonella enterica serotype Typhimurium (S. Typhimurium) and S. Enteritidis. Traditional detection methods for Salmonella are based on cultures using selective media and characterization of suspicious colonies by biochemical and serological tests. These methods are generally time-consuming and not so highly sensitive. Recently, the Loop Mediated Isothermal Amplification and real-time PCR has been used as a highly sensitive, specific, and rapid test for the presence of pathogenic bacteria. In this study, a LAMP and real-time PCR was used to detect S. Typhimurium and S. Enteritidis. We selected target genes, which were the in invA and a randomly cloned sequence specific for the genus Salmonella. With LAMP and real-time PCR, random sequence was detected from Salmonella spp, invA were detected from all strain of S. Typhimurium and S. Enteritidis. This assay indicate that the specificity, sensitivity and rapid of the LAMP and real-time PCR make them potentially valuable tools for detection of S. Typhimurium and S. Enteritidis.
Salmonella enterica serotype gallinarum biovar Gallinarum or Pullorum and Salmonella enterica serotype Enteritidis are the most important diseases in poultry industry. Transitional diagnosis methods of these diseases such as direct isolation and identification by a biochemical test are time consuming with low specificity. In this study, we have focused on the suitable procedure for the rapid and accurate diagnosis of diseases derived from the three Salmonella strains. We initially confirmed Salmonella species by PCR using a specific ITSF/ITSR primer pair instead of biochemical test, and then the PCR-amplified phase 1 flagellin (fliC) using a specific fliCF/fliCR primer pair was digested with a restriction endonuclease, Bpm I and/or Bfa I, to discriminate among S. Pullorum, S. Gallinarum, and S. Enteritidis. We found that these methods could be applied to field isolates of the three Salmonella strains to detect and to discriminate rapidly for convenient diagnosis.
In previous studies, it has been reported that both S. enteritidis, the most common serotype, and S. enteritidis Phage Type 4 (SEPT 4) isolates were identified as the most prevalent PT in domestic poultry and also in humans in Korea until 2002. The aim of this study was to analyze the genetic diversity and epidemiological properties of both PT isolates, and also to trace the source of SEPT 4 isolates from domestic poultry and humans by Pulsed-field gel electrophoresis (PFGE). In order to understand the molecular epidemiologic properties of SEPT 4 isolates, which have very similar phenotypic properties to our preliminary investigations (serotyping, phage typing, large plasmids and antibiograms), PFGE analysis with XbaI enzyme was performed on the representative SEPT 4 isolates. Thirty-six SEPT 4 isolates were analyzed and differentiated with 10 pulsed-field profiles (PFP) expressing very high discriminative ability (SID: 0.921). In PFP, SEPT 4 isolates from human patients showed a perfect genetic match with those from broiler chickens and meats. Therefore, this study was able to successfully trace the major source of SEPT 4 isolates and also to determine the usefulness of the PFGE method for genetic analysis of epidemic strains.
At the present study, it was aimed to detect virulence genes and antimicrobial resistance genes among 102 strains of 12 Salmonella serotypes isolated from pigs and cattle. In polymerase chain reaction (PCR), invA was detected from all strains of Salmonella spp., spvC was detected from Salmonella enterica serotype Enteritidis (S. Enteritidis) (100%), S. Bradenburg (75%), and S. Typhimurium (20.4%). Drug resistance related genes of 12 types were detected from all strains. TEM ($bla_{TEM}$) gene was detected from 51 (92.7%) of 55 $\beta$-lactams (54 ampicillin or 1 amoxicillin) resistance strains. 55 (100%) of 55 chloramphenicol resistance strains, 3 (100%) of 3 gentamicin resistance strains and 5 (100%) of 5 kanamycin resistance strains did contain cml, aadB, and aphA1-Iab, respectively. strB (89.9%), strA (88.4%), aadA2 (84.1%) and aadA1 (72.5%) were detected from 69 streptomycin resistance strains. sulII and dhfrXII were detected from 49 (100%) of 49 sulfamethoxazole/trimethoprim resistance strains, but sulI was not detected. tetA (97.9%) and tetB (21.6%) were detected from 97 tetracycline resistance strains. int gene was detected from 58 (56.9%) of 102 strains. 54 S. Typhimurium of 102 Salmonella spp. were attempted to detect drug resistance genes. TEM was detected from 44 (95.7%) of 46 $\beta$-lactams (45 ampicillin or 1 amoxicillin) resistance strains. cmlA was detected from 51 (100%) of 51 chloramphenicol resistance strains. aadA2 (100%), strA (100%), strB (100%), and aadA1 (79.6%) were detected from 54 streptomycin resistance strains. sulII (100%) and dhfrXII (100%) were detected from 49 sulfamethoxazole/trimethoprim resistance strains. tetA was detected from 54 (100%) of 54 tetracycline resistance strains. int gene was detected from 54 (100%) of 54 strains. The major drug resistance pattern and resistance gene profile were ampicillin, chloramphenicol, streptomycin, sulfamethoxazole/trimethoprim and tetracycline (ACSSuT) and TEM, cmlA, aadA1, aadA2, strA, strB, sulII, dhfrXII, tetA and int, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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