Kim Jin Kwon;Choi Hack Sun;Kim Seong-Jun;Kim Si Wouk
KSBB Journal
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v.19
no.6
s.89
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pp.462-466
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2004
Mycothiol (MSH), a low molecular antioxidant thiol compound, was purified and analyzed from Streptomyns coelicolor A[3]2 by the monobromobimane fluorescence detection method modified by this lab. Through HPLC chromatpgram, MSH fraction was obtained following the elution time of standard MSH (donated by Dr. Robert C. Fahey). That MSH showed the highest concentration among the thiol compounds contained in the cell indicated that MSH was the key thiol compound having antioxidant activity. To understand the role of gene of inositol monophosphatase (I-1-Pase) involved in the MSH biosynthesis, it was isolated from S. coelicolor A(3)2 and cloned and overexpressed in the Escherichia coli. The expressed I-1-Pase was purified through Ni-NTA column. The soluble protein consisted of 281 amino acids, and the molecular weight was 32 kDa. I-1-Pase of S. coelicolor A(3)2 had the sequence homology with those of human and E. coli by 24 and $25\%$, respectively, and had two conserved domains (mofif A and motif B) which were typical of I-1-Pase.
A gene coding for a novel putative $\sigma$ factor of RNA polymerase has been identified from Streptomyces coelicolor A3(2) using Escherichia coli rpoS gene fragment as a probe. The 486 bp rpoS gene fragment was amplified from E. coli genomic DNA by PCR with two synthetic oligonucleotides, the sequences of which were deduced from the amino acid sequences in the regions 2.3 and 4.2 conserved among various bacterial factors. When E. coli genomic DNA fragments were hybridized with cloned rpoS probe, only one band corresponding to rpoS gene (3.2 kb PvuII fragment or 2.3 kb KpnI fragment) was detected. In S. coelicolor, however, two bands were detected both in PvuII digested DNA and SalI digested DNA. 3.5 kb PvuII fragment which binds the rpoS gene probe was cloned (pMS1) from the sublibrary, and the nucleotide sequences of 1.0 kb BamH'/HincII subclone (pBH2) was partially determined. The nucleotide sequences revealed extensive similarity to other $\sigma$ factor genes of S. coelicolor (hrdA, hrdB, hrdC, hrdD), S. aureofaciens (hrdA, hrdB, hrdC, hrdD), Synechococcus species, Pseudomonas aeruginosa, Stigmatella aurantiaca, and Anabaena species. The nucleotide sequences in regions 1.2 and 4 were compared with the corresponding regions of 5 known ${\sigma}$ factor genes of S. coelicolor by multiple alignment. It turned out that the cloned gene is most closely related to hrdA showing 88% amino acid similarity in region 1.2 and 75% in region 4.
The pellets from a culture of Streptomyces coelicolor A3(2) that were submerged shaken were disintegrated into numerous hyphal fragments by DNase treatment. The pellets were increasingly dispersed by hyaluronidase treatment, and mycelial fragments were easily detached from the pellets. The submerged mycelium grew by forming complexes with calcium phosphate precipitates or kaolin, a soil particle. Therefore, the pellet formation of Streptomyces coelicolor A3(2) can be considered a biofilm formation, including the participation of adhesive extracellular polymers and the insoluble substrates.
AfsR2 is a global regulatory protein that stimulates antibiotic biosynthesis in both Streptomyces lividans and S. coelicolor. Previously, various afsR2-dependent genes including a putative abaA-like regulatory gene, SCO4677, were identified through comparative DNA microarray analysis. To further identify the putative SCO4677-dependent proteins, the comparative proteomics-driven approach was applied to the SCO4677-overexpressing strains of S. lividans and S. coelicolor along with the wild-type strains. The 2D gel electrophoresis gave approximately 277 protein spots for S. lividans and 207 protein spots for S. coelicolor, showing different protein expression patterns between the SCO4677-overexpressing strains and the wild-type strains. Further MALDI-TOF analysis revealed that only 18 proteins exhibited similar expression patterns in both S. lividans and S. coelicolor, suggesting that the SCO4677 could encode an abaA-like regulator that controls a few cross-species common proteins as well as many species-specific proteins in Streptomyces species.
Kim Kwang-Pyo;Shin Choon-Shik;Lee Soo-Jae;Kim Ji-Hye;Young Jung-Mo;Lee Yu-Kyung;Ahn Joong-Hoon;Suh Joo-Won;Lim Yoong-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.5
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pp.799-803
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2006
It was reported that an accumulation of Sadenosyl-L-methionine increases production of actinorhodin in Streptomyces lividans and induces antibiotic biosynthetic genes. We also obtained the same result in Streptomyces coelicolor A3(2). Therefore, in order to identify proteins changed by the addition of S-adenosyl-L-methionine in S. coelicolor A3(2), LC/MS/MS analyses were carried out. Thirteen proteins that were not observed in the control were found.
Protein kinase C (PKC) is a family of kinases involved in the transduction of cellular signals that promote lipid hydrolysis. PKC plays a pivotal role in mediating cellular responses to extracellular stimuli involved in proliferation, differentiation and apoptosis. Comparative analysis of the PKC-${\alpha},{\beta},{\varepsilon}$ isozymes of 200 recently sequenced microbial genomes was carried out using variety of bioinformatics tools. Diversity and evolution of PKC was determined by sequence alignment. The ser/thr protein kinases of Streptomyces coelicolor A3 (2), is the only bacteria to show sequence alignment score greater than 30% with all the three PKC isotypes in the sequence alignment. S.coelicolor is the subject of our interest because it is notable for the production of pharmaceutically useful compounds including anti-tumor agents, immunosupressants and over two-thirds of all natural antibiotics currently available. The comparative analysis of three human isotypes of PKC and Serine/threonine protein kinase of S.coelicolor was carried out and possible mechanism of action of PKC was derived. Our analysis indicates that Serine/ threonine protein kinase from S. coelicolor can be a good candidate for potent anti-tumor agent. The presence of three representative isotypes of the PKC super family in this organism helps us to understand the mechanism of PKC from evolutionary perspective.
We isolated a 10 kb Bam HI fragment originated from the chromosome of a $H_2O$$^2$-resistant mutant strain of Streptomyces coelicolor, which confer $H_2O$$^2$-resistance to S. lividance upon transformation. Among various subclones ot 10kb Bam HI fragment tested for their $H_2O$$^2$-resistant phenotype in S. lividans, a subclone containing 5.2 kb Bam HI-BglII fragment was found to be responsible for $H_2O$$^2$-resistance. The plasmid containing this 5.2 kb fragment was then transformed into S. coellicolor A3(2) at early and tested for their phenotype of $H_2O$$^2$-resistance and the change in various enzymes whose activity can be stained in the gel. We found out that the 5.2 kb insert DNA conferred $H_2O$$^2$-resisstance in S. coelicolor A3(2) at early phase of cell growth. The presence of this DNA also resulted in higher level of peroxidase compared with the wild type cell containing parental vector (pIJ702) only. Esterase activity was also higher in this clone. However, alcohol dehydrogenase activity decreased compared with the wild type. These results suggest that the presence of a gene in 5.2 kb BamHI-BglII DNA fragment causes multiple changes in S. coelicolor related to its response against hydrogen peroxide. The result also implies that not only peroxidase but also esterase may function in the defencse meahsnism agianst $H_2O$$^2$-.
Among the annotated ORFs of Streptomyces coelicolor, SCO7697 was supposed to encode for phytase (myo-inositol hexakisphosphate phosphohydrolase). The DNA fragment containing SCO7697 was cloned by the PCR from the chromosomal DNA of S.coelicolor A3(2)M. The cloned fragment was introduced into E. coli expres-sion vector, pET28a(+), to yield two recombinant plasmids, pET28-SP and pET28-LP, which were designed to encode different length of proteins. When the pET28-SP and pET28-LP were introduced into E. coli BL21, the transformants successfully overexpressed recombinant proteins, but the molecular weights of the expressed pro-teins were appeared bigger than those of expected in SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The shift of cul-tural temperature from 37 to $30^{\circ}C$ made most of expressed protein be solubilized. The expressed protein, however, did not show any phytase activity. When the DNA fragment with its own promoter placed on the E. coli-Streptomyces vector, pWHM3, and introduced into S. lividans, the phytase activity was not detected either. These results suggest that even though the SCO7697 was annotated as a probable phytase with high probability (E value is $6e^{-89}$), the real product doest not have phytase activity.
Kim, Yoon-Jung;Song, Jae-Yang;Hong, Soon-Kwang;Smith, Colin P.;Chang, Yong-Keun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.4
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pp.658-662
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2008
Effects of pH shock on the secretion system of S. coelicolor A3(2) have been investigated at a transcriptional level by using DNA microarrays. Actinorhodin secretion was observed to be highly enhanced when an acidic-pH shock was applied to surface grown cultures of S. coelicolor A3(2). In this culture, a gene of actVA-orf1 encoding a putative efflux pump or transporter protein for actinorhodin was strongly upregulated. A major number of efflux pumps for other metabolites and a major number of secretion proteins for protein secretion were also observed to be upregulated with pH shock. The secretion of actinorhodin was observed to be remarkably enhanced in liquid culture as well.
Secondary metabolism in actinomycetes has been known to be controlled by a small molecule, ${\gamma}$-butyrolactone autoregulator, the binding of which to each corresponding receptor leads to the regulation of the transcriptional expression of the secondary metabolites. We expected that expression of an autoregulator receptor or a pleiotropic regulator in a non-host was to be gained insight of effective production of new metabolic materials. In order to study the function of the receptor protein (seaR), which is isolated from Saccharopolyspora erythraea, we introduced the seaR gene to Streptomyces coelicolor A3(2) as host strains. An effective transformation procedure for S. coelicolor A3(2) was established based on transconjugation by Escherichia coli ET12567/pUZ8002 with a ${\varphi}C31$-derived integration vector, pSET152, which contained int, oriT, attP and $ermEp^*$ (erythromycin promotor). Therefore, the pEV615 was introduced into S. coelicolor A3(2) by conjugation and integrated at the attB locus in the chromosome of the recipients by the ${\varphi}C31$ integrase (int) function. Exconjugant of S. coelicolor A3(2) containing the seaR gene was confirmed by PCR and transcriptional expression of the seaR gene in the transformant was analyzed by RT-PCR. In case of S. coelicolor A3(2), a phenotype microarray was used to analyze the phenotype of transformant compared with wild type by seaR expression. After that, in order to confirm the accuracy of the results obtained from the phenotype microarray, an antimicrobial susceptibility test was carried out. This test indicated that sensitivity of the transformant was higher than wild type in tetracycline case. These results indicated that some biosynthesis genes or resistance genes for tetracycline biosynthesis in transformant might be repressed by seaR expression. Therefore, subsequent experiments, analysis of transcriptional pattern of genes for tetracycline production or resistance, are needed to confirm whether biosynthesis genes or resistance genes for tetracycline are repressed or not.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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