We tested for the presence of double-stranded RNA (dsRNA) mycovirus in 827 Fusarium graminearum isolated from diseased barley and maize. dsRNA mycoviruses with various sizes were isolated. Of them, it was previously reported that dsRNA from DK2l isolate had pronounced morphological changes, including reduction in mycelial growth, increased to red pigmentation, reduced virulence and sporulation. (Chu et al., Appl. Environ. Microbiol. 2002). For better understanding of this hypovirulence associated with DK2l dsRNA virus, we determined the complete nucleotide sequence of dsRNA genome and named Fusarium hypovirus DK2l strain (Fhv-DK2l ). Genomic RNA of Fhv-DK2l was determined to be 6625 nucleotides in length excluding the poly (A) tail and contained three putative open reading frame. RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) and helicase domain were expected in ORF A, 54 to 4709 nucleotide position. ORE B, 4752 to 5216 nucleotide position, and ORF C, 5475 to 6578 nucleotide position, were predicted to encode 16.7kDa and 41.3kDa protein respectively each. We could not detect any conserved domains from these two proteins. Phylogenetic analysis showed Fhv-DK2l was related to Cryphonectria hypovirus 3. Ten additional isolates were found that were infected with dsRNA mycoviruses. These mycoviruses contain 2 to 4 different segments of dsRNAs with the size range of approximately 1.7 to 10-kbp in length. The presence of dsRNAs isolates did not affect colony morphology and were transmissible through conidia and ascospore with incidence of 30-100%. These results indicate that there is genomic diversity of dsRNA mycoviruses that infect F. graminearum isolates and that impact of virus infection on host's morphology and virulence is determined by the interaction between dsRNAs and the fungal host, not by the mere presence of the dsRNAs
Although limited progress have been made about pathogen system of Hibiscus rosa-sinensis and Hibiscus latent Fort Pierce virus (HLFPV), interaction between plant host and pathogen remain largely unknown, which led to deficiency of effective measures to control disease of hibiscus plants caused by HLFPV. In this study, infection of HLFPV in Hibiscus rosa-sinensis was firstly confirmed for the first time by traditional electron microscopy, modern reverse transcription polymerase chain reaction and RNA-seq methods in China (HLFPV-Ch). Sequence properties analyzing suggested that the full-length sequences (6,465 nt) of HLFPV-Ch had a high sequence identity and a similar genomic structure with other tobamoviruses. It includes a 5'-terminal untranslated region (UTR), followed by four open reading frames encoding for a 128.5-kDa replicase, a 186.5-kDa polymerase, a 31-kDa movement protein, 17.6-kDa coat protein, and the last a 3'-terminal UTR. Furthermore, HLFPV-Ch-derived virus-derived siRNAs (vsiRNAs) ant its putative target genes, reported also for the first time, were identified and characterized from disease Hibiscus rosa-sinensis through sRNA-seq and Patmatch server to investigate the interaction in this pathogen systems. HLFPV-Ch-derived vsiRNAs demonstrated several general and specific characteristics. Gene Ontology classification revealed predicted target genes by vsiRNAs are involved in abroad range of cellular component, molecular function and biological processes. Taken together, for first time, our results certified the HLFPV infection in China and provide an insight into interaction between HLFPV and Hibiscus rosa-sinensis.
Soybean (Glycine max (L) Merr.) provides plant-derived proteins, soy vegetable oils, and various beneficial metabolites to humans and livestock. The importance of soybean is highly underlined, especially when carbon-negative sustainable agriculture is noticeable. However, many diseases by pests and pathogens threaten sustainable soybean production. Therefore, understanding molecular interaction between diverse cultivated varieties and pathogens is essential to developing disease-resistant soybean plants. Here, we established a pathosystem of the Korean domestic cultivar Kwangan against Pseudomonas syringae pv. syringae B728a. This bacterial strain caused apparent disease symptoms and grew well in trifoliate leaves of soybean plants. To examine the disease susceptibility of the cultivar, we analyzed transcriptional changes in soybean leaves on day 5 after P. syringae pv. syringae B728a infection. About 8,900 and 7,780 differentially expressed genes (DEGs) were identified in this study, and significant proportions of DEGs were engaged in various primary and secondary metabolisms. On the other hand, soybean orthologs to well-known plant immune-related genes, especially in plant hormone signal transduction, mitogen-activated protein kinase signaling, and plant-pathogen interaction, were mainly reduced in transcript levels at 5 days post inoculation. These findings present the feature of the compatible interaction between cultivar Kwangan and P. syringae pv. syringae B728a, as a hemibiotroph, at the late infection phase. Collectively, we propose that P. syringae pv. syringae B728a successfully inhibits plant immune response in susceptible plants and deregulates host metabolic processes for their colonization and proliferation, whereas host plants employ diverse metabolites to protect themselves against infection with the hemibiotrophic pathogen at the late infection phase.
Hepatitis C virus (HCV) is known as the causative agent of blood transmitted hepatitis. Two viral proteins, E2 and NS5A, are known to exert interferon resistance of HCV via PKR pathway. Here, we report a third protein, the RNA-dependent RNA polymerase (NS5B) of HCV, induced interferon resistance inhibiting p56 pathway. p56 was shown to interact with p48 subunit of eukaryotic initiation factor 3 (eIF3). This interaction inhibited formation of ternary complex in translation initiation. Using dual reporter assay system, we observed that the translation decreased when interferon alpha was added to the culture. But, in the presence of HCV NS5B, the translation partly recovered. NS5B and p48 subunit of eIF3 were shown to interact. This interaction seems to inhibit the interaction between p48 and p56. This is the first report that a virus exerts interferon resistance via p56 pathway.
Receptor-like proteins (RLPs) are involved in plant development and disease resistance. Only some of the RLPs in tomato (Solanum lycopersicum L.) have been functionally characterized though 176 genes encoding RLPs, which have been identified in the tomato genome. To further understand the role of RLPs in tomato, we performed genome-guided classification and transcriptome analysis of these genes. Phylogenic comparisons revealed that the tomato RLP members could be divided into eight subgroups and that the genes evolved independently compared to similar genes in Arabidopsis. Based on location and physical clustering analyses, we conclude that tomato RLPs likely expanded primarily through tandem duplication events. According to tissue specific RNA-seq data, 71 RLPs were expressed in at least one of the following tissues: root, leaf, bud, flower, or fruit. Several genes had expression patterns that were tissue specific. In addition, tomato RLP expression profiles after infection with different pathogens showed distinguish gene regulations according to disease induction and resistance response as well as infection by bacteria and virus. Notably, Some RLPs were highly and/or unique expressed in susceptible tomato to pathogen, suggesting that the RLP could be involved in disease response, possibly as a host-susceptibility factor. Our study could provide an important clues for further investigations into the function of tomato RLPs involved in developmental and response to pathogens.
Nontypeable H. influenzae (NTHi), a Gram-negative obligate human pathogen, causes pneumonia, chronic bronchitis, and otitis media, and the respiratory epithelium is the first line of defense that copes with the pathogen. In an effort to identify transcriptional responses of human respiratory epithelial cells to infection with NTHi, we examined its differential gene expression using high density cDNA microarrays. BEAS-2B human bronchial epithelial cells were exposed to NTHi for 3 hand 24 h, and the alteration of mRNA expression was analyzed using microarrays consisting of 8,170 human cDNA clones. The results indicated that approximately 2.6% of the genes present on the microarrays increased in expression over 2-fold and 3.8% of the genes decreased during the 24-h infection period. Upregulated genes included cytokines (granulocyte-macrophage colony stimulating factor 2, granulocyte chemotactic protein 2, IL-6, IL-10, IL-8), transcription factors (Kruppel-like factor 7, CCAAT/enhancer binding protein $\beta$, E2F-1, NF-$\kappa$B, cell surface molecules (CD74, ICAM-1, ICAM-2, HLA class I), as well as those involved in signal transduction and cellular transport. Selected genes were further confirmed by reverse-transcription-PCR. These data expand our knowledge of host cellular responses during NTHi infection and should provide a molecular basis for the study of host-NTHi interaction.
The CRISPR-Cas system provides adaptive immunity for bacteria and archaea against invading phages and foreign plasmids. In the Class 1 CRISPR-Cas system, multi-subunit Cas proteins assemble with crRNA to bind to DNA targets. To disarm the bacterial defense system, bacteriophages evolved anti-CRISPR (Acr) proteins that actively inhibit the host CRISPR-Cas function. Here we report the backbone resonance assignments of AcrIF7 protein that inhibits the type I-F CRISPR-Cas system of Pseudomonas aeruginosa using triple-resonance nuclear magnetic resonance spectroscopy. We employed various computational methods to predict the structure and binding interface of AcrIF7, and assessed the model with experimental data. AcrIF7 binds to Cas8f protein via flexible loop regions to inhibit target DNA binding, suggesting that conformational heterogeneity is important for the Cas-Acr interaction.
Toxoplasma gondii GRA10 expressed as a GFP-GRA10 fusion protein in HeLa cells moved to the nucleoli within the nucleus rapidly and entirely. GRA10 was concentrated specifically in the dense fibrillar component of the nucleolus morphologically by the overlap of GFP-GRA10 transfection image with IFA images by monoclonal antibodies against GRA10 (Tg378), B23 (nucleophosmin) and C23 (nucleolin). The nucleolar translocalization of GRA10 was caused by a putative nucleolar localizing sequence (NoLS) of GRA10. Interaction of GRA10 with TATA-binding protein associated factor 1B (TAF1B) in the yeast two-hybrid technique was confirmed by GST pull-down assay and immunoprecipitation assay. GRA10 and TAF1B were also co-localized in the nucleolus after co-transfection. The nucleolar condensation of GRA10 was affected by actinomycin D. Expressed GFP-GRA10 was evenly distributed over the nucleoplasm and the nucleolar locations remained as hollows in the nucleoplasm under a low dose of actinomycin D. Nucleolar localizing and interacting of GRA10 with TAF1B suggested the participation of GRA10 in rRNA synthesis of host cells to favor the parasitism of T. gondii.
Park, Seong-won;Yu, Kyung-Lee;Bae, Jun-Hyun;Kim, Ga-Na;Kim, Hae-In;You, Ji Chang
BMB Reports
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제54권11호
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pp.551-556
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2021
In this study, we investigated how Staufen1 influences the HIV-1 production. The overexpression of Staufen1 increased virus production without any negative affect on the viral infectivity. This increase was not caused by transcriptional activation; but by influencing post-transcriptional steps. Using multiple Gag protein derivatives, we confirmed that the zinc-finger domains of the HIV-1 nucleocapsid (NC) are important for its interaction with Staufen1. We also found that Staufen1 colocalized in stress granules with the mature form of the HIV-1 NC protein.
Choi, Jae-Woong;Kim, Jong-Wook;Nguyen, Lap P.;Nguyen, Huu C.;Park, Eun-Mee;Choi, Dong Hwa;Han, Kang Min;Kang, Sang Min;Tark, Dongseob;Lim, Yun-Sook;Hwang, Soon B.
Molecules and Cells
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제43권5호
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pp.469-478
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2020
Hepatitis C virus (HCV) propagation is highly dependent on cellular proteins. To identify the host factors involved in HCV propagation, we previously performed protein microarray assays and identified the LIM and SH3 domain protein 1 (LASP-1) as an HCV NS5A-interacting partner. LASP-1 plays an important role in the regulation of cell proliferation, migration, and protein-protein interactions. Alteration of LASP-1 expression has been implicated in hepatocellular carcinoma. However, the functional involvement of LASP-1 in HCV propagation and HCV-induced pathogenesis has not been elucidated. Here, we first verified the protein interaction of NS5A and LASP-1 by both in vitro pulldown and coimmunoprecipitation assays. We further showed that NS5A and LASP-1 were colocalized in the cytoplasm of HCV infected cells. NS5A interacted with LASP-1 through the proline motif in domain I of NS5A and the tryptophan residue in the SH3 domain of LASP-1. Knockdown of LASP1 increased HCV replication in both HCV-infected cells and HCV subgenomic replicon cells. LASP-1 negatively regulated viral propagation and thereby overexpression of LASP-1 decreased HCV replication. Moreover, HCV propagation was decreased by wild-type LASP-1 but not by an NS5A binding-defective mutant of LASP-1. We further demonstrated that LASP-1 was involved in the replication stage of the HCV life cycle. Importantly, LASP-1 expression levels were increased in persistently infected cells with HCV. These data suggest that HCV modulates LASP-1 via NS5A in order to regulate virion levels and maintain a persistent infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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