Three parathion-degrading bacteria and eight pairs of bacteria showing syntrophic metabolism of parathion were isolated from rice field soils, and their genetic and phenotypic characteristics were investigated. The three isolates and eight syntrophic pairs were able to utilize parathion as a sole source of carbon and energy, producing p-nitrophenol as the intermediate metabolite during the complete degradation of parathion. Analysis of the 16S rRNA gene sequence indicated that the isolates were related to members of the genera Burkholderia, Arthrobacter, Pseudomonas, Variovorax, and Ensifer. The chromosomal DNA patterns of the isolates obtained by polymerasechain-reaction (PCR) amplification of repetitive extragenic palindromic (REP) sequences were distinct from one another. Ten of the isolates had plasmids. All of the isolates and syntrophic pairs were able to degrade parathion-related compounds such as EPN, p-nitrophenol, fenitrothion, and methyl parathion. When analyzed with PCR amplification and dot-blotting hybridization using various primers targeted for the organophosphorus pesticide hydrolase genes of previously reported isolates, most of the isolates did not show positive signals, suggesting that their parathion hydrolase genes had no significant sequence homology with those of the previously reported organosphophate pesticide-degrading isolates.
Background: Considerable evidence suggests that metadherin (MTDH) is a potentially crucial mediator of tumor malignancy and an important therapeutic target for simultaneously enhancing chemotherapy efficacy and reducing metastasis risk. Inhibition of MTDH expression by RNA interference has been shown in several previous research, but silencing MTDH expression by microRNA (miRNA) interference in breast cancer has not been established. In the present study, we investigated the role of MTDH-miRNA in down-regulation of proliferation, motility and migration of breast carcinoma cells. Methods: Expression vectors of recombinant plasmids expressing artificial MTDH miRNA were constructed and transfected to knockdown MTDH expression in MDA-MB-231 breast cancer cells. Expression of MTDH mRNA and protein was detected by RT-PCR and Western blot, respectively. MTT assays were conducted to determine proliferation, and wound healing assays and transwell migration experiments for cell motility and migration. Results: Transfection of recombinant a plasmid of pcDNA-MTDH-miR-4 significantly suppressed the MTDH mRNA and protein levels more than 69% in MDA-MB-231 breast cancer cells. This knockdown significantly inhibited proliferation, motility and migration as compared with controls. Conclusions: MTDH-miRNA may play an important role in down-regulating proliferation, motility and migration in breast cancer cells, and should be considered as a potential small molecule inhibitor therapeutic targeting strategy for the future.
Kim, Kyung-Duk;Ahn, Jae-Hyung;Kim, Tae-Sung;Park, Seong-Chan;Seong, Chi-Nam;Song, Hong-Gyu;Ka, Jong-Ok
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.2
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pp.113-120
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2009
Twenty-seven fenitrothion-degrading bacteria were isolated from different soils, and their genetic and phenotypic characteristics were investigated. Analysis of the 16S rDNA sequence showed that the isolates were related to members of the genera Burkholderia, Pseudomonas, Sphingomonas, Cupriavidus, Corynebacterium, and Arthrobacter. Among the 27 isolates, 12 different chromosomal DNA fingerprinting patterns were obtained by polymerase chain reaction(PCR) amplification of repetitive extra genic palindromic(REP) sequences. The isolates were able to utilize fenitrothion as a sole source of carbon and energy, producing 3-methyl-4-nitrophenol as the intermediate metabolite during the complete degradation of fenitrothion. Twenty-two of 27 isolates were able to degrade parathion, methyl-parathion, and p-nitrophenol but only strain BS2 could degrade EPN(O-ethyl-O-p-nitrophenyl phenylphosphorothioate) as a sole source of carbon and energy for growth. Eighteen of the 27 isolates had plasmids. When analyzed with PCR amplification and dot-blotting hybridization using various specific primers targeted to the organophosphorus pesticide hydrolase genes of the previously reported isolates, none of the isolates showed positive signals, suggesting that the corresponding genes of our isolates had no significant sequence homology with those of the previously isolated organophosphate pesticide-degrading bacteria.
To identity the genes responsible for the biosynthesis of exopolysaccharide, recombinant plasmids pUEX10 and pLEX10 were constructed from plasmid pLEX3 which was isolated from the recombinant cosmid library of Zoogloea ramigera 115. The complete nucleotide sequence of the 1.7 kb genomic DNA insert in plasmid pUEX10 was determined. Its analysis identified two open reading frames (ORF3 & ORF4) which could encode two proteins. The amino acid sequence derived from ORF3 showed the homology with gumC protein in Xanthomonas campestris as well as exoP protein in Rhizobium melizoti. The partial amino acid sequence of ORF4 showed the homology with polysaccharide export protein in Thermotoga maritima. Z. ramigera 115SLR and Z. ramigera 115SLR/pLEX10 showed the similar pattern for EPS production. Yield of exopolysaccharides produced by Z. ramigera 115SLR and Z. ramigera 115SLR/pLEX10 was 0.26% (w/v) and 0.16% (w/v), respectively.
Thirty-seven carbofuran-degrading bacteria were isolated from agricultural soils, and their genetic and phenotypic characteristics were investigated. The isolates were able to utilize carbofuran as a sole source of carbon and energy. Analysis of the 16S rRNA gene sequence indicated that the isolates were related to members of the genera Rhodococcus, Sphingomonas, and Sphingobium, including new types of carbofuran-degrading bacteria, Bosea and Microbacterium. Among the 37 isolates, 15 different chromosomal DNA patterns were obtained by polymerase chain reaction (PCR) amplification of repetitive extragenic palindromic (REP) sequences. Five of the 15 representative isolates were able to degrade carbofuran phenol, fenoxycarb, and carbaryl, in addition to carbofuran. Ten of the 15 representative isolates had 1 to 8 plasmids. Among the 10 plasmid-containing isolates, plasmid-cured strains were obtained from 5 strains. The cured strains could not degrade carbofuran and other pesticides anymore, suggesting that the carbofuran degradative genes were on the plasmid DNAs in these strains. When analyzed with PCR amplification and dot-blot hybridization using the primers targeting for the previously reported carbofuran hydrolase gene (mcd), all of the isolates did not show any positive signals, suggesting that their carbofuran hydrolase genes had no significant sequence homology with the mcd gene.
To investigate the nature and location of the nisin-resistance determinant of Lactococcus lactis subsp. lactis 7962 (L. lactis 7962), a total plasmid DNA prepared from L. lactis 7962, a nisin producer, was used to transform L. lactis subsp. lactis LM0230, a plasmid-free and nisin-sensitive strain, by protoplast mediated transformation procedures. All of the nisin-resistant transformants acquired the ability to utilize sucrose at the same time, confirming the close linkage between these two determinants in L. lactis 7962. The plasmid DNA profiles of a few selected nisin-resistant transformants were examined by agarose gel electrophoresis. No common plasmid was found among the transformants and some small plasmids previously not present in L. lactis 7962 were detected. These transformants were named as L. lactis KL1, KL2, KL3, KL4, or KL5, respectively based on their plasmid profiles. Growth curves of all transformants were similar to that of L. lactis LM0230, but different from that of L. lactis 7962. L. lactis KL5 showed the highest level of resistance to nisin, growing up to 1, 200 IU nisin/ml after 40 hr incubation. Some nisin-sensitive derivatives of KL1 or KL2 were obtained by plasmid curing experiments. The plasmid DNA profiles of the nisin-sensitive KL1 derivatives were apparently the same as that of the KL1. All of the nisin-sensitive KL2 derivatives were plasmid-free, but a nisin-resistant strain with no apparent plasmid was also obtained. These results indicate that the nisin-resistance of the $Nis^r$ transformants is presumably mediated by the chromosomally located gene(s) rather than plasmid-encoded gene(s).
Park, So-Yeon;Han, Hyo-Shim;Lee, Young-Sun;Koh, Young-Jin;Jung, Jae-Sung
Research in Plant Disease
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v.13
no.2
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pp.88-92
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2007
A total of 41 Pseudomonas syringae pv. syringae, the causal agent of bacterial blossom blight, were isolated from kiwifruit plants in Korea. Among them, two strains showing streptomycin resistance were examined to investigate the structure of resistant determinants by PCR and nucleotide sequence analysis. PCR results suggested that the streptomycin resistance is mediated by strA-strB genes carried on Tn5393a. Insertion sequences, IS6100 and IS1133, which were located within or downstream of tnpR gene in Xanthomonas campestris and Erwinia amylovora were not found. Nucleotide sequences of strA-strB were 100% identical with Tn5393a. Two stretomycin resistant strains had three plasmids. Southern blot hybridization using strA-strB probe indicated that the resistant genes were carried on a 100kb plasmid.
A total of 166 strains of Salmonella (S) typhimurium var copenhagen isolated from pigeons (164 strains) and aquatic birds (2 strains) were examined for the biochemical characteristics and plasmid profiles. All the strains were sensitive to ampicillin, chloramphenicol, gentamicin, kanamycin and sulfadimethoxine. But 13 strains(7.8%) were resistant to streptomycin (Sm), 2 (1.2%) to tetracycline, 2 (1.2%) to rifampicin, and 1 (0.6%) to nalidixic acid. Among drug resistant strains, only one strain resistant to Sm contained conjugative R plasmid which was fertility inhibition and incompatibility group $I_{\alpha}$. All the strains were sensitive to cobalt chloride, cupric sulfate, lead nitrate, mercuric chloride and silver nitrate. Of 166 isolates, 6 (3.6%) were resistant to sodium arsenate and 1 (0.6%) to potassium tellurite. Among 166 isolates, 1 (0.6%) was colicinogenic, 12 (7.2%) sucrose fermenters, and 166 (100%) maltose fermenters. Plasmid profiles were confirmed as being 4 or 5 plasmids, and their molecular weight ranged 3.2 to 60 megadalton (MD). All the strains harbored 60 Md plasmid. There are three patterns by the plasmid profile, 150 isolates (90.4%) were pattern I (3.2, 3.5, 33, 60Md), 14 (8.4%) pattern II (3.2, 3.5, 29, 60Md), and 2 (1.2%) pattern III (4.2, 7.8, 8.5, 15, 60Md). S typhimurium var copenhagen strains containing 60Md plasmid were resistant to killing by 90% normal guinea pig serum.
Kim, Hong-Gyun;Park, Hey-Jung;Kang, Hyun-Jung;Lim, Hye-Won;Kim, Kyung-Hoon;Park, Eun-Hee;Ahn, Ki-Sup;Lim, Chang-Jin
Journal of Microbiology
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v.43
no.1
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pp.44-48
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2005
In our previous study, the first structural gene (GGTI) encoding ${\gamma}-glutamyl$ transpeptidase was cloned and characterized from the fission yeast Schizosaccharomyces pombe, and its transcription, using the GGTI-lacZ fusion gene, containing the 1,085 bp upstream region from the translational initiation point, was found to be enhanced by sodium nitroprusside and L-buthionine-(S,R)-sulfoximine (BSO). In the present work, regulation of the GGTI gene was further elucidated. Non-fermentable carbon sources, such as acetate and ethanol, markedly enhanced the synthesis of ${beta}-galactosidase$ from the GGTI-lacZ fusion gene. However, its induction by non-fermentable carbon sources appeared to be independent of the presence of the Pap1 protein. Nitrogen starvation also gave rise to induction of GGTI gene expression in a Pap1-independent manner. The three additional fusion plasmids, carrying 754, 421 and 156 bp regions, were constructed. The sequence responsible for the induction by non-fermentable carbon sources and nitrogen starvation was identified to exist within a -421 bp region of the GGTI gene. Taken together, the S. pombe GGTI gene is regulated by non-fermentable carbon sources and nitrogen starvation.
Sep gene, which is one of the cell division genes coding for penicillin binding protein 3 was subcloned from ${\lambda}607sep^{+2}$ to plasmid pBR322. which has a strong promotor such as lac UV5(lacP). It was confirmed that the sep gene cloned to pLJ3 was in the proper orientation for expressionfrom lactose promotor. To analyze the expression efficiency of sep gene within the plasmids newly constructed, sep mRNA was assated by using ${\lambda$\mid$\;607sep^{+2}$ DNA as a probe. Sep mRNA level was increased 25 times in the cells carrying sep gene cloned to pBR322 compared to E. coli C600 which has wild type sep gene within the chromosome instead of plasmed. Furthermore, the cells carrying sep gene cloned to pLJ3 derected the synthesis of about 50 times as much sep mRNA as did cells carrying sep gene cloned to pBR 322, representing that the sep gene was successfully cloned to pLJ3.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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