Background: Korean ginseng is an important cash crop in Asian countries. However, plant yield is reduced by pathogens. Among the Ilyonectria radicicola-species complex, I. mors-panacis is responsible for root-rot and replant failure of ginseng in Asia. The development of new methods to reveal the existence of the pathogen before cultivation is started is essential. Therefore, a quantitative real-time polymerase chain reaction method was developed to detect and quantify the pathogen in ginseng soils. Methods: In this study, a species-specific histone H3 primer set was developed for the quantification of I. mors-panacis. The primer set was used on DNA from other microbes to evaluate its sensitivity and selectivity for I. mors-panacis DNA. Sterilized soil samples artificially infected with the pathogen at different concentrations were used to evaluate the ability of the primer set to detect the pathogen population in the soil DNA. Finally, the pathogen was quantified in many natural soil samples. Results: The designed primer set was found to be sensitive and selective for I. mors-panacis DNA. In artificially infected sterilized soil samples, using quantitative real-time polymerase chain reaction the estimated amount of template was positively correlated with the pathogen concentration in soil samples ($R^2=0.95$), disease severity index ($R^2=0.99$), and colony-forming units ($R^2=0.87$). In natural soils, the pathogen was recorded in most fields producing bad yields at a range of $5.82{\pm}2.35pg/g$ to $892.34{\pm}103.70pg/g$ of soil. Conclusion: According to these results, the proposed primer set is applicable for estimating soil quality before ginseng cultivation. This will contribute to disease management and crop protection in the future.
Tetrodotoxin (TTX) is a natural neurotoxin found in several species of puffer fish belonging to Tetraodon fugu genus and has been reported to affect processes such as proliferation, metastasis and invasion of various cancer cells. However, it was not revealed which genes were influenced by these reactions. In this experiment, it was examined in human SW620 colorectal cancer cells. The proliferation of SW620 cells was significantly reduced when treated with 0, 1, 10 and 100 μM TTX for 48 h. It was confirmed using Annexin V-propidium iodide staining that some apoptosis was induced. Differentially expressed genes (DEGs) affecting cell proliferation through RNA sequencing (RNA-seq) were selected. The expression change of DEGs was confirmed by conducting quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR). As a result, the mRNA expression of FOS and WDR48 genes was found to be increased in the 100 μM TTX treatment group compared to the control group. On the other hand, the mRNA expression of ALKBH7, NDUFA13, RIPPLY3 and SELENOM genes was found to be reduced, and in the case of the ALKBH7 gene was identified to show significant differences. This experiment suggests that TTX can be used as an important fundamental data to elucidate the mechanism that inhibits the proliferation of SW620 cells.
Kim, Hwan-Deuk;Jeon, Hye-Jin;Jang, Min;Bae, Seul-Gi;Yun, Sung-Ho;Han, Jee-Eun;Kim, Seung-Joon;Lee, Won-Jae
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.37
no.2
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pp.96-105
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2022
The ovary undergoes substantial physiological changes along with estrus phase to mediate negative/positive feedback to the upstream reproductive tissues and to play a role in producing a fertilizable oocyte in the developing follicles. However, the disorder of estrus cycle in female can lead to diseases, such as cystic ovary which is directly associated with decline of overall reproductive performance. In gene expression studies of ovaries, quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (qPCR) assay has been widely applied. During this assay, although normalization of target genes against reference genes (RGs) has been indispensably conducted, the expression of RGs is also variable in each experimental condition which can result in false conclusion. Because the understanding for stable RG in porcine ovaries was still limited, we attempted to assess the stability of RGs from the pool of ten commonly used RGs (18S, B2M, PPIA, RPL4, SDHA, ACTB, GAPDH, HPRT1, YWHAZ, and TBP) in the porcine ovaries under different estrus phase (follicular and luteal phase) and cystic condition, using stable RG-finding programs (geNorm, Normfinder, and BestKeeper). The significant (p < 0.01) differences in Ct values of RGs in the porcine ovaries under different conditions were identified. In assessing the stability of RGs, three programs comprehensively agreed that TBP and YWHAZ were suitable RGs to study porcine ovaries under different conditions but ACTB and GAPDH were inappropriate RGs in this experimental condition. We hope that these results contribute to plan the experiment design in the field of reproductive physiology in pigs as reference data.
Chiao-Hsu Ke;Mao-Yuan Du;Wang-Ju Hsieh;Chiu-Chiao Lin;James Mingjuh Ting;Ming-Tang Chiou;Chao-Nan Lin
Journal of Veterinary Science
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v.25
no.2
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pp.28.1-28.11
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2024
Background: Porcine circovirus type 2 (PCV2) infection is ubiquitous around the world. Diagnosis of the porcine circovirus-associated disease requires clinic-pathological elements together with the quantification of viral loads. Furthermore, given pig farms in regions lacking access to sufficient laboratory equipment, developing diagnostic devices with high accuracy, accessibility, and affordability is a necessity. Objectives: This study aims to investigate two newly developed diagnostic tools that may satisfy these criteria. Methods: We collected 250 specimens, including 170 PCV2-positive and 80 PCV2-negative samples. The standard diagnosis and cycle threshold (Ct) values were determined by quantitative polymerase chain reaction (qPCR). Then, two point-of-care (POC) diagnostic platforms, convective polymerase chain reaction (cPCR, qualitative assay: positive or negative results are shown) and EZtargex (quantitative assay: Ct values are shown), were examined and analyzed. Results: The sensitivity and specificity of cPCR were 88.23% and 100%, respectively; the sensitivity and specificity of EZtargex were 87.65% and 100%, respectively. These assays also showed excellent concordance compared with the qPCR assay (κ = 0.828 for cPCR and κ = 0.820 for EZtargex). The statistical analysis showed a great diagnostic power of the EZtargex assay to discriminate between samples with different levels of positivity. Conclusions: The two point-of-care diagnostic platforms are accurate, rapid, convenient and require little training for PCV2 diagnosis. These POC platforms can discriminate viral loads to predict the clinical status of the animals. The current study provided evidence that these diagnostics were applicable with high sensitivity and specificity in the diagnosis of PCV2 infection in the field.
Bordetella (B.) bronchiseptica, Mycoplasma (M.) felis, and Chlamydia (C.) felis are considered as main bacterial pathogens of feline upper respiratory tract disease (URTD). In this study, a new triplex quantitative real-time polymerase chain reaction (tqPCR) assay was developed for the rapid and differential detection of these bacteria in a single reaction. The assay specifically amplified three bacterial genes with the detection limit of below 10 copies/reaction. The assay showed high repeatability and reproducibility, with coefficients of intra-assay and inter-assay variation of less than 1%. Based on the diagnostic results of the assay using 94 clinical samples obtained from cats with URTD signs, prevalence of B. bronchiseptica, M. felis, or C. felis was 10.6%, 36.2%, or 6.4%, respectively, indicating that the diagnostic sensitivity was comparable to those of previously reported monoplex qPCR assays. The dual infection rates for B. bronchiseptica and M. felis or M. felis and C. felis was 2.1% or 3.2%, respectively. These results indicated that M. felis has been widely spread, and its co-infection with B. bronchiseptica or M. felis has been frequently occurred in Korean cat population. The developed tqPCR assay will serve as a promising tool for etiological and epidemiological studies of these three bacterial pathogens and the prevalence data obtained in this study will contribute to expanding knowledge about the epidemiology of feline URTD in Korea.
Kim, Mi-Ju;Lee, Shin-Young;Kim, Hyun-Joong;Lee, Jeong Su;Joo, In Sun;Kwak, Hyo Sun;Kim, Hae-Yeong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.8
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pp.1398-1403
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2016
The simultaneous detection and accurate identification of hepatitis A virus (HAV) is critical in food safety and epidemiological studies to prevent the spread of HAV outbreaks. Towards this goal, a one-step duplex reverse-transcription (RT)-PCR method was developed targeting the VP1/P2B and VP3/VP1 regions of the HAV genome for the qualitative detection of HAV. An HAV RT-qPCR standard curve was produced for the quantification of HAV RNA. The detection limit of the duplex RT-PCR method was 2.8 × 101 copies of HAV. The PCR products enabled HAV genotyping analysis through DNA sequencing, which can be applied for epidemiological investigations. The ability of this duplex RT-PCR method to detect HAV was evaluated with HAV-spiked samples of fresh lettuce, frozen strawberries, and oysters. The limit of detection of the one-step duplex RT-PCR for each food model was 9.4 × 102 copies/20 g fresh lettuce, 9.7 × 103 copies/20 g frozen strawberries, and 4.1 × 103 copies/1.5 g oysters. Use of a one-step duplex RT-PCR method has advantages such as shorter time, decreased cost, and decreased labor owing to the single amplification reaction instead of four amplifications necessary for nested RT-PCR.
Cho, Min Seok;Ahn, Tae-Young;Joh, Kiseong;Kwon, Oh-Sang;Jheong, Won-Hwa;Park, Dong Suk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.8
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pp.1113-1117
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2012
Shigella sonnei is a causal agent of fever, nausea, stomach cramps, vomiting, and diarrheal disease. The present study describes a quantitative polymerase chain reaction (qPCR) assay for the specific detection of S. sonnei using a primer pair based on the methylase gene for the amplification of a 325 bp DNA fragment. The qPCR primer set for the accurate diagnosis of Shigella sonnei was developed from publically available genome sequences. This quantitative PCR-based method will potentially simplify and facilitate the diagnosis of this pathogen and guide disease management.
Paenibacillus polymyxa is known to be a plant-growth-promoting rhizobacterium. The present study describes a quantitative polymerase chain reaction (qPCR) assay for the specific detection and quantitation of P. polymyxa using a primer pair based on the sequence of a membrane-fusion protein for the amplification of a 268 bp DNA fragment. This study reports that the qPCR-based method is applicable for the rapid and sensitive detection of P. polymyxa and can be used as an alternative method for agricultural soil monitoring.
The development and commercialization of industrial genetically modified (GM) organisms is actively progressing worldwide, highlighting an increased need for improved safety management protocols. We sought to establish an environmental monitoring method, using real-time polymerase chain reaction (PCR) and propidium monoazide (PMA) treatment to develop a quantitative detection protocol for living GM microorganisms. We developed a duplex TaqMan quantitative PCR (qPCR) assay to simultaneously detect the selectable antibiotic gene, ampicillin (AmpR), and the single-copy Escherichia coli taxon-specific gene, D-1-deoxyxylulose 5-phosphate synthase (dxs), using a direct cell suspension culture. We identified viable engineered E. coli cells by performing qPCR on PMA-treated cells. The theoretical cell density (true copy numbers) calculated from mean quantification cycle (Cq) values of PMA-qPCR showed a bias of 7.71% from the colony-forming unit (CFU), which was within ±25% of the acceptance criteria of the European Network of GMO Laboratories (ENGL). PMA-qPCR to detect AmpR and dxs was highly sensitive and was able to detect target genes from a 10,000-fold (10-4) diluted cell suspension, with a limit of detection at 95% confidence (LOD95%) of 134 viable E. coli cells. Compared to DNA-based qPCR methods, the cell suspension direct PMA-qPCR analysis provides reliable results and is a quick and accurate method to monitor living GM E. coli cells that can potentially be released into the environment.
Dal-Ah KIM;Kyoung Hye KONG;Hyun-Jeong CHO;Mi-Ran LEE
Korean Journal of Clinical Laboratory Science
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v.55
no.3
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pp.184-194
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2023
In this study, we investigated whether p-anisaldehyde (PAA), the main component of essential oils derived from anise seeds, influences the differentiation of mouse C2C12 myoblasts. Cells were induced to differentiate over 5 days using a differentiation medium with or without PAA (50 or 200 mg/mL). Myotube length and diameter were measured, and the expressions of myogenic markers (myoblast determination protein 1, myogenin, myocyte enhancer factor 2, muscle creatine kinase, and myosin heavy chain) and atrophy-related genes (atrogin-1 and muscle ring finger-1 [MuRF-1]) were assessed by quantitative real-time polymerase chain reaction. Additionally, protein kinase B (Akt) phosphorylation was monitored by western blotting. PAA significantly induced the formation of smaller and thinner myotubes and reduced myogenic marker expression. Furthermore, PAA increased the expressions of atrogin-1 and MuRF-1 and simultaneously reduced Akt phosphorylation. Our findings indicate that PAA inhibits the myogenic differentiation of C2C12 cells by reducing the phosphorylation and activation of Akt.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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