Deep blue fluorescence of resorcin blue-stained callose was observed only in the potato leafroll virus (PLRV)-infected potato plants, but not in other potato viruses investigated. The plant sections stained with aniline blue showed non-specific fluorescence regardless of PLRV infection, which means that aniline blue is not suitable for the staining of callose induces by PLRV infection. The fluorescence of resorcin blue-stained callose was more easily detectable than autofluorescence by a direct fluorescence detection method because of its deep blue color. The lateral branch of lower leaves was turned out to be the best material for fluorescence observation of all plant parts tested. In comparison of diagnostic efficacy of this technique to enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), PLRV infected potato plants showed corresponding increment of the fluorescence of resorcin blue stained callose as absorption values in ELISA increased. In the future, the criteria measuring the fluorescence objectively are thought to be determined for the practical application to the diagnosis of potato leafroll disease.
Cho, Won Kyong;Lian, Sen;Kim, Sang-Min;Park, Sang-Ho;Kim, Kook-Hyung
The Plant Pathology Journal
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제29권3호
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pp.223-233
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2013
Rice stripe virus (RSV) is one of the most destructive viruses of rice, and greatly reduces rice production in China, Japan, and Korea, where mostly japonica cultivars of rice are grown. RSV is transmitted by the small brown plant-hopper (SBPH) in a persistent and circulative-propagative manner. Several methods have been developed for detection of RSV, which is composed of four single-stranded RNAs that encode seven proteins. Genome sequence data and comparative phylogenetic analysis have been used to identify the origin and diversity of RSV isolates. Several rice varieties resistant to RSV have been selected and QTL analysis and fine mapping have been intensively performed to map RSV resistance loci or genes. RSV genes have been used to generate several genetically modified transgenic rice plants with RSV resistance. Recently, genome-wide transcriptome analyses and deep sequencing have been used to identify mRNAs and small RNAs involved in RSV infection; several rice host factors that interact with RSV proteins have also been identified. In this article, we review the current statues of RSV research and propose integrated approaches for the study of interactions among RSV, rice, and the SBPH.
Astringent persimmon (Diospyros kaki Thunb.) is an important fruit crop in Korea; it possesses significant medicinal potential. However, knowledge regarding the pathogens affecting this crop, particularly, viruses and viroids, is limited. In the present study, reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and high-throughput transcriptome sequencing (HTS) were used to investigate the viruses and viroids infecting astringent persimmons cultivated in Korea. A one-step multiplex RT-PCR (mRT-PCR) method for the simultaneous detection of the pathogens was developed by designing species-specific primers and selecting the primer pairs via combination and detection limit testing. Seven of the sixteen cultivars tested were found to be infection-free. The RT-PCR and HTS analyses identified two viruses and one viroid in the infected samples (n = 51/100 samples collected from 16 cultivars). The incidence of single infections (n = 39/51) was higher than that of mixed infections (n = 12/51); the infection rate of the Persimmon cryptic virus was the highest (n = 31/39). Comparison of the monoplex and mRT-PCR results using randomly selected samples confirmed the efficiency of mRT-PCR for the identification of pathogens. Collectively, the present study provides useful resources for developing disease-free seedlings; further, the developed mRT-PCR method can be extended to investigate pathogens in other woody plants.
Soybean mosaic virus(SMV)는 potyvirus 속에 속하며, 모자이크, 괴사, 기형 등의 병징을 야기하고 국내에서는 11개 계통(G1 to G7, G5H, G6H, G7H, G7a)이 보고되어있다. Reverse transcription loop-mediated isothermal amplification(RT-LAMP) 방법은 등온에서 유전자 증폭이 가능하게 하며, 이 방법은 PCR 과정이나 전기영동 없이도 바이러스에 감염된 식물을 검출할 수 있는 이점이 있다. RT-LAMP의 최적반응 조건은 $58^{\circ}C$, 60분으로 확인되었다. 특이성 검정을 위해 콩에서 발생하는 여러 바이러스들과 보유중인 SMV의 9 계통에서 그 특이성을 확인하였다. 그 결과 SMV에 대한 RT-LAMP primer들의 종 특이성이 확인되었으며, SMV의 계통들에 대해서도 적용이 가능한 것으로 확인되었다. 항온수조와 heating block과 같은 간편한 등온 장치에서 재현성을 확인하기 위해 Thermocycler 기기와 비교하여 증폭 여부를 확인한 결과 반응의 차이는 나타나지 않았다. RTLAMP 반응 이후, 반응물을 전기영동과 SYBR Green I을 이용하여 자연광과 UV광에서 증폭 여부를 확인하였다. 그 결과 전기 영동, 자연광, portable UV light와 UV transilluminator에서 모두 반응이 확인되었다.
Kim, Sung-Ryul;Yoon, Ju-Yoon;Choi, Gug-Sun;Chang, Moo-Ung;Choi, Jang-Kyung;Chung, Bong-Nam
The Plant Pathology Journal
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제26권2호
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pp.130-138
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2010
Orchid fleck virus (OFV) is an unassigned plant virus in the family Rhabdoviridae. OFV was isolated from Cymbidium sp. showing oval necrotic lesions on their leaves in Korea, and designated as OFV-NHHS1. The complete nucleotide sequence of the RNA1 (6,413 nt) (GenBank accession no. AB516442) and RNA2 (6,001 nt) (GenBank accession no. AB516441) was determined in this study. RNA1 and RNA2 contained five and one ORF respectively. RNA1 encodes nucleocapsid (N) of 49 kDa, ORF2 of 26 kDa, ORF3 of 38 kDa, ORF4 of 20 kDa and glycoprotein (G) of 61 kDa proteins, whereas RNA2 encodes a single polymerase of 212 kDa. OFV-NHHS1 shared extremely high similarity of 98.6-100% and 98.9-99.6% in nucleotidle and amino acid sequences with a Japanese isolate, OFV-so, respectively. However, the N, G and L of OFV-NHHS1 revealed 6.9-19.3%, 7.3-12.0%, and 13.4-26.6% identities to those of 29 Rhabdoviruses, respectively. To survey the infection rate of OFV in commercial orchids in Korea, 51 Cymbidium sp., 10 Phalaenopsis sp., 22 Oncidium sp. and 21 Dendrobium sp. plants that showed typical viral symptoms were collected. RT-PCR with specific primers for detection of Cymbidium mosaic virus (CymMV), ORSV and OFV showed high infection rate by ORSV alone and double infection by ORSV and CymMV. One of the orchids tested was infected with OFV. This is the first report of the complete nucleotide sequences of OFV isolated in Korea.
Nattanong Bupi;Thuy Thi Bich Vo;Muhammad Amir Qureshi;Marjia Tabassum;Hyo-jin Im;Young-Jae Chung;Jae-Gee Ryu;Chang-seok Kim;Sukchan Lee
The Plant Pathology Journal
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제40권3호
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pp.310-321
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2024
Tomato yellow leaf curl virus (TYLCV) and tomato spotted wilt virus (TSWV) are well-known examples of the begomovirus and orthotospovirus genera, respectively. These viruses cause significant economic damage to tomato crops worldwide. Weeds play an important role in the ongoing presence and spread of several plant viruses, such as TYLCV and TSWV, and are recognized as reservoirs for these infections. This work applies a comprehensive approach, encompassing field surveys and molecular techniques, to acquire an in-depth understanding of the interactions between viruses and their weed hosts. A total of 60 tomato samples exhibiting typical symptoms of TYLCV and TSWV were collected from a tomato greenhouse farm in Nonsan, South Korea. In addition, 130 samples of 16 different weed species in the immediate surroundings of the greenhouse were collected for viral detection. PCR and reverse transcription-PCR methodologies and specific primers for TYLCV and TSWV were used, which showed that 15 tomato samples were coinfected by both viruses. Interestingly, both viruses were also detected in perennial weeds, such as Rumex crispus, which highlights their function as viral reservoirs. Our study provides significant insights into the co-occurrence of TYLCV and TSWV in weed reservoirs, and their subsequent transmission under tomato greenhouse conditions. This project builds long-term strategies for integrated pest management to prevent and manage simultaneous virus outbreaks, known as twindemics, in agricultural systems.
In the present work, a pair of primers specific to Tomato yellow leaf curl virus (TYLCV) was designed to allow specific amplification of DNA fragments from any TYLCV isolates using an extensive alignment of the complete genome sequences of TYLCV isolates deposited in the GenBank database. A pair of primers which allows the specific amplification of tomato ${\beta}$-tubulin gene was also analyzed as an internal PCR control. A duplex PCR method with the developed primer sets showed that TYLCV could be directly detected from the leaf crude sap of infected tomato plants. In addition, our developed duplex PCR method could determine PCR errors for TYLCV diagnosis, suggesting that this duplex PCR method with the primer sets is a good tool for specific and sensitive TYLCV diagnosis. The developed duplex PCR method was further verified from tomato samples collected from some farms in Korea, suggesting that this developed PCR method is a simple and reliable tool for rapid and large-scale TYLCV detections in tomato plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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