The dual-vector system-II (DVS-II), which allows efficient display of Fab antibodies on phage, has been reported previously, but its practical applicability in a phage-displayed antibody library has not been verified. To resolve this issue, we created two small combinatorial human Fab antibody libraries using the DVS-II, and isolation of target-specific antibodies was attempted. Biopanning of one antibody library, termed DVFAB-1L library, which has a $1.3{\times}10^7$ combinatorial antibody complexity, against fluorescein-BSA resulted in successful isolation of human Fab clones specific for the antigen despite the presence of only a single light chain in the library. By using the unique feature of the DVS-II, an antibody library of a larger size, named DVFAB-131L, which has a $1.5{\times}10^9$ combinatorial antibody complexity, was also generated in a rapid manner by combining $1.3{\times}10^7$ heavy chains and 131 light chains and more diverse anti-fluorescein-BSA Fab antibody clones were successfully obtained. Our results demonstrate that the DVS-II can be applied readily in creating phage-displayed antibody libraries with much less effort, and target-specific antibody clones can be isolated reliably via light chain promiscuity of antibody molecules.
To enhance therapeutic potential of murine monoclonal antibody, humanization by CDR grafting is usually used to reduce immunogenic mouse residues. Most humanized antibodies still have mouse residues critical for antigen binding, but the mouse residues may evoke immune responses in humans. Previously, we constructed a new humanized version (AKA) of mouse CC49 antibody specific for tumor-associated glycoprotein, TAG-72. In this study, to select a completely human antibody light chain against TAG-72, guided selection strategy using phage display was used. The heavy chain variable region (VH) of AKA was used to guide the selection of a human TAG-72-specific light chain variable region (VL) from a human VL repertoire constructed from human PBL. Most of the selected VLs were identified to be originated from the members of the human germline VK1 family, whereas the VL of AKA is more homologous to the VK4 family. Competition binding assay of the selected Fabs with mouse CC49 suggested that the epitopes of the Fabs overlap with that of CC49. In addition, they showed better antigen-binding affinity compared to parental AKA. The selected human VLs may be used to guide the selection of human VHs to get completely human anti-TAG72 antibody.
Kim, Min-Soo;Park, Chan-Hee;Lee, Jong-Ho;Myung, Hee-Joon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.2
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pp.328-333
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2008
A series of pep tides binding to the HCV NS5B polymerase was selected from phage display peptide libraries. A conserved motif of Ser-Arg-X-Arg/Leu was identified among the selected peptides, and Pep2 (Trp-Ser-Arg-Pro-Arg-Ser-Leu) was chosen for further characterization. The binding of Pep2 to HCV NS5B in vivo was shown by a yeast two-hybrid assay and by subcellular colocalization analysis using immunofluorescence confocal microscopy. The in vitro interaction was also confirmed by GST pulldown assay. The replication of the HCV 1b subgenomic replicon was efficiently inhibited by the presence of the peptide. By using a subtractive biopanning against Pep2, the binding site of the peptide was mapped at the pocket of Pro388 to Pro391 in the thumb subdomain of the polymerase. A yeast two-hybrid analysis using Pro388Ala and Pro391Ala mutants of NS5B confirmed the binding.
The in vitro antibody discovery technologies revolutionized the generation of target-specific antibodies that traditionally relied on the humoral response of immunized animals. An antibody library, a large collection of diverse, pre-constructed antibodies, can be rapidly screened using in vitro display technologies such as phage display. One of the keys to successful in vitro antibody discovery is the quality of the library diversity. Antibody diversity can be obtained either from natural B-cell sources or by the synthetic methods that combinatorially generate random nucleotide sequences. While the functionality of a natural antibody library depends largely upon the library size, various other factors can affect the quality of a synthetic antibody library, making the design and construction of synthetic antibody libraries complicated and challenging. In this review, we present various library designs and diversification methods for synthetic antibody library. From simple degenerate oligonucleotide synthesis to trinucleotide synthesis to physicochemically optimized library design, the synthetic approach is evolving beyond the simple emulation of natural antibodies, into a highly sophisticated method that is capable of producing high quality antibodies suitable for therapeutic, diagnostic, and other demanding applications. [BMB Reports 2015; 48(9): 489-494]
We describe a phage display strategy, based on the differential resistance of proteins to denaturant-induced unfolding, that can be used to select protein variants with improved conformational stability. To test the efficiency of this strategy, wild-type and two stable variants of ${\alpha}_1$-antitrypsin (${\alpha}_1AT$) were fused to the gene III protein of M13 phage. These phages were incubated in unfolding solution containing denaturant (urea or guanidinium chloride), and then subjected to an unfavorable refolding procedure (dialysis at $37^{\circ}C$). Once the ${\alpha}_1AT$ moiety of the fusion protein had unfolded in the unfolding solution, in which the denaturant concentration was higher than the unfolding transition midpoint ($C_m$) of the ${\alpha}_1AT$ variant, around 20% of the phage retained binding affinity to anti-${\alpha}_1AT$ antibody due to a low refolding efficiency. Moreover, this affinity reduced to less than 5% when 10 mg/mL skimmed milk (a misfolding-promoting additive) was included during the unfolding/refolding procedure. In contrast, most binding affinity (>95%) remained if the ${\alpha}_1AT$ variant was stable enough to resist unfolding. Because this selection procedure does not affect the infectivity of M13, the method is expected to be generally applicable to the high-throughput screening of stable protein variants, when activity-based screening is not possible.
Background: To develop a novel treatment strategy for hepatitis B virus infection, a major cause of liver chirosis and cancer, we aimed to make human monoclonal antibodies inhibiting RNase H activity of P protein playing in important role in HBV replication. In this regard, phage display technology was employed and demonstrated as an efficient cloning method for human monoclonal antibody. So this study analysed the usability of human monoclonal antibody as protein based gene therapy. Methods: RNase H of HBV was expressed as fusion protein with maltose binding protein and purified with amylose resin column. Single chain Fv (scFv) phage antibody library was constructed by PCR cloning using total RNAs of PBMC from 50 healthy volunteers. Binders to RNase H were selected with BIAcore 2000 from the constructed library, and purified as soluble antibody fragment. The affinity and sequences of selected antibody fragments were analyzed with BIAcore and ABI automatic sequencer, respectively. And finally RNase H activity inhibiting assay was carried out. Results: Recombinant RNase H expressed in E. coli exhibited an proper enzyme activity. Naive library of $4.46{\times}10^9cfu$ was screened by BIAcore 2000. Two clones, RN41 and RN56, showed affinity of $4.5{\times}10^{-7}M$ and $1.9{\times}10^{-7}M$, respectively. But RNase H inhibiting activity of RN41 was higher than that of RN56. Conclusion: We cloned human monoclonal antibodies inhibiting RNase H activity of P protein of HBV. These antibodies can be expected to be a good candidate for protein-based antiviral therapy by preventing a replication of HBV if they can be expressed intracellularly in HBV-infected hepatocytes.
Seo Min-Hee;Lee Jong-Ho;Kim Min-Soo;Chae Hee-K.;Myung Hee-Joon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.2
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pp.303-307
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2006
We have screened phage display peptide libraries to select for peptides binding to various sized $TiO_2$ nanoparticles. Phage libraries displaying random 7mer, 12mer, and C-7-Cmer peptides were used for screening. The size of target $TiO_2$ particles used were 7 nm, 15 nm, and 25 nm in diameter. We could select peptides binding each nanoparticles from all 3 libraries. Their binding was confirmed by transmission electron microscopy (TEM). Each peptide investigated was also shown to bind the other sized particles, meaning that the binding was specific for the nature of the particle rather than for the size of it. One of the 7mer peptides (PEP9, SVSPISH) was chosen for further analysis. The binding was shown to be in a dose-dependent manner, suggesting a specific interaction.
Lee, Seung-Joo;Lee, Jeong-Hwan;Kay, Brian K.;Dreyfuss, Gideon;Park, Yong-Keun;Kim, Jeong-Kook
Journal of Microbiology
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v.35
no.4
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pp.347-353
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1997
We have characterized a phage library displaying random 22mer peptides which were produced as N-terminal fusions to the pIII coat protein of M13 filamentous phages. Among the sixty phages randomly picked from the library, 25 phages had the 22mer peptide inserts. The DNA sequence analysis of the 25 inserts showed the following results: first, each nucleotide was represented almost equally at each codon position except that there were some biases toward G bases at the first position of the codons. Secondly, the expected 47 sense codons were represented. The deduced amino acid sequences of the 25 inserts were analyzed to examine its diversity. Glycine and glutamate were the two most overrepresented residues above the expected value, whereas cysteine and threonine residues were underrepresented. The range of dicersity in dipeptide sequences showed that the amino acid residues were randomly distributed along the peptide insert. Acidic, basic, polar, and nonpolar amino acid residues were represented to the extent expected at most positions of the peptide inserts. The predicted isoelectric points and hydropathy indices of the 25 peptides showed that a variety of the peptide were represented in the library. These results indicate that this phage display library could be useful in fiuding ligands for a broad spectrum of receptors by affinity screening.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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