Fragile-X-syndrome (FXS) is the most common type of inherited cognitive impairment. The underlying molecular alteration consists of a CGG-repeat amplification within the FMR-1 gene. The phenotype is only apparent once a threshold in the number of repeats has been exceeded (full mutation). The aim of this study was to characterize the FMR-1 CGG-repeat status in Argentine patients exhibiting mental retardation. A total of 330 blood samples from patients were analyzed by PCR and Southern blot analysis. Initially, DNA from 78 affected individuals were studied by PCR. Since this method is unable to detect high molecular weight alleles, however, we undertook a second approach using the Southern blotting technique to analyze the CGG repeat number and methylation status. Southern blot analysis showed an altered pattern in 14 out of 240 (6%) unrelated patients, with half of them presenting a mosaic pattern. Eight out of 17 families (47%) showed a (suggest deleting highlight). The characteristic FXS pattern was identified in 8/17 families (47%), and in 4 of these families 25% of the individuals presented with a mosaic model. The expansion from pre-mutation to full mutation was shown to occur both at the pre and post zygotic levels. The detection of FXS mutations has allowed us to offer more informed genetic counseling, prenatal diagnosis and reliable patient follow-up.
Terminal-restriction fragment length polymorphism (T-RFLP) analysis has been optimized by using in vitro model community composed of genomic DNAs of known bacterial strains and has been applied to assess the bacterial community structure in marine sediments. The specific fluorescence-labeled terminal restriction fragments (T-RFs) between 39 and 839 base long specifying each strain were precisely measured for known bacterial strains. The addition of a co-solvent (dimethylsulfoxide or glycerol) into PCR reactions has reduced differential PCR amplification. Comparative bacterial community structure was investigated for pristine and polluted sediments. A complex T-RFLP pattern showing complex bacterial community structure was obtained in the pristine sediment, whereas simple T-RFLP pattern (low bacterial diversity) was shown in polluted sediments where caged aquaculture has been conducted for several years. The results of T-RFLP analysis were compared with that of cloning and sequencing 16S rDNA clones from the same sediments. Sequence analysis of 16S rDNA clones (72) of the pristine sediment revealed a diverse collection of lineages, largely of the class Proteobacteria ($6\%$ alpha subdivision, $46\%$ gamma subdivision, $13\%$ delta subdivision, and $3\%$ epsilon subdivision), Nitrospina $(8\%)$, high G+C gram positive $(8\%)$, Verrucomicrobia $(7\%)$, and Planctomycetes $(6\%)$. In the contaminated sediments, 17 $(59\%)$ of the 16S rDNA clones (29) were related to Campylobacter and symbiont of Rimicaris exoculata belonging to epsilon subdivision of Proteobacteria. The results obtained indicated that T-RFLP analysis is a rapid and precise technique for comparative bacterial community analysis.
Marine red algae of genus Laurencia are becoming the most important resources to produce unique natural metabolites with wide bioactivities. However, reports related to Laurencia undulata, an edible species used as folk herb, are rarely found to date. In this research, 5-hydroxymethyl-2-furfural (5-HMF) was isolated and characterized by nuclear magnetic resonance (NMR) from Laurencia undulata as well as other marine algae. The following characteristics of 5-HMF were systematically evaluated: its antioxidant activities, such as typical free-radicals scavenging in vitro by electron spin resonance spectrometry (ESR) and intracellular reactive oxygen species (ROS) scavenging; membrane protein oxidation; oxidative enzyme myeloperoxidase (MPO) inhibition; as well as expressions of antioxidative enzymes glutathione (GSH) and superoxide dismutase (SOD) on the gene level using the polymerase chain reaction (PCR) method. The results demonstrated that 5-HMF could be developed as a novel marine natural antioxidant or potential precursor for practical applications in the food, cosmetic, and pharmaceutical fields.
The CRISPR-Cas system is a well-established RNA-guided DNA editing technique widely used to modify genomic DNA sequences. I used the CRISPR-Cas9 system to change the second and third nucleotides of the triplet $T{\underline{CT}}$ of human TNSFSF9 in HepG2 cells to $T{\underline{AG}}$ to create an amber stop codon. The $T{\underline{CT}}$ triplet is the codon for Ser at the $172^{nd}$ position of TNSFSF9. The two substituted nucleotides, AG, were confirmed by DNA sequencing of the PCR product followed by PCR amplification of the genomic TNFSF9 gene. Interestingly, sequencing of the cDNA of transcripts of the edited TNFSF9 gene revealed that the $T{\underline{AG}}$ had been re-edited to the wild type triplet $T{\underline{CT}}$, and 1 or 2 bases just before the triplet had been deleted. These observations indicate that CRISPR-Cas9-mediated editing of bases in target genomic DNA can be followed by spontaneous re-editing (correcting) of the bases during transcription.
Herpes simplex virus(HSV) infections of the CNS are associated with significant morbidity and mortality even when appropriate antiviral therapy is administered. HSV infections of the brain can be subdivided into two categories : neonatal HSV infections, which usually are caused by HSV type 2, and herpes simplex encephalitis(HSE), which occur in patients over 3 months old and is nearly uniformly caused by HSV type 1. The clinical presentation of HSE is one of the focal encephalopathic process associated with altered levels of consciousness, fever, focal seizures and hemiparesis. But because of the lack of pathognomic clinical presentation and diagnostic procedure, the efforts to develop alternative diagnostic procedure have led to the use of new diagnostic technique such as polymerase chain reaction(PCR). We report a case of HSV type 1 encephalitis in 13 month old male infant who presented with altered level of consciousness, fever and focal seizures. With the use of the PCR, HSV-1 DNA was detected in cerebrospinal fluid from the patient. The symptoms and signs of encephalitis subsided by treatment with acyclovir in 14 days.
Kim, Se-Joo;Choi, Joong-Ki;Ryu, Seong-Ho;Min, Gi-Sik
Animal cells and systems
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제15권3호
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pp.251-258
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2011
Ciliates are considered one of the most diverse protozoa and play significant roles in ecology. For successful taxonomic study of these microscopic eukaryotes, a staining procedure is necessary, due mainly to intrinsic difficulties in recognizing characteristics from living cells. Although molecular taxonomy has been used to resolve the ambiguities associated with traditional morphology-based taxonomy, extraction of genomic DNA from stained ciliate cells is not available yet. In the present study, we describe a method to extract genomic DNA from a single protargol-impregnated euplotid cell. By using $HgCl_2$ as a fixative and modulating the exposure time of bleach solution in the protargol impregnation, high-quality genomic DNA can successfully be extracted from a stained single cell with minimal loss of morphological integrity. This technique will contribute to the effectiveness of combined approaches of molecular and morphological taxonomy from single ciliate cells.
A multi-channel microchip electrophoresis (MCME) method with parallel laser-induced fluorescence (LIF) detection was developed for rapid screening of H1N1 virus. The hemagglutinin (HA) and nucleocapsid protein (NP) gene of H1N1 virus were amplified using polymerase chain reaction (PCR). The amplified PCR products of the H1N1 virus DNA (HA, 116 bp and NP, 195 bp) were simultaneously detected within 25 s in three parallel channels using an expanded laser beam and a charge-coupled device camera. The parallel separations were demonstrated using a sieving gel matrix of 0.3% poly(ethylene oxide) ($M_r$ = 8,000,000) in $1{\times}$ TBE buffer (pH 8.4) with a programmed step electric field strength (PSEFS). The method was ~20 times faster than conventional slab gel electrophoresis, without any loss of resolving power or reproducibility. The proposed MCME/PSEFS assay technique provides a simple and accurate method for fast high-throughput screening of infectious virus DNA molecules under 400 bp.
Septin 유전자는 Saccharomyces cerevisiae에서 filament를 암호화하고 있으며 세포질분열이나 bud의 형성에 중요한 역할을 하는 것으로 알려져있다. S. cerevisiae에서 septin유전자는 4가지가 발견되었으며 초파리나 쥐의 세포에서도 발견되고 있다. 본 연구에서는 PCR 방법을 이용하여 Schizosaccharomyces pombe에서 septin 유전자를 찾아내었다. S. pombe의 septin 유전자는 1143 bp의 open reading frame을 갖고 있으며 380개의 아미노산으로된 42 kd의 분자량을 가진 단백질을 암호화하였다. S. cerevisiae의 septin 유전자의 하나인 $CDC_{12}$ 유전자와의 유사성을 비교한 결과 51.8%의 유사성이 있음이 밝혀졌다.
Genomic DNA was isolated from the Gracilaria vermiculophylla (GRV) and G. chorda (GRC) from Jangheung located in the southern sea of the Korean Peninsula, respectively and we performed clustering analyses, DNA polymorphisms and the genetic differences. The seven selected primers OPC-01, OPA-04, OPA-05, OPD-07, OPD-08, OPB-10, and OPD-16 generated average bandsharing (BS) value, the genetic distance and dendrogram. The size of DNA bands varies from 90 bp to 2,400 bp. The average BS value was $0.859{\pm}0.004$ within GRV and $0.916{\pm}0.006$ within GRC. The average BS value between two Gracilaria species was $0.340{\pm}0.003$, ranged from 0.250 to 0.415. The dendrogram obtained by the seven primers, indicates two genetic clusters. The genetic distance between two Gracilaria species ranged from 0.059 to 0.513. The individual VERMICULOPHYLLA no. 07 of GRV was genetically closely related to VERMICULOPHYLLA no. 06 of GRV (genetic distance=0.059). Especially, two entities between the individual VERMICULOPHYLLA no. 10 of GRV and CHORDA no. 22 of GRC showed the longest genetic distance (0.513) in comparison with other individuals used. Accordingly, as mentioned above, PCR analysis showed that the GRV was a little more genetically diverse than the GRC species. We convinced that this DNA analysis revealed a significant genetic distance between two Gracilaria species pairs (p<0.01).
Ayed, Lamia;Zmantar, Tarek;Bayar, Sihem;Charef, Abdelkrim;Achour, Sami;Mansour, Hedi Ben;Mzoughi, Ridha El
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제29권10호
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pp.1629-1635
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2019
Azo dyes are recalcitrant pollutants, which are toxic, carcinogenic, mutagenic and teratogenic, that constitute a significant burden to the environment. The decolorization and the mineralization efficiency of Remazol Brillant Orange 3R (RBO 3R) was studied using a probiotic consortium (Lactobacillus acidophilus and Lactobacillus plantarum). Biodegradation of RBO 3R (750 ppm) was investigated under shaking condition in Mineral Salt Medium (MSM) solution at pH 11.5 and temperature $25^{\circ}C$. The bio-decolorization process was further confirmed by FTIR and UV-Vis analysis. Under optimal conditions, the bacterial consortium was able to decolorize the dye completely (>99%) within 12 h. The color removal was 99.37% at 750 ppm. Muliplex PCR technique was used to detect the Lactobacillus genes. Using phytotoxicity, cytotoxicity, mutagenicity and biototoxicity endpoints, toxicological studies of RBO 3R before and after biodegradation were examined. A toxicity assay signaled that biodegradation led to detoxification of RBO 3R dye.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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