Journal of the Korean Applied Science and Technology
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v.39
no.1
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pp.1-9
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2022
1, 2-Octanediol (OD) as a cosmetic additive has been used simultaneously as a preservative and humectant. To solve the skin problem by 1, 2-octanediol (OD), we have synthesized 1, 2-octanediol galactoside (OD-gal) using Escherichia coli β-galactosidase (β-gal). Meanwhile, the optimal amount of β-gal, OD concentration, pH, and temperature for OD-gal synthesis were 4.5 U/ml, 150 mM, 7.0, and 37℃, respectively. Under these conditions, 150 mM OD was converted into about 55.9 mM OD-gal during 24 hours, in which the conversion yield (mole basis) was about 37.2%. In addition, OD-gal of 67.4 mg could be purified from a 9 ml reaction mixture, in which the overall synthesis yield from OD to the purified OD-gal was about 34.1% (weight basis) and 16.2% (mole basis), respectively. We are expecting that these results will be helpful to develop a safer additive in the cosmetic industry as basic data.
In this study, a repeated yeast integrative plasmid (R-YIp) harboring Cre/loxP system was constructed to integrate various gene expression cassettes into the yeast chromosome. The R-YIp system contains a reusable selective marker (CgTRP1), loxP sequence, and target sequence for integration. Therefore, many gene expression cassettes can be integrated into the same position of the same yeast chromosome. In the present study, several model enzymes involving xylan/xylose metabolism were examined, including endoxylanase (XYLP), ${\beta}$-xylosidase (XYLB), xylose reductase (GRE3) and xylitol dehydrogenase (XYL2). Efficient expression of these genes was obtained using two promoters (GAL10p and ADH1p) and various plasmids (pGMF-GENE and pAMF-GENE plasmids) were constructed. The XYLP, XYLB, GRE3, and XYL2 genes were efficiently expressed under the control of the GAL10 promoter. Subsequently, R-YIps containing the GAL10p-GENE-GAL7t cassette were constructed, resulting in pRS-XylP, pRS-XylB, pRS-Gre3, and pRS-Xyl2 plasmids. These plasmids were sequentially integrated into chromosome VII of a Saccharomyces cerevisiae strain by repeated gene integration and selective marker rescue. These genes were integrated by the R-YIp system and were stably expressed in the yeast transformants to produce active recombinant enzymes. Therefore, we expect that the R-YIp system will be able to overcome current limitations of the host cells and allow selective marker selection for the integration of various genes into the yeast chromosome.
In the present study, we investigated the overexpression and characterization of bovine pancreatic (bp)- DNase I in Saccharomyces cerevisiae and Pichia pastoris. The bp-DNase I gene was fused in frame with the GAL10 promoter, $MF{\alpha}$, and GAL7 terminator sequences, resulting in the plasmid, pGAL-$MF{\alpha}$-DNaseI (6.4 kb). Also, the bp-DNase I gene was fused in frame with the AOX1 promoter, $MF{\alpha}$, and AOX1 terminator sequences, resulting in the plasmid, pPEXI (8.8 kb). The recombinant plasmids, pGAL-$MF{\alpha}$-DNaseI and pPEXI were introduced into S. cerevisiae and P. pastoris host cells, respectively. When the transformed yeast cells were cultured at $30^{\circ}C$ for 48 h in galactose or methanol medium, bp-DNase I was overexpressed and the most of activity was found in the extracellular fraction. P. pastoris transformant activity showed 45.5 unit/mL in the culture medium at 48 h cultivation, whereas S. cerevisiae transformant revealed 37.7 unit/mL in the extracellular fraction at 48 h cultivation. The enzymatic characteristics, such as DNA cleavage and half life were investigated. Treatment of the recombinant DNase I from P. pastoris induced degradation of the calf thymus DNA within 1 minute, and this DNA degradation rate was higher than that of commercial bp-DNase I (SIGMA) and the recombinant DNase I from S. cerevisiae.
Pathogen-associated Molecular Patterns (PAMPs) are highly conserved structural motifs that are recognized by Pathogen Recognition receptors (PRRs) to initiate immune responses. Infection by these pathogens and the immune response to PAMPS such as lipopolysaccharide (LPS), Peptidoglycan (PGN), bacterial oligodeoxynucleotides [CpG oligodeoxynucleotides 2006 (CpG ODN2006) and CpG oligodeoxynucleotides 2216 (CpG ODN2216)], and viral RNA Polyinosinic-Polycytidylic Acid (Poly I:C), are associated with infectious and metabolic diseases in animals impacting health and production. It is established that PAMPs mediate the production of cytokines by binding to PRRs such as Toll-like receptors (TLR) on immune cells. Galectins (Gal) are carbohydrate-binding proteins that when expressed play essential roles in the resolution of infectious and metabolic diseases. Thus it is important to determine if the expression of galectin gene (LGALS) and Gal secretion in blood are affected by exposure to LPS and PGN, PolyI:C and bacterial CpG ODNs. LPS increased transcription of LGALS4 and 12 (2.5 and 2.02 folds respectively) and decreased secretion of Gal 4 (p < 0.05). PGN increased transcription of LGALS-1, -2, -3, -4, -7, and -12 (3.0, 2.3, 2.0, 4.1, 3.3, and 2.4 folds respectively) and secretion of Gal-8 and Gal-9 (p < 0.05). Poly I:C tended to increase the transcription of LGALS1, LGALS4, and LGALS8 (1.78, 1.88, and 1.73 folds respectively). Secretion of Gal-1, -3, -8 and nine were significantly increased in treated samples compared to control (p < 0.05). CpG ODN2006 did not cause any significant fold changes in LGALS transcription (FC < 2) but increased secretion of Gal-1, and-3 (p < 0.05) in plasma compared to control. Gal-4 was however reduced in plasma (p < 0.05). CpG ODN2216 increased transcription of LGALS1 and LGALS3 (3.8 and 1.6 folds respectively), but reduced LGALS2, LGALS4, LGALS7, and LGALS12 (-1.9, -2.0, -2.0 and; -2.7 folds respectively). Secretion of Gal-2 and -3 in plasma was increased compared to control (p < 0.05). Gal-4 secretion was reduced in plasma (p < 0.05). The results demonstrate that PAMPs differentially modulate galectin transcription and translation of galectins in cow blood.
Previous research showed that chlorphenesin galactoside (CPN-Gal), a preservative in cosmetics, was safer than CPN against human skin cells [9]. To establish a stable and long-term process for CPN-Gal production, we investigated the repeated-batch process. In this process, β-gal-producing recombinant Escherichia coli cells were immobilized in calcium alginate beads, and CPN was converted to CPN-Gal by the transgalactosylation reaction. The process was conducted in a 300 ml flask, which contained E. coli cell-immobilized alginate beads, 33.8 mM of CPN, and 400 g/l of lactose. The pH and temperature were 7.0 and 40℃, respectively. During the repeated-batch operation, four consecutive batch operations were conducted successfully until 192 hr. The conversion yield of CPN to CPN-Gal was 64% during 192 hr, which was higher than the values in previous reports [3, 13]. Thereafter, however, the conversion yield gradually decreased until the operation was finished at 336 hr. Western blotting of immobilized E. coli cells revealed that β-gal gradually decreased after 192 hr. In addition, alginate beads were cracked when the operation was finished. It is probable that, including this loss of E. coli cells by cracks, deactivation, and product inhibition of E. coli β-gal might lead to a gradual decrease in the production of CPN-Gal after 192 hr. However, as the purification of β-gal is not necessary with β-gal-producing recombinant E. coli cells, β-gal-producing E. coli cells might be a practical and cost-effective approach for enzymatically synthesizing CPN-Gal. It is expected that this process will be extended to long-term production process of CPN-Gal for commercialization.
A strain YB-10 was isolated from soil as a producer of the extracellular $\beta$-D-galactosidase, which catalyzes the hydrolysis of lactose. The strain YB-10 was identified as Streptomyces sp. on the basis of its cultural, morphological and physiological properties. After treating culture supernatant of the isolate with ammonium sulfate, the precipitated protein was used as a crude $\beta$-galactosidase for analyzing its reaction properties with para-nitrophenyl-$\beta$-D-galactosidase(pNP-$\beta$Gal) as a substrate. The $\beta$-galactosidase showed its maximal activity at pH 6.0 and 6$0^{\circ}C$. The enzyme was also active on lactose. The hydrolyzing activity of $\beta$-galactosldase for pNP-$\beta$Gal and lactose was decreased by galactose. Its hydrolyzing activity far lactose was also decreased by glucose, but the activity for pNP-$\beta$Gal was increased to 1.8-folds by glucose.
A bacterium producing the $\alpha$-galactosidase was isolated from Korean soybean paste. The isolate YB-42 has been identified as Bacillus licheniformis on the basis on its 16S rRNA sequence, morphology and biochemical properties. The $\alpha$-galactosidase activity was detected in both the culture supernatant and the cell extract of B. licheniformis YB-42. The partially purified extracellular $\alpha$-galactosidase was obtained from the culture supernatant by DEAE-Sepharose column and Q-Sepharose column chromatography. The enzyme showed the maximum activity for hydrolysis of para-nitrophenyl-$\alpha$-D-galactopyranoside (pNP-$\alpha$Gal) at pH 6.5 and $45^{\circ}C$. It was able to hydrolyze oligomeric substrates such as melibiose, raffmose and stachyose to liberate galactose residue, indicating that the a-galactosidase of B. licheniformis YB-42 hydrolyzed $\alpha$-1,6 linkage. The hydrolyzing activity of $\alpha$-galactosidase for both pNP-$\alpha$Gal and melibiose was dramatically decreased by galactose. Both glucose and mannose inhibited the activity for pNP-$\alpha$Gal less than galactose.
Hyperactivated ${\alpha}2$-6-sialylation on N-glycans due to overexpression of the Golgi enzyme ${\beta}$-galactoside: ${\alpha}2$-6-sialyltransferase (ST6Gal-I) often correlates with cancer progression, metastasis, and poor prognosis. This study was aimed to determine the association between ST6Gal-I expression and the risk of recurrence and survival of patients with localized clear-cell renal cell carcinoma (ccRCC) following surgery. We retrospectively enrolled 391 patients (265 in training cohort and 126 in validation cohort) with localized ccRCC underwent nephrectomy at a single center. Tissue microarrays were constructed for immunostaining of ST6Gal-I. Prognostic value and clinical outcomes were evaluated. High ST6Gal-I expression was associated with Fuhrman grade (p<0.001 and p=0.016, respectively) and the University of California Los-Angeles Integrated Staging System (UISS) score (p=0.004 and p=0.017, respectively) in both cohorts. Patients with high ST6Gal-I expression had significantly worse overall survival (OS) (p<0.001 and p<0.001, respectively) and recurrence free survival (RFS) (p<0.001 and p=0.002, respectively) than those with low expression in both cohorts. On multivariate analysis, ST6Gal-I expression remained associated with OS and RFS even after adjusting for the UISS score. Stratified analysis suggested that the association is more pronounced among patients with low and intermediate-risk disease defined by the UISS score. High ST6Gal-I expression is a potential independent adverse predictor of survival and recurrence in ccRCC patients, and the prognostic value is most prominent in those with low and intermediate-risk disease defined by the UISS score.
A zero-Iength croessinking procedure for studying protein-protein interactlons in preinitiation complex has heen developed. Preinltiadon complexes were assembled with immobilized DNA templates coupled to metal beads. Pudfied complexes were dIrectly crosslinked by 1-ethyl-3.(3-dimethylaminopropyl)carbodlimide (EDC). The reaction was stopped by addition of $\beta$-mercaptoethanol, and the complexes were isolated from EDC immedIately. An appllcatlion of this method with a preinltlation complex assembled with TBP, TFIIB, and GAL4-AH demonstrated that ThP dIrectly interacts with GAL4-AH and TFIIB in the prelnitlatlon complex. However, croeslinked produd between GAL4-AH and ThilB was not observed. These resutts lndlcate that GAL4-AH does not stably Interact with TFIIB In the GAL4-AH-TFIIB-TBP-DNA prelnitlatlon complex.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.44
no.10
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pp.1422-1430
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2015
This study was conducted to determine the effect of fermented water extracts from Ligularia fischeri (LAF) on reduction of hepatotoxicity induced by D-galactosamine (D-GalN) in rats. In this experiment, male Sprague-Dawley rats were used as experimental animals, which were divided into eight groups: normal group, D-GalN-treated group (control), D-GalN and non-fermented water extracts from Ligularia fischeri (LA)-treated groups [100, 200, and 400 mg/kg BW (body weight)], and D-GalN and LAF-treated groups (100, 200, and 400 mg/kg BW). ${\gamma}$-Glutamyl transferase, aspartate aminotransferase, alanine aminotransferase, and lactate dehydrogenase activities in serum of the D-GalN and LAF-treated groups decreased significantly compared to those of the control group (P<0.05). The high density lipoprotein-cholesterol levels of the D-GalN and LAF-treated groups increased significantly compared to those of the control group (P<0.05). The low density lipoprotein-cholesterol and triglyceride levels of the D-GalN and LAF-treated groups decreased significantly compared to those of the control group (P<0.05). The atherogenic index values of the D-GalN and LAF-treated groups decreased significantly compared to those of the control group (P<0.05), and their high density lipoprotein cholesterol by total cholesterol ratio increased significantly in these groups (P<0.05). Superoxide dismutase activity of liver tissues were enhanced significantly (P<0.05) in the D-GalN and LAF-treated groups compared to that of the control group (P<0.05), whereas their malondialdehyde content decreased significantly in these groups (P<0.05). The histopathological observations revealed apoptotic cells and mild portal inflammation in liver tissues of the D-GalN and LAF-treated groups. Taken together, these results demonstrate that LAF may improve plasma lipid profile and alleviate hepatic damage.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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