Proceedings of the Korean Fiber Society Conference
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2002.04a
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pp.13-16
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2002
The Intervertebral disc is a composite structure made up of the nucleus pulposus (NP) core surrounded by the multi-layered fibers of the annulus fibrosis (AF)[1]. Water is drawn into the NP by the presence of hydrophilic proteins called proteoglycans [2]. The AF, with successive layers oriented in alternating directions, surrounds the NP. These layers are placed under tension as the NP absorbs water and swells [3]. (omitted)
Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (ADSCs) are promising for regenerating degenerated intervertebral discs (IVDs), but the low efficiency of nucleus pulposus (NP)-specific differentiation limits their clinical applications. The Sonic hedgehog (Shh) signaling pathway is important in NP-specific differentiation of ADSCs, and Smoothened Agonist (SAG) is a highly specific and effective agonist of Shh signaling. In this study, we proposed a new differentiation strategy with the use of the small molecule SAG. The NP-specific differentiation and extracellular matrix (ECM) synthesis of ADSCs were measured in vitro, and the regenerative effects of SAG pretreated ADSCs in degenerated IVDs were verified in vivo. The results showed that the combination of SAG and transforming growth factor-${\beta}3$ ($TGF-{\beta}3$) is able to increase the ECM synthesis of ADSCs. In addition, the gene and protein expression levels of NP-specific markers were increased by treatment with SAG and $TGF-{\beta}3$. Furthermore, SAG pretreated ADSCs can also improve the disc height, water content, ECM content, and structure of degenerated IVDs in vivo. Our new differentiation scheme has high efficiency in inducing NP-specific differentiation of ADSCs and is promising for stem cell-based treatment of degenerated IVDs.
Intervertebral disc(IVD) mainly consists of Annulus fibrosus(AF) and Nucleus pulposus(NP), playing a role of distributing a mechanical load on vertebral body. IVD tissue engineering has been developed the methods to achieve anatomic morphology and restoration of biological function. The goal of present study is to identify the possibilities for creating a substitute of IVD the morphology and biological functions are the same as undamaged complete IVD. To fabricate the AF and NP combine biphasic IVD tissue, AF tissue scaffolds have been printed by 3D bio-printing system with natural biomaterials and NP tissues have been prepared by scaffold-free culture system. We evaluated whether the combined structure of 3D printed AF scaffold and scaffold-free NP tissue construct could support the architecture and cell functions as IVD tissue. 3D printed AF scaffolds were printed with 60 degree angle stripe patterned lamella structure(the inner-diameter is 5mm, outer-diameter is 10 mm and height is 3 mm). In the cytotoxicity test, the 3D printed AF scaffold showed good cell compatibility. The results of histological and immunohistochemical staining also showed the newly synthesized collagens and glycosaminoglycans, which are specific makers of AF tissue. And scaffold-free NP tissue actively synthesized glycosaminoglycans and type 2 collagen, which are the major components of NP tissue. When we combined two engineered tissues to realize the IVD, combined biphasic tissues showed a good integration between the two tissues. In conclusion, this study describes the fabrication of Engineered biphasic IVD tissue by using enable techniques of tissue engineering. This fabricated biphasic tissue would be used as a model system for the study of the native IVD tissue. In the future, it may have the potential to replace the damaged IVD in the future.
Zhu, Lirong;Huang, Yangliang;Hu, Yuming;Tang, Qian;Zhong, Yi
The Korean Journal of Pain
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v.34
no.1
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pp.47-57
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2021
Background: Lumbar disc herniation (LDH) is a common cause of radicular pain, but the mechanism is not clear. In this study, we investigated the engagement of toll-like receptor 4 (TLR4) and the nuclear factor-kappa B (NF-κB) in radicular pain and its possible mechanisms. Methods: An LDH model was induced by autologous nucleus pulposus (NP) implantation, which was obtained from coccygeal vertebra, then relocated in the lumbar 4/5 spinal nerve roots of rats. Mechanical and thermal pain behaviors were assessed by using von Frey filaments and hotplate test respectively. The protein level of TLR4 and phosphorylated-p65 (p-p65) was evaluated by western blotting analysis and immunofluorescence staining. Spinal microglia activation was evaluated by immunofluorescence staining of specific relevant markers. The expression of proand anti-inflammatory cytokines in the spinal dorsal horn was measured by enzyme linked immunosorbent assay. Results: Spinal expression of TLR4 and p-NF-κB (p-p65) was significantly increased after NP implantation, lasting up to 14 days. TLR4 was mainly expressed in spinal microglia, but not astrocytes or neurons. TLR4 antagonist TAK242 decreased spinal expression of p-p65. TAK242 or NF-κB inhibitor pyrrolidinedithiocarbamic acid alleviated mechanical and thermal pain behaviors, inhibited spinal microglia activation, moderated spinal inflammatory response manifested by decreasing interleukin (IL)-1β, IL-6, tumor necrosis factor-α expression and increasing IL-10 expression in the spinal dorsal horn. Conclusions: The study revealed that TLR4/NF-κB pathway participated in radicular pain by encouraging spinal microglia activation and inflammatory response.
Kim, D.H.;Kim, S.H.;Heo, S.J.;Shin, J.W.;Kim, Y.J.;Park, S.H.;Jun, J.W.;Shin, J.W.
Journal of Biomedical Engineering Research
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v.29
no.2
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pp.159-163
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2008
The goal of this study is to investigate the effect and potential of three-dimensional Co-culture of BMSCs (bone marrow stromal Cells) and NP (nucleus pulposus) Cells on the differentiation of BMSCs into NP-like Cells. The NP Cells and BMSCs were isolated and cultured from New Zealand White rabbits. The isolated NP Cells and BMSCs were prepared in different alginate beads. Those two types of beads were separated by a track-etched membrane of $3\;{\mu}m$ pore in a 6-well culture plate. No growth factors were used. In addition to these, NP and BMSC were cultured in the beads independently for control. The number of Cells in Co-culturing system was half of those in two control groups. Proliferation and production of glycosaminoglycan (GAG) were evaluated along with histological observation. The GAG production rate(GAG contents/Cell) of Co-cultured BMSCs were much higher than that of BMSCs cultured alone. The total amounts of GAG produced by BMSCs in Co-culturing system were larger than those produced by BMSCs in control group and were comparable with those produced by NP alone even the number of each Cell was half of BMSCs in Co-culturing system. This study showed the potential of differentiation of BMSCs into NP-like Cells through three-dimensional Co-culture system even without any chemical agents.
Demineralized bone particle (DBP) has been used as one of the powerful inducers of bone and cartilage tissue specialization. In this study, we fabricated DBP/PLGA scaffold for tissue engineered disc regeneration. We manufactured dual-structured scaffold to compose inner cylinder and outer doughnut similar to nature disc tissue. The DBP/PLGA scaffold was characterized by porosity, wettability, and water uptake ability. We isolated and cultured nucleus pulposus (NP) and annulus fibrosus (AF) cells from rabbit intervertebral disc. We seeded NP cells into the inner core of the hybrid scaffold and AF cells into the outer portion of it. Cellular viability and proliferation were assayed by 3-(4,5-dimethylthiazole-2-yl) -2,5- diphenyltetrazolium -bromide (MTT) test. PLGA and PLGA/DBP scaffolds were implanted in subcutaneous of athymic nude mouse to observe the formation of disc-like tissue in vivo. And then we observed change of morphology and hematoxylin and eosin (H&E). Formation of disc-like tissue was better DBP/PLGA hybrid scaffold than control. Specially, we confirmed that scaffold impregnated 20 and 40% DBP affected to proliferation of disc cell and formation of disc-like tissue.
Objective : To explore the histological feature of the cervical disc degeneration in patients with degenerative ossification (DO) and its potential mechanisms. Methods : A total of 96 surgical segments, from cervical disc degenerative disease patients with surgical treatment, were divided into ossification group (group O, n=46) and non-ossification group (group NO, n=50) based on preoperative radiological exams. Samples of disc tissues and osteophytes were harvested during the decompression operation. The hematoxylin-eosin staining, Masson trichrome staining and Safranin O-fast green staining were used to compare the histological differences between the two groups. And the distribution and content of transforming growth factor (TGF)-β1, p-Smad2 and p-Smad3 between the two groups were compared by a semi-quantitative immunohistochemistry (IHC) method. Results : For all the disc tissues, the content of disc cells and collagen fibers decreased gradually from the outer annulus fibrosus (OAF) to the central nucleus pulposus (NP). Compared with group NO, the number of disc cells in group O increased significantly. But for proteoglycan in the inner annulus fibrosus (IAF) and NP, the content in group O decreased significantly. IHC analysis showed that TGF-β1, p-Smad2, and p-Smad3 were detected in all tissues. For group O, the content of TGF-β1 in the OAF and NP was significantly higher than that in group NO. For p-Smad2 in IAF and p-Smad3 in OAF, the content in group O were significantly higher than group NO. Conclusion : Histologically, cervical disc degeneration in patients with DO is more severe than that without DO. Local higher content of TGF-β1, p-Smad2, and p-Smad3 are involved in the disc degeneration with DO. Further studies with multi-approach analyses are needed to better understand the role of TGF-β/Smads signaling pathway in the disc degeneration with DO.
Oxidative stress-induced mitochondrial dysfunction is implicated in the pathogenesis of intervertebral disc degeneration (IVDD). Sirtuin 3 (SIRT3), a sirtuin family protein located in mitochondria, is essential for mitochondrial homeostasis; however, the role of SIRT3 in the process of IVDD has remained elusive. Here, we explored the expression of SIRT3 in IVDD in vivo and in vitro; we also explored the role of SIRT3 in senescence, apoptosis, and mitochondrial homeostasis under oxidative stress. We subsequently activated SIRT3 using honokiol to evaluate its therapeutic potential for IVDD. We assessed SIRT3 expression in degenerative nucleus pulposus (NP) tissues and oxidative stress-induced nucleus pulposus cells (NPCs). SIRT3 was knocked down by lentivirus and activated by honokiol to determine its role in oxidative stress-induced NPCs. The mechanism by which honokiol affected SIRT3 regulation was investigated in vitro, and the therapeutic potential of honokiol was assessed in vitro and in vivo. We found that the expression of SIRT3 decreased with IVDD, and SIRT3 knockdown reduced the tolerance of NPCs to oxidative stress. Honokiol ($10{\mu}M$) improved the viability of NPCs under oxidative stress and promoted their properties of anti-oxidation, mitochondrial dynamics and mitophagy in a SIRT3-dependent manner. Furthermore, honokiol activated SIRT3 through the AMPK-PGC-$1{\alpha}$ signaling pathway. Moreover, honokiol treatment ameliorated IVDD in rats. Our study indicated that SIRT3 is involved in IVDD and showed the potential of the SIRT3 agonist honokiol for the treatment of IVDD.
Because demineralized bone particle (DBP) contains various bioactive molecules such as cytokines, it is widely used biomaterials in the field of tissue engineering. In this study, we investigated the effect of 2-dimensional DBP/PLGA hybrid films on adhesion, proliferation and phenotype maintenance of intervertebral disc cells. PLGA films incorporated with different amount (0, 10, 20, 40 and 80 wt%) of DBP were prepared by the solvent evaporation method and characterized by scanning election microscopy (SEM). PLGA film has a flat and smooth surface. According to the increase of content of DBP, the surface of DBP/PLGA film exhibited few agglomerates and increased the roughness of the surface. Annulus fibrosus (AF) and nucleus pulposus (NP) cells were cultured on PLGA and DBP/PLGA film surface, and then examined the cell adhesion and proliferation by the cell count and SEM observation. The result of cell count and SEM observation revealed that 10 and 20% DBP in DBP/PLGA films were superior to adhesion and proliferation of both AF and NP cells. We confirmed that specific gene expression of disc cells on DBP/PLGA film based on the cell count result. Disc cells seeded on 20% DBP/PLGA film expressed the gene of type I and II collagen continuously. Therefore, pertinent content of biomaterials could provide more appropriate condition on adhesion and proliferation of cell. And this results may be used as a basic data for the intervertebral disc regeneration using tissue engineering.
Objective : Notochordal cells in the intervertebral disc interact with nucleus pulposus (NP) cells and support the maintenance of disc homeostasis by regulation of matrix production. However, the influence of notochordal cells has not been evaluated in the annulus fibrosus (AF), which is the primary pain generator in the disc. We hypothesized that the notochordal cell has the capacity to modulate inflammatory mediators secreted by AF cells secondary to stimulation. Methods : Notochordal and AF cells were isolated from adult New Zealand white rabbits. AF pellets were cultured with notochordal cell clusters or in notochordal cell-conditioned media (NCCM) for 24 or 48 hours with proinflammatory cytokines at varying concentrations. Gene expression in AF pellets were assayed for nitric oxide synthase (iNOS), cyclo-oxygenase (COX)-2, and interleukin (IL)-6 by real time reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR). Results : AF pellet in NCCM significantly decreased the iNOS and COX-2 messenger ribonucleic acid (mRNA) levels compared to AF pellets alone and AF pellets with notochordal cells (p < 0.05). AF pellet resulted in dose-dependent iNOS and COX-2 expression in response to IL-$1{\beta}$, stimulation, demonstrating that 1 ng/ml for 24 hours yielded a maximal response. AF pellet in NCCM significantly decreased the expression of iNOS and COX-2 in response to 1ng/ml IL-$1{\beta}$, stimulation at 24 hours (p < 0.05). There was no difference in IL-6 expression compared to AF pellets alone or AF pellets with notochordal cell clusters. Conclusion : We conclude that soluble factors from notochordal cells mitigate the gene expression of inflammatory mediators in stimulated AF, as expected after annular injury, suggesting that notochordal cells could serve as a novel therapeutic approach in symptomatic disc development.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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