Neuromesodermal progenitors (NMPs) constitute a bipotent cell population that generates a wide variety of trunk cell and tissue types during embryonic development. Derivatives of NMPs include both mesodermal lineage cells such as muscles and vertebral bones, and neural lineage cells such as neural crests and central nervous system neurons. Such diverse lineage potential combined with a limited capacity for self-renewal, which persists during axial elongation, demonstrates that NMPs are a major source of trunk tissues. This review describes the identification and characterization of NMPs across multiple species. We also discuss key cellular and molecular steps for generating neural and mesodermal cells for building up the elongating trunk tissue.
Johnson, Madeleine A.;Ables, Jessica L.;Eisch, Amelia J.
BMB Reports
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제42권5호
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pp.245-259
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2009
The process by which adult neural stem cells generate new and functionally integrated neurons in the adult mammalian brain has been intensely studied, but much more remains to be discovered. It is known that neural progenitors progress through distinct stages to become mature neurons, and this progression is tightly controlled by cell-cell interactions and signals in the neurogenic niche. However, less is known about the cell-intrinsic signaling required for proper progression through stages of adult neurogenesis. Techniques have recently been developed to manipulate genes specifically in adult neural stem cells and progenitors in vivo, such as the use of inducible transgenic mice and viral-mediated gene transduction. A critical mass of publications utilizing these techniques has been reached, making it timely to review which molecules are now known to play a cell-intrinsic role in regulating adult neurogenesis in vivo. By drawing attention to these isolated molecules (e.g. Notch), we hope to stimulate a broad effort to understand the complex and compelling cascades of intrinsic signaling molecules important to adult neurogenesis. Understanding this process opens the possibility of understanding brain functions subserved by neurogenesis, such as memory, and also of harnessing neural stem cells for repair of the diseased and injured brain.
Doublecortin (DCX) is a microtuble-associated protein that is required for the migration of immature neuroblasts within the chick and mammalian brain. Although it is generally thought that DCX is expressed only in the neuroblasts, some mature neurons maintain DCX expression; for example, horizontal cells in adult rat retina. In this study, we demonstrate that retinal neural progenitors in the early embryonic stage of the chick also expressed DCX, as do developing ganglion cells and horizontal cells in later stages of development. These findings raise the possibility of a role for DCX in retinal neural progenitors, before they become specialized into neuroblasts in the chick.
We have already known, neural progenitor cells exist not only in the developing brain, but in certain spots in adult CNS in mammals, so it will be of great value to find out some compounds which can interfere these cells proliferation ability. In this research, we observed that ginsenoside $Rg_1$ can not only enhance neural progenitors' proliferation ability in vitro, but increase neurogenesis in adult mouse dentate gyrus in vivo. Firstly, we set up neural progenitor cells' culture system from embryonic rats' hippocampus and prove their feature through immunocytochemistry. Then by using MTT assay, we found that when growing with ginsenoside $Rg_1(0.5\~2.5{\mu}mol/l)$, the progenitor cells' survival rate nearly doubled, furthermore, we proved that this increase was due to the increment of cell proliferation through $^3H-thimidine$ incorporation assay, hence, we drew the first conclusion: ginsenoside Rg1 has the ability to stimulate neural progenitor cells' proliferation in vitro; in order to observe this compound's effect in vivo, we devised the following experiment: after administering ginsenoside Rg1 (5, 10 mg/kg, once a day) intraperitoneally for two weeks, we examine the number of BrdU positive cells in the dentate gyrus of mice, and found that Rg1 could increase the number of proliferation cells significantly in vivo. From these studies, we are quite sure about Rg1's effects on the proliferation ability of neural progenitor cells both in vitro and in vivo, certain targets of the compound and its underlying mechanisms are in progress.
Jo Hyeon-Jeong;Kim Eun-Yeong;Choe Gyeong-Hui;An So-Yeon;Park Se-Pil;Im Jin-Ho
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2002년도 춘계학술발표대회 발표논문초록집
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pp.84-84
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2002
This study was to investigate generation of the specific neuronal cell in vitro from the neural progenitors derived from human embryonic stem (hES, MB03) cells. For the neural progenitor cell formation, we produced embryoid bodies (EB: for 5 days, without mitogen) from hES cells and then neurospheres (for 7-10 days, 20 ng/㎖ of bFGF added N2 medium) from EB. And then for the differentiation into neuronal cells, neural progenitor cells were cultured in N2 medium (without bFGF) supplemented with brain derived neurotrophic factor (BDNF, 5 ng/㎖) or platelet derived growth factor-bb (pDGF-bb, 20ng/㎖) for 2 weeks. (omitted)
The early steps of neural development in the vertebrate embryo are regulated by sets of transcription factors that control the induction of proliferative, pluripotent neural precursors, the expansion of neural plate stem cells, and their transition to differentiating neural progenitors. These early events are critical for producing a pool of multipotent cells capable of giving rise to the multitude of neurons and glia that form the central nervous system. In this review we summarize findings from gain- and loss-of-function studies in embryos that detail the gene regulatory network responsible for these early events. We discuss whether this information is likely to be similar in mammalian embryonic and induced pluripotent stem cells that are cultured according to protocols designed to produce neurons. The similarities and differences between the embryo and stem cells may provide important guidance to stem cell protocols designed to create immature neural cells for therapeutic uses.
Repair mechanisms in the postnatal and mature central nervous system(CNS) have long been thought to be very limited. However recent works have shown that the mature CSN contains neural progenitors, precursors, and stem cells that are capable of generating new neurons, astrocytes, and oligodendrocytes especially in germinative areas such as the subventricular zone of the lateral ventricles, the dentate gyrus of the hippocampus. These findings raise the possibilities for the development of novel neural repair strategies via mobilization and replacement for dying neurons of neural stem cells in situ. Indeed recent reports have provided evidences that endogenous stem cells are activated in response to various injuries, and in some injury models, limited neuronal replacement occurs in the CNS. Here, current understandings for endogenous neurogenesis and induction neurogeneis in postnatal CNS including neonatal brain are summarized and discussed.
The expansion and folding of the cerebral cortex occur during brain development and are critical factors that influence cognitive ability and sensorimotor skills. The disruption of cortical growth and folding may cause neurological disorders, resulting in severe intellectual disability and intractable epilepsy in humans. Therefore, understanding the mechanism that regulates cortical growth and folding will be crucial in deciphering the key steps of brain development and finding new therapeutic targets for the congenital anomalies of the cerebral cortex. This review will start with a brief introduction describing the anatomy of the brain cortex, followed by a description of our understanding of the proliferation, differentiation, and migration of neural progenitors and important genes and molecules that are involved in these processes. Finally, various types of disorders that develop due to malformation of the cerebral cortex will be discussed.
The zebrafish (Danio rerio) is now the pre-eminent vertebrate model system for clarification of the roles of specific genes and signaling pathways in development. I will talk about positional cloning of two developmental mutants in zebrafish. The first mutant is headless: The vertebrate organizer can induce a complete body axis when transplanted to the ventral side of a host embryo by virtue of its distinct head and trunk inducing properties. Wingless/Wntantagonists secreted by the organizer have been identified as head inducers. Their ectopic expression can promote head formation, whereas ectopic activation of Wnt signalling during early gastrulation blocks head formation. These observations suggest that the ability of head inducers to inhibit Wntsignalling during formation of anterior structures is what distinguishes them from trunk inducers that permit the operation of posteriorizing Wnt signals. I describe the zebrafish headless (hdl) mutant and show that its severe head defects are due to a mutation in T-cell factor-3 (Tcf3), a member of the Tcf/Lef family. Loss of Tcf3 function in the hdl mutant reveals that hdl represses Wnt target genes. I provide genetic evidence that a component of the Wntsignalling pathway is essential in vertebrate head formation and patterning. Second mutant is mind bomb: Lateral inhibition, mediated by Notch signaling, leads to the selection of cells that are permitted to become neurons within domains defined by proneuralgene expression. Reduced lateral inhibition in zebrafish mib mutant embryos permits too many neural progenitors to differentiate as neurons. Positional cloning of mib revealed that it is a gene in the Notch pathway that encodes a RING ubiquitin ligase. Mib interacts with the intracellular domain of Delta to promote its ubiquitylation and internalization. Cell transplantation studies suggest that mib function is essential in the signaling cell for efficient activation of Notch in neighboring cells. (중략)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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