The results of this study confirm that the availability of hemin influences the expression of selected membrane proteins of Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia, and Prevotella nigrescens. A 30 kDa (heated 24 kDa) hemin-binding protein whose expression is hemin regulated was identified and purified in P. gingivalis. A strong hemin-binding function was found by LDS-PAGE and TMBZ staining when P. gingivalis cells were grown under hemin-limited conditions. A 50 kDa cell envelope associated protein, whose expression is hemin regulated, is considered to be a putative hemin binding protein from P. intermedia and P. nigrescens, respectively. N-terminal amino acid sequence analysis of CNBr-digested 24 kDa hemin binding protein from P. gingivalis revealed that this protein belongs to a new, so far undescribed hemin-binding class of proteins. N-terminal amino acid sequence of a 50 kDa putative hemin binding protein from P. intermedia was identical with Enolase from Streptococcus intermedia. Work is in progress to further characterize the molecular structure of these proteins.
본 연구는 우유의 angiogenin(ANG) 생리활성기능을 조사하기 위한 전단계로 ANG 정제 방법을 확립하기 위하여 실시하였다. 우유로부터 ANG을 CM-Sepharose ion exchange chromatography, HPLC, Gel-filtration의 3단계 방법을 이용하여 정제하였다. 1단계인 CM-Sepharose ion exchange chromatography를 수행 한 결과 0.6 M NaCl 농도의 36번 분획에서 ANG의 밴드를 볼 수 있었고 2단계인 Mono-S 컬럼을 이용하여 HPLC를 수행한 결과에서는 1.0 M에서 하나의 peak가 분리되었고 전기영동 결과는 LF와 ANG 두 가지 성분이 함유되어 있음을 확인하였다. 마지막 단계인 Gel-filtration을 수행한 결과 ANG이 단일 밴드로 분리되었다. 우유 10 $\ell$로부터 약 80 ${\mu}\ell$의 ANG를 얻었고 정제된 ANG을 N-말단 아미노산 배열을 분석한 결과 AQDDYRYIHFLTQHY로 밝혀졌다.
A novel lectin specific to N-acetyl-D-galactosamine as well as N-acetyl-D-glucosamine was isolated from Bryopsis plumosa and named as BPL-4. Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophorese (SDS-PAGE) and matrix-assisted laser desorption / ionization-time of flight (MALDI-TOF) mass spectrometry data showed that this lectin was a monomeric protein with molecular weight 12.9 kDa. The N-terminal amino acid sequences of the lectin were determined by Edman degradation and the full cDNA sequence encoding this lectin was obtained using the degenerate primers designed from the amino acid sequence. The size of the cDNA was 414 bp containing single open reading frame (ORF) encoding the lectin precursor. The homology analysis showed that this lectin might belong to H lectin group. BPL-4 showed high sequence similarity (60.6%) to BPL-3, which is a previously reported lectin from the same species. The comparative analysis on the lectin's primary structure showed two conserved domains including one possible active domain of H lectin group.
Cloning and characterization of the gene encoding a solvent-tolerant protease from the haloalkaliphilic bacterium Geomicrobium sp. EMB2 are described. Primers designed based on the N-terminal amino acid sequence of the purified EMB2 protease helped in the amplification of a 1,505-bp open reading frame that had a coding potential of a 42.7-kDa polypeptide. The deduced EMB2 protein contained a 35.4-kDa mature protein of 311 residues, with a high proportion of acidic amino acid residues. Phylogenetic analysis placed the EMB2 gene close to a known serine protease from Bacillus clausii KSM-K16. Primary sequence analysis indicated a hydrophobic inclination of the protein; and the 3D structure modeling elucidated a relatively higher percentage of small (glycine, alanine, and valine) and borderline (serine and threonine) hydrophobic residues on its surface. The structure analysis also highlighted enrichment of acidic residues at the cost of basic residues. The study indicated that solvent and salt stabilities in Geomicrobium sp. protease may be accorded to different structural features; that is, the presence of a number of small hydrophobic amino acid residues on the surface and a higher content of acidic amino acid residues, respectively.
단일 탄소원 및 에너지원으로 benzoate를 이용하는 Acinetobacter sp. KS-1에서 분리 정제한 catechol 1,2-dioxygenase (Cl,2O)의 특성과 아미노산 서 열을 분석하였다. Cl,2O는 catechol과 4-methylcatechol에 대해서 효소활성을 나타내었으며, 활성 최적온도는 $35^{\circ}C$이고, 활성 최적 pH는 7.5-9.0의 범위 내에 있었다. 효소활성 저해제로서 은, 수은, 그리고 구리는 Acinetobacter sp. KS-1의 Cl,2O 활성을 억제하였다. SDS-PAGE에 의해 측정된 Cl,2O의 분자량은 약 36 kDa 였으며, N-말단 아미노산 서 열을 분석한 결과, $^{1}MNYQQIDALVKQMNVDTAKG^{20}$로 Acinetobacter radioresistens의 Cl,2O와 95%의 유사성을 보여주었다. In-gel 아미노산 서열 분석을 위하여 trypsin 처리와 peptide mapping을 실시하였다. MALDI-TOF를 이용하여 trypsin으로 처리된 세 개의 peptide flagmen써 분자량을 분석한 결과 966.3 Da, 2081.7 Da, 그리고 1933.8 Da으로 각각 나타났는데, 이는 A. radioresistens의 Cl,2O와 내부 서 열$^{1}SQSDFNLRR^{9}\, ^{1}HGNRPSHVHYFNSAPGYR^{18}\, ^{1}TIEGPLYVAGAPESVGFAR^{19}$ 이 일치하는 것으로 분석되었다. N-말단 서열과 내부 서열을 바탕으로 primer를 제작하여 polymerase chain reaction을 실시하였다.
Thymopoietin(TP) was originally isolated from bovine thymic extracts on the basis of its ability to affect neuromuscular transmission when injected into mice (Goldstein, 1974). A 49 amino acid polypeptide was isolated and sequenced (Schlesinger and Goldstein, 1975). It is now evident that this molecule was created by proteolytic cleavage of larger thymopoietin proteins during isolation, and represents the N-terminal sequence of these proteins. Nevertheless, this proteolytic fragment was active in both neurophysiological and immunological experiments, and enabled the identification of an active pentapeptide. (amino acids 32 to 36, Arg-Lys-Asp-Val-Tyr, thymopentin), which. has been studied as an immunomodulatory drug.
Background: This study was aimed to differentiate two forms of CTLA-4 (CD152) in activated peripheral blood lymphocyte and clarify the mechanism how cytoplasmic form of this molecule is targeted to cell surface. Methods: For this purpose we generated 2 different anti-human CD152 peptide antibodies and 5 different N'-terminal deletion mutant CTLA4Ig fusion proteins and carried out a series of Western blot and ELISA analyses. Antipeptide antibodies made in this study were anti-CTLA4pB and anti-CTLA4pN. The former recognized a region on extracellular single V-like domain and the latter recognized N'-terminal sequence of leader domain of human CD152. Results: In Western blot, the former antibody recognized recombinant human CTLA4Ig fusion protein as an antigen. And this recognition was completely blocked by preincubating antipeptide antibody with the peptide used for the antibody generation at the peptide concentration of 200 ug/ml. These antibodies were recognized human CD152 as a cytoplasmic sequestered- and a membrane bound- forms in phytohemagglutinin (PHA)-stimulated peripheral blood lymphocyte (PBL). These two forms of CD152 were further differentiated by using anti-CTLA4pN and anti-CTLA4pB antibodies such that former recognized cytosolic form only while latter recognized both cytoplasmic- and membraneforms of this molecule. Furthermore, in a transfection expression study of 5 different N'-terminal deletion mutant CTLA4Ig, mutated proteins were secreted out from transfected cell surface only when more than 6 amino acids from N'-terminal were deleted. Conclusion: Our results implies that cytosolic form of CTLA-4 has leader sequence while membrane form of this molecule does not. And also suggested is that at least N'-terminal 6 amino acid residues of human CTLA-4 are required for regulation of targeting this molecule from cytosolic- to membrane- area of activated human peripheral blood T lymphocyte.
Kim, Ju-Han;Kyung, Do-Hyun;Yun, Hyung-Don;Cho, Byung-Kwan;Kim, Byung-Gee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권11호
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pp.1832-1836
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2006
Mesorhizobium sp. LUK, which utilizes 3-amino-3-phenylpropionic acid as the sole source of nitrogen with high enantioselectivity (E(S)>100), was isolated using enrichment culture. The enzyme involved in the utilization of (S)-3-amino-3-phenylpropionic acid was confirmed to be a transaminase and was purified by 235-folds with a specific activity of 0.72 U/mg. The molecular weight of the purified protein was ca. 47 kDa and the active enzyme was determined as a dimer on gel filtration chromatography. The N-terminal sequence was obtained from the purified protein. Spontaneous decarboxylation of produced ${\beta}-keto$ acids was observed during the chiral resolution of 3-amino-3-phenylpropionic acid.
Park, Doo-Sang;Oh, Hyun-Woo;Heo, Sun-Yeon;Jeong, Won-Jin;Shin, Dong-Ha;Bae, Kyung-Sook;Park, Ho-Yong
Journal of Microbiology
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제45권5호
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pp.409-417
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2007
Burkholderia sp. HY-10 isolated from the digestive tracts of the longicorn beetle, Prionus insularis, produced an extracellular lipase with a molecular weight of 33.5 kDa estimated by SDS-PAGE. The lipase was purified from the culture supernatant to near electrophoretic homogenity by a one-step adsorption-desorption procedure using a polypropylene matrix followed by a concentration step. The purified lipase exhibited highest activities at pH 8.5 and $60^{\circ}C$. A broad range of lipase substrates, from $C_4\;to\;C_{18}$ p-nitrophenyl esters, were hydrolyzed efficiently by the lipase. The most efficient substrate was p-nitrophenyl caproate ($C_6$). A 2485 bp DNA fragment was isolated by PCR amplification and chromosomal walking which encoded two polypeptides of 364 and 346 amino acids, identified as a lipase and a lipase foldase, respectively. The N-terminal amino acid sequence of the purified lipase and nucleotide sequence analysis predicted that the precursor lipase was proteolytically modified through the secretion step and produced a catalytically active 33.5 kDa protein. The deduced amino acid sequence for the lipase shared extensive similarity with those of the lipase family 1.2 of lipases from other bacteria. The deduced amino acid sequence contained two Cystein residues forming a disulfide bond in the molecule and three, well-conserved amino acid residues, $Ser^{131},\;His^{330},\;and\;Asp^{308}$, which composed the catalytic triad of the enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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