The prokaryotic molecular chaperone Hsp33 achieves its holdase activity upon response to oxidative stress particularly at elevated temperature. Despite many structural studies of Hsp33, which were conducted mainly by X-ray crystallography, the actual structures of the Hsp33 in solution remains controversial. Thus, we have initiated NMR study of the reduced, inactive Hsp33 monomer and backbone NMR assignments were obtained in the present study. Based on a series of triple resonance spectra measured on a triply isotope-[$^2H/^{13}C/^{15}N$]-labeled protein, sequence-specific assignments of the backbone amide signals observed in the 2D-[$^1H/^{15}N$]TROSY spectrum could be completed up to more than 96%. However, even considering the small portion of non-assigned resonances due to the lack of sequential connectivity, we confirmed that the total number of observed signals was quite smaller than that expected from the number of amino acid residues in Hsp33. Thus, it is postulated that peculiar dynamic properties would be involved in the solution structure of the inactive Hsp33 monomer. We expect that the present assignment data would eventually provide the most fundamental and important data for the progressing studies on the 3-dimensional structure and molecular dynamics of Hsp33, which are critical for understanding its activation process.
The 90-kDa heat shock protein (HSP90) normally functions as a molecular chaperone participating in folding and stabilizing newly synthesized proteins, and refolding denatured proteins. The HSP90 inhibitor geldanamycin (GA) occupies the ATP/ADP binding pocket of HSP90 so inhibits its chaperone activity and causes subsequent degradation of HSP90 client proteins by proteasomes. Here we show that GA reduces the level of endogenous c-Jun in human embryonic kidney 293 (HEK293) cells in a time and dose dependent manner, and that this decrease can be reversed by transfection of HSP90 plasmids. Transfection of HSP90 plasmids in the absence of GA increases the level of endogenous c-Jun protein, but has no obvious affect on c-Jun mRNA levels. We also showed that HSP90 prolongs the half-life of c-Jun by stabilizing the protein; the proteasome inhibitor N-benzoyloxycarbonyl (Z)-Leu-Leu-leucinal (MG132) blocks the degradation of c-Jun promoted by GA. Transfection of HSP90 plasmids did not obviously alter phosphorylation of c-Jun, and a Jun-2 luciferase activity assay indicated that over-expression of HSP90 elevated the total protein activity of c-Jun in HEK293 cells. All our evidence indicates that HSP90 stabilizes c-Jun protein, and so increases the total activity of c-Jun in HEK293 cells.
The eukaryotic genome forms a chromatin structure that contains repeating nucleosome structures. Nucleosome packaging is regulated by chromatin remodeling factors such as histone chaperones. The Saccharomyces cerevisiae H3/H4 histone chaperones, CAF-1 and Asf1, regulate DNA replication and chromatin assembly. CAF-1 function is largely restricted to non-transcriptional processes in heterochromatin, whereas Asf1 regulates transcription together with another H3/H4 chaperone, HIR. This study examined the role of the yeast H3/H4 histone chaperones, Asf1, HIR, and CAF-1 in chromatin dynamics during transcription. Unexpectedly, CAF-1 was recruited to the actively transcribed region in a similar way to HIR and Asf1. In addition, the three histone chaperones genetically interacted with Set2-dependent H3 K36 methylation. Similar to histone chaperones, Set2 was required for tolerance to excess histone H3 but not to excess H2A, suggesting that CAF-1, Asf1, HIR, and Set2 function in a related pathway and target chromatin during transcription.
Caffeine has both positive and negative effects on physiological functions in a dose-dependent manner. C. elegans has been used as an animal model to investigate the effects of caffeine on development. Caffeine treatment at a high dose (30 mM) showed detrimental effects and caused early larval arrest. We performed a comparative proteomic analysis to investigate the mode of action of high-dose caffeine treatment in C. elegans and found that the stress response proteins, heat shock protein (HSP)-4 (endoplasmic reticulum [ER] chaperone), HSP-6 (mitochondrial chaperone), and HSP-16 (cytosolic chaperone), were induced and their expression was regulated at the transcriptional level. These findings suggest that high-dose caffeine intake causes a strong stress response and activates all three stress-response pathways in the worms, including the ER-, mitochondrial-, and cytosolic pathways. RNA interference of each hsp gene or in triple combination retarded growth. In addition, caffeine treatment stimulated a food-avoidance behavior (aversion phenotype), which was enhanced by RNAi depletion of the hsp-4 gene. Therefore, up-regulation of hsp genes after caffeine treatment appeared to be the major responses to alleviate stress and protect against developmental arrest.
The human $B_{12}$ trafficking chaperone hCblC is well conserved in mammals and non-mammalian eukaryotes. However, the C-terminal ~40 amino acids of hCblC vary significantly and are predicted to be deleted by alternative splicing of the encoding gene. In this study, we examined the thermostability of the bovine CblC truncated at the C-terminal variable region (t-bCblC) and its regulation by glutathione. t-bCblC is highly thermolabile ($T_m={\sim}42^{\circ}C$) similar to the full-length protein (f-bCblC). However, t-bCblC is stabilized to a greater extent than f-bCblC by binding of reduced glutathione (GSH) with increased sensitivity to GSH. In addition, binding of oxidized glutathione (GSSG) destabilizes t-bCblC to a greater extent and with increased sensitivity as compared to f-bCblC. These results indicate that t-bCblC is a more sensitive form to be regulated by glutathione than the full-length form of the protein.
${\alpha}B$-crystallin (${\alpha}BC$) is a member of a small heat-shock protein (sHSP) superfamily and plays a predominant role in cellular protein homeostasis network by rescuing misfolded proteins from irreversible aggregation. ${\alpha}BC$ assembles into dynamic and polydisperse high molecular weight complexes containing 12 to 48 monomers; this variable stereochemistry of ${\alpha}BC$ has been linked to quaternary subunit exchange and its chaperone activity. The chaperone activity of ${\alpha}BC$ poses great potential as therapeutic agents for various neurodegenerative diseases. In this mini-review, we briefly outline the recent advancement in structural characterization of ${\alpha}BCs$ and its potential role to inhibit protein misfolding and aggregation in various human diseases. In particular, nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy and its complimentary techniques have contributed much to elucidate highly-dynamic nature of ${\alpha}BCs$, among which notable advancements are discussed in detail. We highlight the importance of resolving the structural details of various ${\alpha}BC$ oligomers, their quaternary dynamics, and structural heterogeneity.
벼의 엽록체 small HSP의 고온 스트레스 하에서의 기능을 밝히기 위하여 Oshsp21 cDNA를 pET 발현 vector에 도입하였다. 형질전환된 대장균 배양액에 IPTG를 첨가하여 단백질 발현을 유도시킨 다음 고온 stress 하에서의 생존율을 대조구와 비교하였다. 그 결과 대조균주의 경우 $50^{\circ}C$에서의 생존율이 크게 감소하였으나 Oshsp21이 발현된 대장균의 경우 70% 이상의 생존율을 나타내었다. 또한 대장균 단백질을 $55^{\circ}C$에서 30분간 열처리한 후, 대장균 단백질을 가용성과 비가용성 단백질로 분획한 다음, 각각의 비율을 조사한 결과, 대조균주의 경우 총 단백질의 약 60%가 비가용성 단백질로 변성되었으나, Oshsp21을 발현시킨 대장균의 경우 총 단백질의 약 35%만이 비가용성 단백질로 나타났다. 이러한 결과는 벼의 엽록체 small HSP는 세포내에서 분자 chaperone으로 기능하여 고온내성을 부여할 수 있음을 나타낸다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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