Radioprotective effects of amentoflavone were investigated by examining cell viability, apoptosis, cell cycling concentrations of intracellular ROS (reactive oxygen species), and relative mitochondrial mass by flow cytometry after $^{60}Co$ irradiation. Pretreatment with amentoflavone 24 hours prior to 8 Gy $^{60}Co$${\gamma}$-ray irradiation significantly inhibited apoptosis, promoted the G2 phase, decreased the concentration of ROS and mitochondrial mass. These results collectively indicate that amentoflavone is an effective radioprotective agent.
Background: To evaluate the effects of bufalin in A549 human lung adenocarcinoma epithelial cells in vitro and assess the underlying mechanisms. Materials and Methods: Human A549 non-small cell lung cancer (NSCLC) cells were treated with various concentrations of bufalin. Cell proliferation was measured by CCK-8 assay, apoptotic cell percentage was calculated by flow cytometry and morphological change was observed by inverted phase contrast microscopy/transmission electron microscopy. In addition, the membrane potential of mitochondria was detected by JC-1 fluorescence microscopy assay, and the related protein expression of cytochrome C and caspase-3 was analyzed by Western blotting. Results: Bufalin could inhibit the proliferation of A549 cells via induction of apoptosis, with the evidence of characteristic morphological changes in the nucleus and mitochondria. Furthermore, bufalin decreased the mitochondrial membrane potential with up-regulation of cytochrome C in the cytosol, and activation of caspase-3. Conclusions: Bufalin inhibits the proliferation of A549 cells and triggers mitochondria-dependent apoptosis, pointing to therapeutic application for NSCLC.
Apoptotic cell death, characterized by DNA fragmentation and morphological changes, has previously been shown to occur in vascular endothelial cells cultured with hydrogen peroxide. The present study examined the induction of apoptosis by hydrogen peroxide and whether pyruvate, a key glycolytic intermediate and $\alpha$-keto-monocarboxylate, can inhibit the apoptotic effects in bovine pulmonary artery endothelial cells(BPAECs). Culture with 500uM hydrogen peroxide resulted in 30% cell death and induced morphological changes and DNA fragmentation. Cell injury was inhibited by the treatment with pyruvate. Pyruvate(0.1-5.0mM), and cell viability increased in a dose-dependent manner. In the presence of pyruvate(10~20mM), the viability was improved to over 95%. In contrast, treatment with lactate, a reduced form of phyuvate, did not protect against cell death oxidative stress-induced loss of viability and apoptosis was examined with $\alpha$-cyano-3-hydroxycinnarmate(COHC) as a selective mitochondrial monocarboxylate transport blocker. Incubation with COHC(500uM) did not significantly affect cell viability in the presence of hydrogen peroxide. The cytoprotection by pyruvate(3mM)against hydrogen peroxide stress was abolished by COHC. This indicates that the cytoprotection by pyruvate against oxidative stress in endothelial cells is mediated, at least in part, by mitochondrial pyruvate uptake and hence endothelial enerygetics. However, cytosolic mechanisms related, at least in part, by mitochondrial pyruvate uptake and hence endothelial energetics. However, cytosolic mechanisms related to the glutathione system may also contribute. The results suggest that pyruvate has therapeutic potential in the treatment of oxidative stress-induced cytotoxicity associated with increased apoptosis.
We investigate the correlation between the glycosylation modified prion proteins and apoptosis. The wild-type PRNP gene and four PRNP gene glycosylated mutants were transiently expressed in HeLa cells. The effect of apoptosis induced by PrP mutants was confirmed by MTT assay, Hochest staining, Annexin-V staining and PI staining. ROS test detected ROS generation within the cells. The mitochondrial membrane potential was analyzed by the flow cytometry. The expression levels of Bcl-xL, Bax, cleaved Caspase-9 proteins were analyzed by Western Blot. The results indicated that the expressed non-glycosylated PrP in HeLa cells obviously induced apoptosis, inhibited the growth of cells and reduced the mitochondrial membrane potential, and more ROS generation and low levels of the apoptosis-related proteins Bcl-xL, the activated the cleaved Caspase-9 proteins were found. The apoptosis induced by non-glycosylated PrP demonstrates that its underlying mechanism correlates with the mitochondria-mediated signal transduction pathway.
Degradation of glucose is aberrantly increased in hyperglycemia, which causes various harmful effects on the liver. Methylglyoxal is produced during glucose degradation and the levels of methylglyoxal are increased in diabetes patients. In this study we investigated whether methylglyoxal induces mitochondrial impairment and apoptosis in HepG2 cells and induces liver toxicity in vivo. Methylglyoxal caused apoptotic cell death in HepG2 cells. Moreover, methylglyoxal significantly promoted the production of reactive oxygen species (ROS) and depleted glutathione (GSH) content. Pretreatment with antioxidants caused a marked decrease in methylglyoxal-induced apoptosis, indicating that oxidant species are involved in the apoptotic process. Methylglyoxal treatment induced mitochondrial permeability transition, which represents mitochondrial impairment. However, pretreatment with cyclosporin A, an inhibitor of the formation of the permeability transition pore, partially inhibited methylglyoxal-induced cell death. Furthermore, acute treatment of mice with methylglyoxal increased the plasma levels of alanine aminotransferase (ALT) and aspartate aminotransferase (AST), indicating liver toxicity. Collectively, our results showed that methylglyoxal increases cell death and induces liver toxicity, which results from ROS-mediated mitochondrial dysfunction and oxidative stress.
Cordyceps militaris is well known as a traditional medicinal mushroom and has been shown to exhibit immunostimulatory and anticancer activities. In this study, we investigated the apoptosis induced by an aqueous extract of C. militaris (AECM) via the activation of caspases and altered mitochondrial membrane permeability in human breast cancer MDA-MB-231 cells. Exposure to AECM induced apoptosis, as demonstrated by a quantitative analysis of nuclear morphological change and a flow cytometric analysis. AECM increased hyperpolarization of mitochondrial membrane potential and promoted the activation of caspases. Both the cytotoxic effect and apoptotic characteristics induced by AECM treatment were significantly inhibited by z-DEVD-fmk, a caspase-3 inhibitor, which demonstrates the important role of caspase-3 in the observed cytotoxic effect. AECM-induced apoptosis was associated with the inhibition of Akt activation in a time-dependent manner, and pretreatment with LY294002, a PI3K/Akt inhibitor, significantly increased AECM-induced apoptosis. The results indicated that AECM-induced apoptosis may relate to the activation of caspase-3 and mitochondria dysfunctions that correlate with the inactivation of Akt.
To investigate the effects of Trichosanthes semen extract on the growth and apoptosis of human uterine cervical carcinoma cells. Effects of Trichosanthes semen extract on the growth of ME-180 cells were assayed by MTT assay. Apoptosis induced by Trichosanthes semen extract was detected by fluorescent microscopy, DNA fragmentation analysis and flow cytometry. Caspase-3 and caspase-8 activities were assayed. Trichosanthes semen extract induced ME-180 cells to die in a dose- and time-dependent manner. ME-180 cells treated with Trichosanthes semen extract exhibited typical characteristics of apoptosis. The population of Sub-G1 cells increased significantly, and the cells represented the reduced size, condensed chromatin and apoptotic bodies. They showed the decreased mitochondrial membrane potential and increased activities of caspase-3 and caspase-8. The results suggest that Trichosanthes semen extract induced ME-180 cell apoptosis and the activation of caspase and mitochondrial pathway were involved in the process of Trichosanthes semen extract-induced apoptosis.
We have previously shown that 2,4,3',5'-tetramethoxystilbene (TMS), a trans-stilbene analogue, induces apoptosis in human cancer cells. However, the detailed mechanisms of mitochondria-dependent apoptosis induced by TMS are not fully understood. In the present study, the possible roles of annexin A5 in TMS-mediated apoptosis were investigated in MCF7 human breast cancer cells. Quantitative real-time PCR analysis and Western blot analysis showed that the expression of annexin A5 was strongly increased in TMS-treated cells. TMS caused a strong translocation of annexin A5 from cytosol into mitochondria. Confocal laser scanning microscopic analysis clearly showed that TMS induced translocation of annexin A5 into mitochondria. TMS increased the expression and oligomerization of voltage-dependent anion channel (VDAC) 1, which may promote mitochondria-dependent apoptosis through disruption of mitochondrial membrane potential. When cells were treated with TMS, the levels of Bax, and Bak as well as annexin A5 were strongly enhanced. Moreover, we found that the cytosolic release of apoptogenic factors such as cytochrome c, or apoptosis-inducing factor (AIF) in mitochondria was markedly increased. Annexin A5 depletion by siRNA led to decreased proapoptotic factors such as Bax, Bak, and annexin A5. Taken together, our results indicate that annexin A5 may play an important role in TMS-mediated mitochondrial apoptosis through the regulation of proapoptotic proteins and VDAC1 expression.
Shakya, Rajina;Park, Gyu Hwan;Joo, Sang Hoon;Shim, Jung-Hyun;Choi, Joon-Seok
Biomolecules & Therapeutics
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제30권6호
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pp.585-592
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2022
Treatment of triple-negative breast cancer (TNBC) has been limited due to the lack of molecular targets. In this study, we evaluated the cytotoxicity of hydroxyzine, a histamine H1 receptor antagonist in human triple-negative breast cancer BT-20 and HCC-70 cells. Hydroxyzine inhibited the growth of cells in dose- and time-dependent manners. The annexin V/propidium iodide double staining assay showed that hydroxyzine induced apoptosis. The hydroxyzine-induced apoptosis was accompanied down-regulation of cyclins and CDKs, as well as the generation of reactive oxygen species (ROS) without cell cycle arrest. The effect of hydroxyzine on the induction of ROS and apoptosis on TNBC cells was prevented by pre-treatment with ROS scavengers, N-acetyl cysteine or Mito-TEMPO, a mitochondria-targeted antioxidant, indicating that an increase in the generation of ROS mediated the apoptosis induced by hydroxyzine. Western blot analysis showed that hydroxyzine-induced apoptosis was through down-regulation of the phosphorylation of JAK2 and STAT3 by hydroxyzine treatment. In addition, hydroxyzine induced the phosphorylation of JNK and p38 MAPK. Our results indicate that hydroxyzine induced apoptosis via mitochondrial superoxide generation and the suppression of JAK2/STAT3 signaling.
The mitochondrial genome encodes 13 proteins that are components of the oxidative phosphorylation system (OXPHOS), suggesting that precise regulation of these genes is crucial for maintaining OXPHOS functions, including ATP production, calcium buffering, cell signaling, ROS production, and apoptosis. Furthermore, heteroplasmy or mis-regulation of gene expression in mitochondria frequently is associated with human mitochondrial diseases. Thus, various approaches have been developed to investigate the roles of genes encoded by the mitochondrial genome. In this review, we will discuss a wide range of techniques available for investigating the mitochondrial genome, mitochondrial transcription, and mitochondrial translation, which provide a useful guide to understanding mitochondrial gene expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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