Transient receptor potential (TRP) channels comprise a diverse family of ion channels, the majority of which are calcium permeable and show sophisticated regulatory patterns in response to various environmental cues. Early studies led to the recognition of TRP channels as environmental and chemical sensors. Later studies revealed that TRP channels mediated the regulation of intracellular calcium. Mutations in TRP channel genes result in abnormal regulation of TRP channel function or expression, and interfere with normal spatial and temporal patterns of intracellular local Ca2+ distribution. The resulting dysregulation of multiple downstream effectors, depending on Ca2+ homeostasis, is associated with hallmarks of cancer pathophysiology, including enhanced proliferation, survival and invasion of cancer cells. These findings indicate that TRP channels affect multiple events that control cellular fate and play a key role in cancer progression. This review discusses the accumulating evidence supporting the role of TRP channels in tumorigenesis, with emphasis on prostate cancer.
The Hippo signaling pathway controls nuclear accumulation and stability of the transcriptional coregulator YAP and its paralog TAZ. The activity of Hippo-YAP signaling is influenced not only by biochemical signals, but also by cell shape and mechanical tension transmitted through cell-cell junctions and cell-matrix adhesions. Data accumulated thus far indicates that the actin cytoskeleton is a key mediator of the regulation of Hippo-YAP signaling by means of a variety of biochemical and mechanical cues. In this review, we have outlined the role of actin dynamics and actin-associated proteins in the regulation of Hippo-YAP signaling. In addition, we discuss actin-mediated regulation of YAP/TAZ activity independent of the core Hippo kinases MST and LATS. Although our understanding of the link between Hippo-YAP signaling and the actin cytoskeleton is progressing rapidly, many open questions remain.
The Journal of Korea Institute of Information, Electronics, and Communication Technology
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v.13
no.5
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pp.419-424
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2020
Poroelasticity theory has been widely used for detecting cancellous bone deterioration because of the safe use for humans. The tortuosity itself is an important indicator for ultrasound detection for bone diseases. The transport properties of cancellous bone are also important in bone mechanotransduction. In this paper, two important factors, the wave velocity and attenuation are examined for permeability (or tortuosity). The theoretical calculation for the relationship between the wave velocity (and attenuation) and permeability (or tortuosity) for cancellous bone is shown in this study. It is found that the wave along the solid phase (trabecular struts) is influenced not by tortuosity, but the wave along the fluid wave (bone fluid phase) is affected by tortuosity significantly. However, the attenuation is different that the attenuation of a fast wave has less influence than that of a slow wave because the slow wave is observed by the relative motion between the solid and fluid phases.
For mechanical force to induce changes in cellular behaviors, two main processes are inevitable; perception of the force and response to it. Perception of mechanical force by cells, or mechanosensing, requires mechanical force-induced conformational changes in mechanosensors. For this, at least one end of the mechanosensors should be anchored to relatively fixed structures, such as extracellular matrices or the cytoskeletons, while the other end should be pulled along the direction of the mechanical force. Alternatively, mechanosensors may be positioned in lipid bilayers, so that conformational changes in the embedded sensors can be induced by mechanical force-driven tension in the lipid bilayer. Responses to mechanical force by cells, or mechanotransduction, require translation of such mechanical force-induced conformational changes into biochemical signaling. For this, protein-protein interactions or enzymatic activities of mechanosensors should be modulated in response to force-induced structural changes. In the last decade, several molecules that met the required criteria of mechanosensors have been identified and proven to directly sense mechanical force. The present review introduces examples of such mechanosensors and summarizes their mechanisms of action.
Under physiological and pathological conditions, mechanical forces generated from cells themselves or transmitted from extracellular matrix (ECM) through focal adhesions (FAs) and adherens junctions (AJs) are known to play a significant role in regulating various cell behaviors. Substantial progresses have been made in the field of mechanobiology towards novel methods to understand how cells are able to sense and adapt to these mechanical forces over the years. To address these issues, this review will discuss recent advancements of traction force microscopy (TFM), intracellular force microscopy (IFM), and monolayer stress microscopy (MSM) to measure multiple aspects of cellular forces exerted by cells at cell-ECM and cell-cell junctional intracellular interfaces. We will also highlight how these methods can elucidate the roles of mechanical forces at interfaces of cell-cell/cell-ECM in regulating various cellular functions.
Intracellular gradients of the free calcium concentration are thought to be critical for the localization of functional responses within a cell. The mechanism of mechanotransduction may be associated with the localized accumulation of calcium stores for shear stress-exposed endothelial cells. The distribution of the calcium stores and the formation of the stress fibers were investigated by the indirect double immunofluorescent staining method with the calreticulin antibody and rhodamine phalloidin under flow condition. The shear stress of steady flow reorganized the cytoskeleton structure including the bundling and translocation to focal contacts. The calcium stores translocated from the cytoplasm to the focal contacting area. Consequently. accumulation of the calcium stores may participate in the shear stress-induced cytoskeleton organization of endothelial cells.
Actin dynamics play an essential role in myogenesis through multiple mechanisms, such as mechanotransduction, cell proliferation, and myogenic differentiation. Twinfilin-1 (TWF1), an actin-depolymerizing protein, is known to be required for the myogenic differentiation of progenitor cells. However, the mechanisms by which they epigenetically regulate TWF1 by microRNAs under muscle wasting conditions related to obesity are almost unknown. Here, we investigated the role of miR-103-3p in TWF1 expression, actin filament modulation, proliferation, and myogenic differentiation of progenitor cells. Palmitic acid, the most abundant saturated fatty acid (SFA) in the diet, reduced TWF1 expression and impeded myogenic differentiation of C2C12 myoblasts, while elevating miR-103-3p levels in myoblasts. Interestingly, miR-103-3p inhibited TWF1 expression by directly targeting its 3'UTR. Furthermore, ectopic expression of miR-103-3p reduced the expression of myogenic factors, i.e., MyoD and MyoG, and subsequently impaired myoblast differentiation. We demonstrated that miR-103-3p induction increased filamentous actin (F-actin) and facilitated the nuclear translocation of Yes-associated protein 1 (YAP1), thereby stimulating cell cycle progression and cell proliferation. Hence, this study suggests that epigenetic suppression of TWF1 by SFA-inducible miR-103-3p impairs myogenesis by enhancing the cell proliferation triggered by F-actin/YAP1.
A mutation of UNCL, an inner nuclear membrane RNAbinding protein, has been found to eliminate mechanotransduction in Drosophila. UNCL is expressed in human periodontal tissue including in periodontal ligament (PDL) fibroblasts. However, it is unclear how a mechanical stimulus is translated into cellular responses in PDL fibroblasts. The aim of this study was to evaluate the effect of UNCl on mechanical stress related genes in PDL fibroblasts in response to mechanical stress. The mRNA of TGF-$\beta$, COX-2, and MMP-2 was up-regulated after UNCL inactivation in PDL fibroblasts under the compression force. Under the tensile force, inactivation of UNCL decreased the expression of Biglycan, RANKL, MMP-2, and TIMP-2 mRNAs while it increased the expression of TIMP-1. p38-MAPK was expressed in PDL fibroblasts under compression forces whereas phospho-ERK1/2, p65-NFkB, and c-fos were expressed under tension forces. The expression and phosphorylation of the mechanical stress related genes, kinases, and transcription factors were changed according to the types of stress. Furthermore, most of them were regulated by the inactivation of UNCL. This suggests that UNCL is involved in the regulation of mechanical stress related genes through the signaling pathway in PDL fibroblasts.
Yang, Kisuk;Lee, Jong Seung;Lee, Jaehong;Cheong, Eunji;Lee, Taeyoon;Im, Sung Gap;Cho, Seung-Woo
Proceedings of the Korean Institute of Surface Engineering Conference
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2016.11a
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pp.122.2-122.2
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2016
Surface topographical cues has been highlighted to control the fate of neural stem cells (NSCs). Herein we developed a hierarchically patterned substrate (HPS) platform for regulating NSC differentiation. The HPS induced cytoskeleton alignment and highly activated focal adhesion in hNSCs as indicated by enhanced expression of focal adhesion proteins such as focal adhesion kinase (FAK) and vinculin. hNSCs cultured on HPS exhibited enhanced neuronal differentiation compared to flat group. We also developed a graphene oxide (GO)-based hierarchically patterned substrates (GPS) that promote focal adhesion formation and neuronal differentiation of hNSCs. Enhanced focal adhesion and differentiation of hNSCs on the HPS was reversed by blocking the ${\beta}1$ integrin binding and mechanotransduction-associated signals including Rho-associated protein kinase (ROCK) and extracellular-regulated kinase (ERK) pathway, which may suggest a potential mechanism of beneficial effects of HPS. In addition, hNSCs on the HPS differentiated into functional neurons exhibiting sodium currents and action potentials as confirmed by whole cell patch-clamping analysis. The hierarchical topography can direct differentiation of NSCs towards functional neurons, and therefore would be an important element for the design of functional biomaterials for neural tissue regeneration applications.
Focal adhesion kinase (FAK) is known to regulate cell adhesion, migration, and mechanotransduction in focal adhesions (FAs). However, studies on how FAK activity is regulated in the plasma membrane microdomains according to the composition of extracellular matrix (ECM) proteins are still lacking. A genetically encoded fluorescence resonance energy transfer (FRET)-based biosensor can provide useful information on the activity of intracellular signals with high spatiotemporal resolution. In this study, we analyzed the FAK activities in lipid raft (detergent-resistant membrane) and non-lipid raft (non-detergent-resistant membrane) microdomains using FRET-based membrane targeting FAK biosensors (FAK-Lyn and FAK-KRas biosensors) under four different ECM protein compositions: glass, type 1 collagen, fibronectin, and laminin. Interestingly, FAK activity in response to laminin in a lipid raft microdomain was lower than that in other ECM conditions. Cells subjected to fibronectin showed higher FAK activity in a lipid raft microdomain than that in a non-lipid raft microdomain. Therefore, this study demonstrates that the FAK activity can be distinctively regulated according to the ECM type and the environment of the plasma membrane microdomains.
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