황체내 TNF$\alpha$는 큰황체세포를 포함한 황체내 세포들의 사망을 일으키고, 황체내 혈관의 퇴화와 프로게스테론 농도의 감소를 초래하는 등 황체의 구조적 및 기능적 퇴화를 유발하는 것으로 밝혀졌다. 반면 이와는 대조적으로 TNF$\alpha$는 황체발달의 초기에는 황체자극효과를 가지고 있다는 보고도 있다. 황체내에서 TNF$\alpha$의 중요성에도 불구하고, 아직 이 물질의 분비원이 대식세포라는 보고들과 대식세포는 주된 분비원이고 내피세포에서도 소량 분비된다는 보고 등 이견이 있다. 이를 알아보기 위해 저자들은 돼지에서 비임신기와 임신기의 성숙황체와 용해황체를 이용하여 대식세포와 TNF$\alpha$ 면역조직화학을 실시한 결과, 성숙황체내에서 TNF$\alpha$의 주된 분비원은 대식세포이고 내피세포도 일부 분비하는 것을 확인하였으며, 황체용해가 진행되면서 내피세포가 TNF$\alpha$의 분비와 반응에 다양성과 역동성을 보이고 있음을 추정할 수 있었다.
Obesity is consistently increasing in prevalence and can trigger insulin resistance and type 2 diabetes. Many lines of evidence have shown that macrophages play a major role in inflammation associated with obesity. This study was conducted to determine metformin, a widely prescribed drug for type 2 diabetes, would regulate inflammation through down-regulation of scavenger receptors in macrophages from obesity-induced type 2 diabetes. RAW 264.7 cells and peritoneal macrophages were stimulated with LPS to induce inflammation, and C57BL/6N mice were fed a high-fat diet to generate obesity-induced type 2 diabetes mice. Metformin reduced the production of NO, $PGE_2$ and pro-inflammatory cytokines ($IL-1{\beta}$, IL-6 and $TNF-{\alpha}$) through down-regulation of $NF-{\kappa}B$ translocation in macrophages in a dose-dependent manner. On the other hand, the protein expressions of anti-inflammatory cytokines, IL-4 and IL-10, were enhanced or maintained by metformin. Also, metformin suppressed secretion of $TNF-{\alpha}$ and reduced the protein and mRNA expression of $TNF-{\alpha}$ in obese mice as well as in macrophages. The expression of scavenger receptors, CD36 and SR-A, were attenuated by metformin in macrophages and obese mice. These results suggest that metformin may attenuate inflammatory responses by suppressing the production of $TNF-{\alpha}$ and the expressions of scavenger receptors.
Park, Sang Min;Do-Thi, Van Anh;Lee, Jie-Oh;Lee, Hayyoung;Kim, Young Sang
Molecules and Cells
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제43권5호
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pp.479-490
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2020
Interleukin-9 (IL-9) is well known for its role in allergic inflammation. For cancer, both pro- and anti-tumor effects of IL-9 were controversially reported, but the impact of IL-9 on tumor metastasis has not yet been clarified. In this study, IL-9 was expressed as a secretory form (sIL-9) and a membrane-bound form (mbIL-9) on B16F10 melanoma cells. The mbIL-9 was engineered as a chimeric protein with the transmembrane and cytoplasmic region of TNF-α. The effect of either mbIL-9 or sIL-9 expressing cells were analyzed on the metastasis capability of the cancer cells. After three weeks of tumor implantation into C57BL/6 mice through the tail vein, the number of tumor modules in lungs injected with IL-9 expressing B16F10 was 5-fold less than that of control groups. The percentages of CD4+ T cells, CD8+ T cells, NK cells, and M1 macrophages considerably increased in the lungs of the mice injected with IL-9 expressing cells. Among them, the M1 macrophage subset was the most significantly enhanced. Furthermore, peritoneal macrophages, which were stimulated with either sIL-9 or mbIL-9 expressing transfectant, exerted higher anti-tumor cytotoxicity compared with that of the mock control. The IL-9-stimulated peritoneal macrophages were highly polarized to M1 phenotype. Stimulation of RAW264.7 macrophages with sIL-9 or mbIL-9 expressing cells also significantly increased the cytotoxicity of those macrophages against wild-type B16F10 cells. These results clearly demonstrate that IL-9 can induce an anti-metastasis effect by enhancing the polarization and proliferation of M1 macrophages.
During tumor progression various immunosuppressive cells are recruited to a tumor microenvironment (TME). Tumor-associated macrophages (TAMs) are particularly abundant in TME. Based on their function, macrophages are categorized into two phenotypes: tumoricidal M1 and tumor-supportive M2. Generally, TAMs closely resemble M2-macrophages and lead to tumor growth. However, their phenotype can be changed by immune activator from M2 to M1 and thus promote tumor immunotherapy. Ginseng extracts are well known for its anti-tumor and anti-inflammatory effects from numerous reported studies. However, the mechanism of their effects is still not clear. Recently, some studies suggested that ginseng extracts induced immune activation as well as anti-tumor activities by a repolarization of activated macrophage from M2 phenotype to M1 phenotype. But, further verification about the mechanism as to how ginseng extracts can stimulate the immune response is still needed. In this study, we investigated whether ginseng extracts can alter the phenotype from M2 macrophages to M1 macrophages in mice by using a radiolabeled liposome. And we also evaluated the potential of radiolabeled liposome as a nuclear imaging agent to monitor the transition of phenotype of TAMs. In conclusion, the ginseng extracts seem to change the phenotype of macrophages from M2 to M1 like as lipopolysaccharide (LPS) in mice.
Despite extensive investigation, the mechanisms of immune responses to Candida albicans infection remain poorly understood. Using RT-PCR and Northern blot analysis, this study demonstrates the pattern of IL-6 mRNA expression in thioglycollate-elicited mouse peritoneal macrophages and NIH3T3 fibroblasts (NIH3T3) in response to C. albicans. The expression of IL-6 mRNA was detectable in both cell types. However, IL-10 mRNA was only expressed in the macrophages, and IL-4 mRNA was not expressed in neither of the two cell types. Although the phagocytic function of the macrophages was inhibited by Cytochalasin D, these macrophages could still induce the expression of IL-6mRNA. These findings indicated that the phagocytosis of C. albicans is not pivotal in the induction of IL-6 mRNA expression. A Northern blot analysis was used to investigate the dose effects of C. albicans and time-course kinetics of IL-6 mRNA expression at various time points. IL-6 mRNA was expressed in a dose-independent manner, and was detectable as early as 30min after C. albicans stimulation. It was evenly sustained up to 4h. These results can contribute to understanding the mechanism of IL-6 mRNA expression in macrophages and NIH3T3 cells in response to C, albicans.
Inoculation of mice with the murine NFSA cell line caused the formation of large tumors with necrotic tumor cores. FACS analysis revealed accumulations of $CD11b^+$ cells in the tumors. Microarray analysis indicated that the NFSA cells expressed a high level of the pro-inflammatory factor interleukin-18 (il-18), which is known to play a critical role in macrophages. However, little is known about the physiological function of IL-18-stimulated macrophages. Here, we provide direct evidence that IL-18 enhances the phagocytosis of RAW264 cells and peritoneal macrophages, accompanied by the increased expression of tumor necrosis factor (tnf-${\alpha}$), interleukin-6 (il-6) and inducible nitric oxide synthase (Nos2). IL-18-stimulated RAW264 cells showed an enhanced cytotoxicity to endothelial F-2 cells via direct cell-to-cell interaction and the secretion of soluble mediators. Taken together, our results demonstrate that tumor-derived IL-18 plays an important role in the phagocytosis of macrophages and that IL-18-stimulated macrophages may damage tumor endothelial cells.
Purpose: Aloe-emodin (AE), an ingredient of aloe, is known to exhibit anti-inflammatory activities. However, little is known about the underlying molecular mechanisms of its inflammatory modulatory activity in vitro. In the present study, we investigated the anti-inflammatory potential of AE using $Pam_3CSK_4$-stimulated macrophages. Methods: RAW 264.7 macrophages were treated with AE (0~20 mM) for 1 h, followed by treatment with $Pam_3CSK_4$ for 1 h. After incubation, mRNA expression levels of cytokines were measured. The effect of AE on TLR2-related molecules was also investigated in $Pam_3CSK_4$-stimulated RAW 264.7 macrophages. Results: AE attenuated $Pam_3CSK_4$-stimulated expression of proinflammatory cytokines, including tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$), interleukin-6 (IL-6), and interleukin-$1{\beta}$ ($IL-1{\beta}$) in RAW 264.7 macrophages. Two concentrations of AE ($10{\mu}M$ and $20{\mu}M$) effectively reduced mRNA expression of TLR2 by 41.18% and 54.43%, respectively, compared to that in control cells (p < 0.05). AE also decreased nuclear factor-kappa B ($NF-{\kappa}B$) activation and mitogen-activated protein kinase (MAPK) phosphorylation. Phosphorylation levels of ERK1/2, p38, and JNK were markedly reduced by $20{\mu}M$ AE. In particular, AE decreased phosphorylation of ERK in a dose-dependent manner in $Pam_3CSK_4$-stimulated RAW 264.7 macrophages. Conclusion: Our data indicate that AE exerts its anti-inflammatory effect by suppressing TLR2-mediated activation of $NF-{\kappa}B$ and MAPK signaling pathways in macrophages.
Kim, Hong-Deok;Lee, Soo-Bin;Ko, Seok-Chun;Jung, Won-Kyo;Kim, Young-Mog;Kim, Seon-Bong
Fisheries and Aquatic Sciences
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제21권6호
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pp.15.1-15.9
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2018
Background: Inflammation has been known to associate with many human diseases. The objective of this study was to evaluate an anti-inflammatory effect of ozonated krill (Euphausia superba) oil, which was prepared by the treatment of krill oil using ozone gas. The anti-inflammatory activity was evaluated in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated RAW 264.7 macrophages. Results: Ozonated krill oil significantly inhibited nitric oxide (NO) production and suppressed the mRNA and protein expression of inducible nitric oxide synthase (iNOS) and cyclooxygenase-2 (COX-2) in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. Ozonated krill oil also reduced the mRNA expression of inflammatory cytokines such as interleukin (IL)-$1{\beta}$, IL-6, and tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$ in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. To elucidate the mechanism underlying the anti-inflammatory activity of ozonated krill oil, we evaluated the effects of ozonated krill oil on the activation of mitogen-activated protein kinases (MAPKs) pathway. Ozonated krill oil suppressed the LPS-stimulated phosphorylation of p38 MAPK and c-Jun N-terminal kinases (JNK). Conclusion: This study revealed that the ozonated krill oil exhibited an anti-inflammatory effect in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. To the best of our knowledge, this is the first report that ozonated krill oil suppressed pro-inflammatory mediator and cytokine expression in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages by inhibiting the phosphorylation of p38 MAPK and JNK.
Increasing evidence indicates that the production of nitric oxide (NO) by inducible NO synthase (NOS) is tightely regulated. Transforming growth factor-${\beta}$ (TGF-${\beta}$) is a homodimeric protein secreted during macrophage activation, but several lines of evidence suggest that TGF-${\beta}$ is selectively suppressive for macrophage NO production. We therefore reasoned that a strategy employing oligodeoxynucleotides(ODNs) complemently to TGF-${\beta}$ mRNA (antisense ODNs) might increase NO production in IFN-${\gamma}$-treated murine peritoneal macrophages. To evaluate this concept, we tested the effects of antisense ODNs targeted to TGF-${\beta}$ mRNA (25-mer ODNs complemently to TGF-${\beta}$mRNA sequences) by introducing it into the medium of cultured macrophages. Phosphorothiolation of ODNs were employed to retard their degradation. Antisense ODNs had no effect on NO production by itself, whereas IFN-${\gamma}$ alone had modest effect. When antisense ODNs were used in combination with IFN-${\gamma}$, there was a marked cooperative induction of NO production, These effects of antisense ODNs were associated with decreased TGF-${\beta}$ expression in activated macrophages. ODNs with the same nucleotides but a scrambled sequence had no effect. Adding anti-TGF-${\beta}$ antibodies to the IFN-${\gamma}$-treated macrophages mimicked the positive effect of antisense ODNs on NO production. In addition, the effects of either antisense ODNs or anti-TGF-${\beta}$ antibodies were blocked by adding TGF-${\beta}$ in cultured macrophages. These results indicate that the generation of TGF-${\beta}$ by activated macrophages provides a self-regulating mechanism by which the temporal and perhaps spatial production of NO, a reactive and potentially toxic mediator, can be finely regulated.
Han, Kyoung-Hee;Park, Su Jung;Choi, Sun Ju;Park, Joo Young;Lee, Kyoung-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제23권7호
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pp.1031-1040
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2013
Candida albicans is a dimorphic fungus that commensally colonizes human mucosal surfaces. The aim of this study was to assess the role of different C. albicans morphologies in inducing pattern recognition receptors (PRRs) and cytokines in macrophages. Macrophages may respond to pathogen-associated molecular patterns via TLR2 and TLR4 by expressing cytokines. The hyphal transition of C. albicans was induced by 20% serum (S), RPMI-1640 (R), or $39^{\circ}C$ culture (H). Macrophages were then challenged with either yeast (Y) or different hyphae cultures of C. albicans, followed by RT-PCR and FACS analysis of PRRs expression. In addition, macrophages were stimulated with either yeast or different hyphae cultures of C. albicans used by RT-PCR and Bio-Plex analysis of cytokines production. Macrophages expressed high levels of TLR4 and dectin-1 after stimulation with Y cells. In contrast, stimulation with H or R cells strongly increased the expression of TLR2 and dectin-2. Stimulation with Y cells significantly enhanced the expression of IL-$1{\beta}$ and weakly increased the expression of IL-6 and IL-12. Stimulation with hyphal cells (S, R, and H) strongly increased IL-10 expression, but weakly reduced IL-$1{\beta}$ expression. The phagocytosis activity and NO production of macrophages were decreased upon treatment with hyphal cells compared with yeast, and depended on the length of hyphae. In summary, the yeast and hyphae forms of C. albicans resulted in an induction of different PRRs, with accompanying differences in immune cell cytokine profiles.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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