Park, So-Lim;Park, Sunhyun;Jang, Jieun;Yang, Hye-Jung;Moon, Sung-Won;Lee, Myung-Ki
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.42
no.6
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pp.991-995
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2013
This study was conducted to develop an edible culture media with various types of cereals and soybeans for the pre-cultivation of lactic acid bacteria (LAB). To manufacture the edible culture media, LAB enrichment media were prepared using cereals such as brown rice (including germinated brown rice, glutinous brown rice, and germinated glutinous brown rice), yellow soybeans (including yellow soybeans, hulled yellow soybeans, germinated yellow soybeans, hulled and germinated yellow soybeans), and black soybeans (black soybeans, hulled black soybeans, germinated black soybeans, hulled and germinated black soybeans). Seven species of LAB were used in the experiment: Lactobacillus (Lb.) farciminis, Lb. homohiochii, Lb. pentosus, Lb. plantarum, Leuconostoc (Leu.) paramesenteroides, Leu. citreum, and Leu. lactis. For edible culture media from cereals, the average viable cell count of the seven starter cultures was 7.6~8.0 log CFU/mL, while that of the MRS culture medium, a synthetic medium, was 9.2 log CFU/mL; thus proliferation was lower by about 1~2 log CFU/mL in starter cultures from cereals compared to the synthetic medium. In the case of the edible culture media from soybeans, most bacteria showed higher proliferation in the hulled and germinated soybean media. In particular, Lb. plantarum showed the highest cell count at 10.08 log CFU/mL. In the case of edible culture media from black soybeans, the proliferation rate was higher in the hulled and germinated black soybean medium. Lb. homohiochii showed the highest proliferation in the hulled and germinated black soybean medium at 9.90 log CFU/mL. All results show that edible culture media using cereals and soybeans are generally good for LAB. Especially, hulled and germinated black soybeans are optimal for the pre-cultivation of LAB medium.
Phenyllactic acid (PLA) which is known as antimicrobial compound can be synthesized through the reduction of phenylpyruvic acid (PPA) by lactate dehydrogenase (LDH) of lactic acid bacteria (LAB). LAB producing PLA was isolated from Korea Kimchi and identified to Lactobacillus plantarum SJ21 by 16 rRNA gene sequence analysis. Cell-free supernatant (CFS) from L. plantarum SJ21 was assessed for both the capability to produce the antimicrobial compound PLA and the antifungal activity against four fungal pathogens (Rhizoctonia solani, Aspergillus oryzae, Botrytis cinerea, and Collectotricum aculatum). PLA concentration was investigated to be 3.23mM in CFS when L. plantarum SJ21 was grown in MRS broth containing 5mM PPA for 16 h. PLA production also could be promoted by the supplement of PPA and phenylalanine in MRS broth, but inhibited by the supplement of 4-hydroxyphenylpyruvic acid and tyrosine as precursors. Antifungal activity demonstrated that all fungal pathogens were sensitive to 5% CFS (v/v) of L. plantarum SJ21 with average growth inhibitions ranging from 27.32% to 69.05% (p<0.005), in which R. solani was the most sensitive to 69.05% and followed by B. cinerea, C. aculatum, and A. oryzae. The minimum inhibitory concentration (MIC) for commercial PLA was also investigated to show the same trend in the range from $0.35mg\;mL^{-1}$ (2.11 mM) to $0.7mg\;mL^{-1}$ (4.21 mM) at pH 4.0. The inhibition ability of CFS against the pathogens was not affected by heating or protease treatment. However, pH modification in CFS to 6.5 caused an extreme reduction in their antifungal activity. These results may indicate that antifungal activities in CFS were caused by acidic compounds like PLA or organic acids rather than proteins or peptides molecules.
A new bacteriocin-producing lactic acid bacteria (LAB) which has been isolated from kimchi was identified as Pediococcus damnosus by use of API kit and 16S rDNA sequencing, and designated as P. damnosus JNU 534. The bacteriocin produced by P. damnosus JNU 534 markedly inhibited the growth of some of LAB and Listeria monocytogenes, whereas other pathogens including Gram negative bacteria were not susceptible. The production of bacteriocin started at the beginning of exponential phase and reached maximum activity at the early stationary phase. The bacteriocin was stable on the wide pH range of 2-9 and heat treatment up to $100^{\circ}C$ for 15 min. The antimicrobial compound was inactivated by treatments of proteolytic enzymes indicating its proteinaceous in nature. The bacteriocin was purified by 30% ammonium sulfate precipitation followed by hydrophobic interaction column and $C_{18}$ column chromatography. The estimated molecular weight of the bacteriocin using tricine SDS-PAGE was approximately 3.4 kDa and the identified N-terminal amino acid sequence was $NH_2$-ILLEELNV.
When used in combination with organic acids, Pediococcus acidilactici K10 or its bacteriocin was effective in inhibiting Escherichia coli O157:H7 in vitro and in situ. P. acidilactici K10, a strain of bacteriocin-producing lactic acid bacteria (LAB), was previously isolated from kimchi in our laboratory, and the molecular weight of its bacteriocin was estimated to be around 4,500 Da by SDS-PAGE. Initially, P. acidilactici K10 and its bacteriocin could not inhibit E. coli O157:H7, when used alone. However, when they were used together with organic acids such as acetic, lactic, and succinic acids, they greatly inhibited E. coli O157:H7 in vitro. Based on these in vitro results, a real sample test with ground beef was conducted at $4^{\circ}C$ with acetic acid (0.25%) or lactic acid (0.35%) alone, and then in combination with P. acidilactici K10 (10^5 CFU/g of sample). Combined treatment of P. acidilactici K10 with lactic acid showed the most inhibitory effect: a 2.8-$log_{10}$-unit reduction of E. coli O157:H7 in ground beef during storage at $4^{\circ}C$. This result suggests that the combination of bacteriocin-producing P. acidilactici K10 and organic acids has great potential as a food biopreservative by inhibiting the growth of E. coli O157:H7.
The vector pCW5 with plasmid pC7, originally isolated in Lactobacillus paraplantarum C7 derived from kimchi, was constructed using a p32 strong promoter, the pC7 replicon, and green fluorescent protein (GFP) as the reporter. The constructed vector was transformed into E. coli and Leuconostoc mesenteroides, and GFP expression detected using a Western blot analysis. GFP fluorescence was recognized in E. coli and Leuconostoc mesenteroides using a confocal microscope. In addition, GFP fluorescence was also clearly detected in several industrially important lactic acid bacteria (LAB), including Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus paraplantarum, and Lactobacillus plantarum. Thus, pCW5 was shown to be effective for Leuconostoc mesenteroides when using GFP as the reporter, and it can also be used as a broad-host-range vector for other lactic acid bacteria.
Lactic acid bacteria (LAB) play an important role in dairy fermentations, notably as cheese starter cultures. During the cheese production and ripening period, various enzymes from milk, rennet, starter cultures, and non-starter LABs are involved in flavor formation pathways, including glycolysis, proteolysis, and lipolysis. Among these three pathways, starter LABs are particularly related to amino acid degradation, presumably as the origins of major flavor compounds. Therefore, we used several enzymes as major criteria for the selection of starter bacteria with flavor-forming ability. Lactococcus lactis subsp. lactis LDTM6802 and Lactococcus lactis subsp. cremoris LDTM6803, isolated from Korean raw milk and cucumber kimchi, were confirmed by using multiplex PCR and characterized as starter bacteria. The combinations of starter bacteria were validated in a miniature Gouda-type cheese model. The flavor compounds of the tested miniature cheeses were analyzed and profiled by using an electronic nose. Compared to commercial industrial cheese starters, selected starter bacteria showed lower pH, and more variety in their flavor profile. These results demonstrated that LDTM6802 and LDTM6803 as starter bacteria have potent starter properties with a characteristic flavor-forming ability in cheese.
Kim, Min-Ju;Kim, Byung-Hoon;Park, Sung-Soo;Park, Sung-Hee;Kim, Dong-Ho;Kim, Keun-Sung
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.26
no.3
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pp.198-202
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2011
Rice has been the most important staple food in everyday meals of Korean people for thousands of years. Nowadays, it is getting increasingly used as flour ingredients in a variety of processed foods, so that it is consumed in more diversified ways. As a consequence, production volume of rice flour to manufacture rice cakes, noodles, breads, or confectioneries is recently getting increased in Korea. But there are not sufficient research outcomes to guarantee Korean consumers microbiological qualities of rice flour as well as rice. As a preliminary experiment, therefore, the microbiological profiles (aerobic mesophilic bacteria (AMB), spore-forming aerobic bacteria (SAB), lactic acid bacteria (LAB), yeasts and molds (YM), and Escherichia coli and coliforms) have been monitored for nine retailed white rice samples in this study. AMB counts ranged $10^2-10^6$ CFU/g for all the nine white rice samples. All the nine rice samples have SAB counts within a narrow range $(1.0{\times}10^2-2.5{\times}10^3$ CFU/g). LAB was detected in two white rice samples ($4.0{\times}10^2$ and $3.7{\times}10^3$ CFU/g), YM was detected in one white rice sample ($2.0{\times}10^2$ CFU/g) only. E. coli was not detected from all the nine samples. Coliforms were detected in one white rice sample ($4.1{\times}10$ CFU/g) only. All the rice samples were conclusively considered to have various microorganisms, though most of them are harmless and some, such as coliforms, may be harmful.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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