The yeast Saccharomyces cerevisiae, mutant CH117, shows a drug-hypersensitivity (dhs) to cycloheximide, bleomycin, actinomycin D, 5-fluorouracil. nystatin, nigericin and several other antibiotics. CH 117 was also temperature-sensitive (ts). being unable to grow at $37^{\circ}C$ and secreted more invertase and acid phosphatase into the medium than the parent yeast. CH117 grows very slowly and the cell shape is somewhat larger and more sensitive to zymolyase than the wild type cells. Light microscopic and electron microscopic observation also revealed abnormality of the mutant cell wall. These characteristics indicate that CH117 has a defect in an essential component of the cell surface and that the cell wall which performs barrier functions has become leaky in the mutant. We screened a genomic library of wild type yeast for clones that can complement the mutation of CH117. A plasmid, pCHX1, with an insert of 3.6 kilobases (kbs) could complement the dhs and ts of CH117. Deletion and subcloning of the 3.6 kb insert showed that a gene for the complementation of mutant phenotypes was located in 1.9 kbs Puvll-Hindlll fragment.
A cDNA clone coding for ribosomal protein 46 (rp46) which is a component of 60S ribosomal large subunit has been identified from Drosophila melanogaster. A cDNA clone encoding S. cerevisiae rp46 was used as a probe to screen a Drosophila larvae cDNA library. The DNA sequence analysis revealed that the cDNA coding for Drosophils rp46 contains a complete reading frame of 153 nucleotides coding for 51 amino acids. The deduced amino acid sequence showed 71-75% homology with those of other eukaryotic organisms. Northern blot analysis showed that about 1-kb rp46 transcripts are abundant throughout fly development. Whole mount embryonic mRNA in situ hybridization also showed no preferential distribution of the transcripts to any specific region. The chromosomal in situ hybridization revealed that the identified gene is localized at position 60C on the right arm of the second polytene chromosome with a possibility of single copy.
Six 3-dialkylaminomethyl-1-azaanthraquinones and five 4-dialkylaminomethyl-1-azaanthraquinones were synthesized and evaluated in vitro cytotoxicity against four human can cer cell lines. The compounds retained much of their cytotoxic activity against the multi-drug-resistant cell line (KB-V-1) as shown by resistance index.
Many studies have provided evidences that hepatitis B surface antigen (HBsAg) including preS region could be an ideal candidate for a new hepatitis B virus (HBV) vaccine with higher efficacy. We established CHO cell lines, IY-CHO-2 and IY-CHO-11 expressing high levels of HBsAg containing preS2 and S protein by stable transfection method. These cell lines expressed the correct size (about 1 kb in length) of HBsAg mRNA as expected. The purified protein from the culture supernatants of the clones showed the same sizes as those expressed in native hepatitis B virus (24 kDa, 27 kDa, 34 kDa and 36 kDa). Antibody productivity of CHO-derived HBsAg protein at lower dose challenge was higher than the protein containing S region alone expressed in yeast system. These results indicate that CHO-derived HBsAg protein containing preS2 and S region can be effectively used for a better immune response as a HBV vaccine.
A new natural C-benzylated chalcone, $2',4'-dihydroxy-3'-(2-hydroxybenzyl)-6{\c}-methoxychalcone$ (2), along with two other flavonoids, tiliroside and kaempferol 3-O-rutinoside, and an oxoaporphine alkaloid, lanuginosine were isolated from the aerial parts of Ellipeiopsis cherrevensis (Annonaceae). Two known polyoxygenated cyclohexene derivatives, ferrudiol and zeylenol, and a new analog, ellipeiopsol D, were also isolated. The chalcone 2 exhibited cytotoxic activity against human small-cell lung-cancer (NCl-H187), epidermoid carcinoma (KB) and breast cancer (BC) cell lines with $IC_{50}$ values of 1.40, 5.31 and $13.92\;{\mu}g/mL$, respectively. This compound also showed antimalarial activity against Plasmodium falciparum with an $IC_{50}$ value of $7.1\;{\mu}g/mL$ as well as antimicrobacterial activity against Mycobacterium tuberculosis with a MIC of 25 mg/mL.
Enhancers are cis-elements to regulate transcription of cell/tissue-specific genes in multicellular organisms. These elements locate in upstream or downstream regions of target genes and are found in a long distance up to 100 Kb in some cases. Transcription factors and coactivators bind to enhancers in a chromatin environment. Enhancers appear to facilitate the transcription of target genes by communicating with promoters and activating them. As transcription activation mechanism of enhancers, chromatin looping between enhancers and promoters, tracking of enhancer activity to promoters along the intervening regions, and movement of enhancers and promoters into transcription condensates have been suggested based on various molecular and cellular biology studies. These mechanisms are likely to act together rather than exclusive each other for gene transcription. Understanding of enhancer action mechanism may provide a way to regulate the transcription of cell/tissue-specific genes relating with aging or various diseases.
Kim, Tea-Youn;Park, Rae-Jun;Chang, Hae-Choon;Chung, Dae-Kyun;Lee, Jong-Hoon;Lee, Hyong-Joo;Kim, Jeong-Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제10권6호
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pp.829-835
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2000
The ptsH and ptsI genes of Lactococus lactis subsp. lactis ATCC 7962 (L. lactis 7962), encoding the general proteins of phosphotransferase system (PTS) components, HPr and enzyme I, respectively, were cloned and characterized. A 1.3 kb PCR product was obtained using a primer set that was hybridized to the internal region of the L. lactis 7962 pts HI genes and then subcloned into a low-copy number vector, pACYC184. The 5' upstream and 3' downstream region from the 1.3 kb fragment were subsequently clone using the chromosome walking method. The complete ptsHI operon was constructed and the nucleotide sequences determined. Two ORFs corresponding to HPr (88 amino acids) and enzyme I (575 amino acids) were located. The ptsHI genes of L. lactis 7962 showed a very high homology (84-90%) with those genes from other Gram-positive bacteria. A primer extension analysis showed that the transcription started at either one of two adjacent bases upstream of the start codon. Using a Northern analysis, two transcripts were detected; the first, a 0.3 kb transcript corresponding to ptsH and the second, a 2 kb transcript corresponding to ptsH and ptsI. The transcription level of ptsH was higher than that of ptsI. The concentration of the ptsH transcript in cells grown on glucose was similar to that in cells grown on lactose, yet higher than that in cells grown on galactose. The ptsI transcript was scarcely detected in cell grown on lactose or galactose. The ptsI transcript was scarcely detected in cells grown on lactose or galactose. The results of a sequence analysis and Northern blot confirmed that the ptsH and ptsI genes of L. lactis 7962 were arranged in an operon like other known ptsHI genes and the expression of the ptsHI genes was regulated at the transcriptional level in response to the carbon source.
Campylobacter jejuni에 48${\circ}C$의 열충격을 30분간 주었을 때, HSP90, HSP66, HSP60의 열충격 단백질들이 합성되었고, 이 단백질들은 각각 E. coli의 hsp87, HSP66 (DnaK), HSP58(GroEL)에 상응하는 단백질들이었다. 여러가지의 제한효소로 처리한 C. jejuni의 chromosomal DNA에 E. coli의 groEL(4.0kb)을 probe로 사용하여 Southern hybridization한 결과, 이들과 상동성을 가지는 유전자들이 있음을 확인하였다. C. jejuni의 groEL 유전자를 pWE15 cosmid를 이용하여 recombinant plasmid pLC1을 만들고, 이를 E. coli B178 groEL44 ts mutant에 형질전환시켜 E. coli LC1을 얻었다. 이 pLC1에는 groEL 유전자가 존재하는 5.7kb인 insert DNA가 포함되어 있었고, 그로부터 subcloning한 pLC101에는 groEL을 포함하는 4.0kb의 DNA가 삽입되어 있었다. 이 recombinant plasmid들이 형질전환된 E. coli LC1과 LC101 균주에서는 C. jejuni의 GroEL 단백질이 과다 생산되었다. C. jejuni의 groEL이 cloning된 E. coli LC1은 42${\circ}C$에서의 생장능력이 회복되었고, ${\lambda}$ vir phage에 대한 감수성도 회복되는 등의 chaperon 효과가 입증되었다.
B. stearothermophilus 유래의 CGTase 유전자(cgtS)를 보유하고 있는 재조합 plasmid pCGTS (4.8 kb)을 효모 표면 발현용 vector인 pYDl (GAL1 promoter)에 subcloning 하였다. 구축된 재조합 plasmid, pYDCGT (7.2 kb)는 S. cerevisiae EBY100에 형질전환하였고, tryptophan이 결여된 SD 배지에서 1차 선별된 형질전환체들을 YPGS배지에서 배양 후 활성 염색을 통하여 CD가 생 성 됨을 확인하였다. 배양시간과 효소반응시간에 따른 반응 산물을 TLC로 분석 한 결과, 배양 12시간째부터 효소활성이 나타났고, 반응 10분 이후부터 CD가 생성되어 시간이 지남에 따라 CD 생성양이 증가하는 것을 확인하였다. 회분 배양한 결과 $25^{\circ}C$와 $30^{\circ}C$에서 CGTase의 최대 활성이 각각 21.3 unit/1 와 16.5 unit/1로 나타났고, plasmid 안정성은 각각 $86\%$와 $82\%$로 나타나 배양온도에 상관없이 plasmid는 비교적 안정하게 유지되었다.
본 연구는 돼지 $\beta$-casein 유전자 위치에서 EGFP가 발현될 수 있는 knock-in 벡터를 구축하기 위하여 실시되었다. 돼지의 $\beta$-casein 유전자를 이용하여 knock-in 벡터를 구축하기 위해 돼지의 태아 섬유아세포로부터 $\beta$-casein 유전자를 동정하였고 EGFP, SV4O polyA signal을 동정하였다. Knock-in 벡터는 5' 상동 영역 약 5 kb와 3' 상동 영역 약 2.7 kb로 구성되어있으며, positive selection marker로 $neo^{r}$ 유전자를, negative selection marker로 DT-A 유전자를 사용하였다. 구축된 knock-in 벡터로부터 EGFP의 발현을 확인하기 위하여 생쥐 유선 세포인 HC11 세포에 knock-in 벡터를 도입하였다. 그 결과 EGFP의 발현을 HC11 세포에서 확인하였다. 이와 같은 결과로서 이 block-in 벡터는 knock-in 형질전환 돼지를 생산하는데 사용될 수 있을 것으로 생각된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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