Ginsenoside Rg1 is one effective anticancer and antioxidant constituent of total saponins of Panax ginseng (TSPG), which has been shown to have various pharmacological effects. Our previous study demonstrated that Rg1 had anti-tumor activity in K562 leukemia cells. The aim of this study was designed to investigate whether Rg1 could induce apoptosis in TF-1/Epo cells and further to explore the underlying molecular mechanisms. Here we found that Rg1 could inhibit TF-1/Epo cell proliferation and induce cell apoptosis in vitro in a concentration and time dependent manner. It also suppressed the expression of EpoR on the surface membrane and inhibited JAK2/STAT5 pathway activity. Rg1 induced up-regulation of Bax, cleaved caspase-3 and C-PAPR protein and down-regulation of Bcl-2 and AG490, a JAK2 specific inhibitor, could enhance the effects of Rg1. Our studies showed that EpoR-mediated JAK2/STAT5 signaling played a key role in Rg1-induced apoptosis in TF-1/Epo cells. These results may provide new insights of Rg1 protective roles in the prevention a nd treatment of leukemia.
Specific gene expressions of host cells by spontaneous STAT6 phosphorylation are major strategy for the survival of intracellular Toxoplasma gondii against parasiticidal events through STAT1 phosphorylation by infection provoked $IFN-{\gamma}$. We determined the effects of small molecules of tyrosine kinase inhibitors (TKIs) on the growth of T. gondii and on the relationship with STAT1 and STAT6 phosphorylation in ARPE-19 cells. We counted the number of T. gondii RH tachyzoites per parasitophorous vacuolar membrane (PVM) after treatment with TKIs at 12-hr intervals for 72 hr. The change of STAT6 phosphorylation was assessed via western blot and immunofluorescence assay. Among the tested TKIs, Afatinib (pan ErbB/EGFR inhibitor, $5{\mu}M$) inhibited 98.0% of the growth of T. gondii, which was comparable to pyrimethamine ($5{\mu}M$) at 96.9% and followed by Erlotinib (ErbB1/EGFR inhibitor, $20{\mu}M$) at 33.8% and Sunitinib (PDGFR or c-Kit inhibitor, $10{\mu}M$) at 21.3%. In the early stage of the infection (2, 4, and 8 hr after T. gondii challenge), Afatinib inhibited the phosphorylation of STAT6 in western blot and immunofluorescence assay. Both JAK1 and JAK3, the upper hierarchical kinases of cytokine signaling, were strongly phosphorylated at 2 hr and then disappeared entirely after 4 hr. Some TKIs, especially the EGFR inhibitors, might play an important role in the inhibition of intracellular replication of T. gondii through the inhibition of the direct phosphorylation of STAT6 by T. gondii.
Chronic hepatitis C virus (HCV) infection is responsible for the development of liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma. HCV core protein plays not only a structural role in the virion morphogenesis by encapsidating a virus RNA genome but also a non-structural role in HCV-induced pathogenesis by blocking innate immunity. Especially, it has been shown to regulate JAK-STAT signaling pathway through its direct interaction with Janus kinase (JAK) via its proline-rich JAK-binding motif ($^{79}{\underline{P}}GY{\underline{P}}WP^{84}$). However, little is known about the physiological significance of this HCV core-JAK association in the context of the virus life cycle. In order to gain an insight, a mutant HCV genome (J6/JFH1-79A82A) was constructed to express the mutant core with a defective JAK-binding motif ($^{79}{\underline{A}}GY{\underline{A}}WP^{84}$) using an HCV genotype 2a infectious clone (J6/JFH1). When this mutant HCV genome was introduced into hepatocarcinoma cells, it was found to be severely impaired in its ability to produce infectious viruses in spite of its robust RNA genome replication. Taken together, all these results suggest an essential requirement of HCV core-JAK protein interaction for efficient production of infectious viruses and the potential of using core-JAK blockers as a new anti-HCV therapy.
Background: N-myc downstream-regulated gene 2 (NDRG2), a member of a newly described family of differentiation-related genes, has been characterized as a regulator of dendritic cells. However, the role of NDRG2 on the expression and activation of transcription factors in blood cells remains poorly understood. In this study, we investigated the effects of NDRG2 overexpression on GATA-1 expression in PMAstimulated U937 cells. Methods: We generated NDRG2-overexpressing U937 cell line (U937-NDRG2) and treated the cells with PMA to investigate the role of NDRG2 on GATA-1 expression. Results: NDRG2 overexpression in U937 cells significantly induced GATA-1 expression in response to PMA stimulation. Interestingly, JAK2/STAT and BMP-4/Smad pathways associated with the induction of GATA-1 were activated in PMA-stimulated U937-NDRG2 cells. We found that the inhibition of JAK2 activation, but not of BMP-4/Smad signaling, can elicit a decrease of PMA-induced GATA-1 expression in U937-NDRG2 cells. Conclusion: The results reveal that NDRG2 promotes the expression of GATA-1 through activation of the JAK2/STAT pathway, but not through the regulation of the BMP-4/Smad pathway in U937 cells. Our findings further suggest that NDRG2 may play a role as a regulator of erythrocyte and megakaryocyte differentiation during hematopoiesis.
Yun, SeungPil;Yun, Chul Won;Lee, Jun Hee;Kim, SangMin;Lee, Sang Hun
Biomolecules & Therapeutics
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제26권5호
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pp.464-473
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2018
Cripto is a small glycosylphosphatidylinositol-anchored signaling protein that can detach from the anchored membrane and stimulate proliferation, migration, differentiation, vascularization, and angiogenesis. In the present study, we demonstrated that Cripto positively affected proliferation and survival of mesenchymal stem cells (MSCs) without affecting multipotency. Cripto also increased expression of phosphorylated janus kinase 2 (p-JAK2), phosphorylated signal transducer and activator of transcription 3 (p-STAT3), 78 kDa glucose-regulated protein (GRP78), c-Myc, and cyclin D1. Notably, treatment with an anti-GRP78 antibody blocked these effects. In addition, pretreatment with STAT3 short interfering RNA (siRNA) inhibited the increase in p-JAK2, c-Myc, cyclin D1, and BCL3 levels caused by Cripto and attenuated the pro-survival action of Cripto on MSCs. We also found that incubation with Cripto protected MSCs from apoptosis caused by hypoxia or $H_2O_2$ exposure, and the level of caspase-3 decreased by the Cripto-induced expression of B-cell lymphoma 3-encoded protein (BCL3). These effects were sensitive to down-regulation of BCL3 expression by BCL3 siRNA. Finally, we showed that Cripto enhanced expression levels of vascular endothelial growth factor (VEGF), fibroblast growth factor (FGF), and hepatocyte growth factor (HGF). In summary, our results demonstrated that Cripto activated a novel biochemical cascade that potentiated MSC proliferation and survival. This cascade relied on phosphorylation of JAK2 and STAT3 and was regulated by GRP78. Our findings may facilitate clinical applications of MSCs, as these cells may benefit from positive effects of Cripto on their survival and biological properties.
Objective: To explore the molecular mechanisms of fatty liver hemorrhagic syndrome (FLHS) in laying hens, an experiment was conducted to reveal the differences in histopathological observation and gene expression between FLHS group and normal group. Methods: We compared the histopathological difference using hematoxylin and eosin staining and proceeded with RNA sequencing of adipose tissue to search differentially expressed genes and enriched biological processes and pathways. Then we validated the mRNA expression levels by real-time polymerase chain reaction and quantified protein levels in the circulation by enzyme-linked immunosorbent assay. Results: We identified 100 differentially expressed transcripts corresponding to 66 genes (DEGs) were identified between FLHS-affected group and normal group. Seven DEGs were significantly enriched in the immune response process and lipid metabolic process, including phospholipase A2 group V, WAP kunitz and netrin domain containing 2, delta 4-desaturase sphingolipid 2, perilipin 3, interleukin-6 (IL-6), ciliary neurotrophic factor (CNTF), and suppressor of cytokine signaling 3 (SOCS3). And these genes could be the targets of immune response and be involved in metabolic homeostasis during the process of FLHS in laying hens. Based on functional categories of the DEGs, we further proposed a model to explain the etiology and pathogenesis of FLHS. IL-6 and SOCS3 mediate inflammatory responses and the satiety hormone of leptin, induce dysfunction of Jak-STAT signaling pathway, leading to insulin resistance and lipid metabolic disorders. Conversely, CNTF may reduce tissue destruction during inflammatory attacks and confer protection from inflammation-induced insulin resistance in FLHS chickens. Conclusion: These findings highlight the therapeutic implications of targeting the JAK-STAT pathway. Inhibition of IL6 and SOCS3 and facilitation of CNTF could serve as a favorable strategy to enhance insulin action and improve glucose homoeostasis, which are of importance for treating obesity-related disorders for chickens.
In addition to inducing apoptosis, caspase inhibition contributes to necroptosis and/or autophagy depending on the cell type and cellular context. In macrophages, necroptosis can be induced by co-treatment with Toll-like receptor (TLR) ligands (lipopolysaccharide [LPS] for TLR4 and polyinosinic-polycytidylic acid [poly I:C] for TLR3) and a cell-permeable pan-caspase inhibitor zVAD. Here, we elucidated the signaling pathways and molecular mechanisms of cell death. We showed that LPS/zVAD- and poly I:C/zVAD-induced cell death in bone marrow-derived macrophages (BMDMs) was inhibited by receptor-interacting protein kinase 1 (RIP1) inhibitor necrostatin-1 and autophagy inhibitor 3-methyladenine. Electron microscopic images displayed autophagosome/autolysosomes, and immunoblotting data revealed increased LC3II expression. Although zVAD did not affect LPS- or poly I:C-induced activation of IKK, JNK, and p38, it enhanced IRF3 and STAT1 activation as well as type I interferon (IFN) expression. In addition, zVAD inhibited ERK and Akt phosphorylation induced by LPS and poly I:C. Of note, zVAD-induced enhancement of the IRF3/IFN/STAT1 axis was abolished by necrostatin-1, while zVAD-induced inhibition of ERK and Akt was not. Our data further support the involvement of autocrine IFNs action in reactive oxygen species (ROS)-dependent necroptosis, LPS/zVAD-elicited ROS production was inhibited by necrostatin-1, neutralizing antibody of IFN receptor (IFNR) and JAK inhibitor AZD1480. Accordingly, both cell death and ROS production induced by TLR ligands plus zVAD were abrogated in STAT1 knockout macrophages. We conclude that enhanced TRIF-RIP1-dependent autocrine action of IFNβ, rather than inhibition of ERK or Akt, is involved in TLRs/zVAD-induced autophagic and necroptotic cell death via the JAK/STAT1/ROS pathway.
Atopic dermatitis (AD) is an inflammatory skin disease commonly characterized by infiltration of inflammatory cells into skin lesions. Keratinocytes produce many chemokines that are involved in the pathogenesis of skin disorders. In particular, macrophage-derived chemokine (MDC/CCL22) and thymus and activationregulated chemokine (TARC/CCL17) are Th2-type cytokines. Serum MDC and TARC levels are increased in AD patients. In this study, we investigated the anti-inflammatory effect and mechanism of action of the active fraction from Prunus yedoensis bark. We evaluated their inhibitory effects on the AD-like inflammatory markers (MDC and TARC) and JAK-STAT pathway (STAT1) in HaCaT keratinocytes. The EtOAc fraction of the crude extract (80% EtOH) and the E5 sub-fraction potently inhibited the induction of MDC and TARC mRNA and protein at 50 ${\mu}g$/mL in HaCaT cells. In addition, the E5 sub-fraction inhibited the phosphorylation of STAT1 protein associated with IFN-$\gamma$ signaling transduction in a dose-dependent manner. Thus, P. yedoensis may have antiatopic activity by suppressing the inflammatory chemokines (MDC and TARC).
SHP1 negatively regulates the Janus kinase 2/signal transducer and activator of transcription (JAK2/STAT) signaling pathway, which is constitutively activated in myeloproliferative neoplasms (MPNs) and leukemia. Promoter hypermethylation resulting in epigenetic inactivation of SHP1 has been reported in myelomas, leukemias and other cancers. However, whether SHP1 hypermethylation occurs in MPNs, especially in Chinese patients, has remained unclear. Here, we report that aberrant hypermethylation of SHP1 was observed in several leukemic cell lines and bone marrow mononuclear cells from MPN patients. About 51 of 118 (43.2%) MPN patients including 23 of 50 (46%) polycythaemia vera patients, 20 of 50 (40%) essential thrombocythaemia and 8 of 18 (44.4%) idiopathic myelofibrosis showed hypermethylation by methylation-specific polymerase chain reaction. However, SHP1 methylation was not measured in 20 healthy volunteers. Hypermethylation of SHP1 was found in MPN patients with both positive (34/81, 42%) and negative (17/37, 45.9%) JAK2V617F mutation. The levels of SHP1 mRNA were significantly lower in hypermethylated samples than unmethylated samples, suggesting SHP1 may be epigenetically inactivated in MPN patients. Furthermore, treatment with 5-aza-2'-deoxycytidine (AZA) in K562 cells showing hypermethylation of SHP1 led to progressive demethylation of SHP1, with consequently increased reexpression of SHP1. Meanwhile, phosphorylated JAK2 and STAT3 were progressively reduced. Finally, AZA increased the expression of SHP1 in primary MPN cells with hypermethylation of SHP1. Therefore, our data suggest that epigenetic inactivation of SHP1 contributes to the constitutive activation of JAK2/STAT signaling. Restoration of SHP1 expression by AZA may contribute to clinical treatment for MPN patients.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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