The effect of intracellular Ca2+ level on the hybridoma cell growth and monoclonal antibody(MAb) production was examined. For the manipulation of intracellular Ca2+ concentration, the cells were treated with A23187, ryanodine, and thapsigargin at about 1x106 cells/mL. The treated cells were recultivated by using the Iscove's Modified Dulbecco's Medium(MDM) containing 1.49mM CaCl2. The ryanodine-treated cells showed better cell growth, MAb concentration, and specific MAb productivity than others. In comparison with control, the maximum cell concentration, MAb concentration, and specific MAb productivity were increased by 40.6%, 48.1% and 83.3%, respectively. Confocal microscopic images of Fura-2/AM loaded cells indicate that the increase in intracellular Ca2+ level can enhance the MAb productivity by allowing the calcium influx into the endoplasmic reticulumn.
The concentration of intracellular $Ca^{2+}$ was measured by spectrofluorometer after rat submandibular acinar cells were loaded with fura-2/AM(fura-2). After isoproterenol and octanol were administered while letting submandibular gland acinar cell placed in a perfusion chamber flow through a standard solution, the changes of $Ca^{2+}$ concentration were measured. When they were administered separately, there showed little changes of intracellular $Ca^{2+}$ concentration. When they were administered at the same time, however the concentration of intracellar $Ca^{2+}$ was shown to increase. When forskolin, an adenylate cyclase activater, was administerd together with octanol the response looked similar to the response of isoproterenol. In case of the extracellular $Ca^{2+}$ was removed by omitting $Ca^{2+}$ in standard solution and treating EGTA, isoproterenol and forskolin does not affect to the concentration of intracellular $Ca^{2+}$. Therefore, it was certified that the increase of intracellular $Ca^{2+}$ was caused from outside the cell. In order to know that the $Ca^{2+}$ influx is related with capacitative entry pathway, godolinium, blocker of that pathway was treated. With the result of that experiment there was no complete control of the increase in the concentration of intracellular $Ca^{2+}$. However, speed and amount of $Ca^{2+}$ increase was comparatively diminished.
Recent studies have implicated reactive oxygen species (ROS) as determinants of the pathological pain caused by the activation of peripheral neurons. It has not been elucidated, however, how ROS activate the primary sensory neurons in the pain pathway. In this study, calcium imaging was performed to investigate the effects of NaOCl, a ROS donor, on the intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]i$) in acutely dissociated dorsal root ganglion (DRG) neurons. DRG was sequentially treated with 0.2 mg/ml of both protease and thermolysin, and single neurons were then obtained by mechanical dissociation. The administration of NaOCl then caused a reversible increase in the $[Ca^{2+}]i$, which was inhibited by pretreatment with phenyl-N-tertbuthylnitrone (PBN) and isoascorbate, both ROS scavengers. The NaOCl-induced $[Ca^{2+}]i$ increase was suppressed both in a calcium free solution and after depletion of the intracellular $Ca^{2+}$ pool by thapsigargin. Additionally, this increase was predominantly blocked by pretreatment with the transient receptor potential (TRP) antagonists, ruthenium red ($50\;{\mu}M$) and capsazepine ($10\;{\mu}M$). Collectively, these results suggest that an increase in the intracellular calcium concentration is produced from both extracellular fluid and the intracellular calcium store, and that TRP might be involved in the sensation of pain induced by ROS.
N,N-dimethyl-D-erythro-sphingosine (DMS) is an N-methyl derivative of sphingosine and an inhibitor of protein kinase C (PKC) and sphingosine kinase (SK). In the present study, we examined the effects of DMS on intracellular $Ca^{2+}$ concentration, pH, and glutamate uptake in human 1321N1 astrocytes. DMS increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration and cytosolic pH in a concentration-dependent manner. Pretreatment of the cells with the $G_{i/o}$ protein inhibitor PTX and the PLC inhibitor U73122 had no obvious effect. However, removal of extracellular $Ca^{2+}$ with the $Ca^{2+}$ chelator EGTA or depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores with thapsigargin impeded the DMS-induced increase of intracellular $Ca^{2+}$ concentration. Pretreatment of cells with $NH_4Cl$ or monensin reduced the DMS-induced $Ca^{2+}$ increase. However, inhibition of the DMS-induced $Ca^{2+}$ increase with BAPTA did not influence the DMS-induced pH increase. DMS also inhibited glutamate uptake by the 1321N1 astrocytes in a concentration-dependent manner. It also increased intracellular $Ca^{2+}$ and pH in PC12 neuronal cells. Our observations on the effects of DMS on 1321N1 astrocytes and PC12 neuronal cells point to a physiological role of DMS in the brain.
The role of intracellular $Ca^{2+}$, in the regulation of tumor cell proliferation by products of arachidonic acid (AA) metabolism was investigated using U-373 MG human as trocytoma cells. Treatment with nordihydroguaiaretic acid (NDGA), a lipoxygenase (LOX) inhibitor, or caffeic acid (CA), a specific 5-LOX inhibitor, suppressed proliferation of the tumor cells in a dose-dependent manner. However, indomethacin (indo), a cyclooxygenase (COX) inhibitor, did not significantly alter proliferation of the tumor cells. At anti-proliferative concentrations, NDGA and CA significantly inhibited intracellular $Ca^{2+}$ release induced by carbachol, a known intracelluar $Ca^{2+}$ agonist in the tumor cells. Exogenous administration of leukotriene $B_4(LTB_4)$, an AA metabolite of LOX pathway, enhanced proliferation of the tumor cells in a concentration-dependent fashion. In addition, $LTB_4$, induced intracelluar $Ca^{2+}$ release. Intracellular $Ca^{2+}$-inhibitors, such as an intracellular $Ca^{2+}$ chelator (BAPTA) and intracellular $Ca^{2+}$-release inhibitors (dantrolene and TMB-8), significantly blocked the LTB4-induced enhancement of cell proliferation and intracellular $Ca^{2+}$ release. These results suggest that LOX activity may be critical for cell proliferation of the human astrocytoma cells and that intracelluar $Ca^{2+}$ may play a major role in the mechanism of action of LOX.
Physiological activity of osteoblast including bone formation is known to be closely related to the increase of intracellular $Ca^{2+}$ activity($[Ca^{2+}]_i$) in osteoblast. $Ca^{2+}$ is an important intracellular messenger in diverse cellular functions, and regulation of its level is mediated by the transmembrane $Ca^{2+}$ movement via $Ca^{2+}$ channels, $Na^+-Ca^{2+}$ exchange, and by intracellular $Ca^{2+}$ movement through the intracellular stores. The purpose of this study is to investigate how the intracellular $Ca^{2+}$ is regulated in osteoblast-like cells(OLCs) by measuring $Ca^{2+}$ activity with cell imaging technique. OLCs were isolated from femur and tibia of neonatal rats, and cultured for 7 days. Cultured OLCs were loaded with a $Ca^{2+}$-sensitive fluorescent dye, Fura-2, and fluorescence images were monitored with a cooled CCD camera. The images were processed and analyzed with an image analyzing software. The results were as follows. (1) $[Ca^{2+}]_i$ of OLC decreased as the $Ca^{2+}$ concentration in the superfusing Tyrode solution was lowered. When $Na^+$ concentration in the superfusing solution was decreased, $[Ca^{2+}]_i$ increased.. These suggest that $Ca^{2+}$ flux occurs via the $Na^+-Ca^{2+}$ exchange mechanism. (2) When $Na^+$ in the superfusing solution was removed. a transient $Ca^{2+}$, increase($Ca^{2+}$ spike) was occasionally observed. However, $Ca^{2+}$ spike was not observed after adding 1 ${\mu}M$ thapsigargin. This implies that the generation of $Ca^{2+}$ spike is mediated by the release of $Ca^{2+}$ from endoplasmic reticulum(ER). (3) As the $Ca^{2+}$ concentration in the superfusing solution was raised, the frequency of 0mM $Na^+$-induced $Ca^{2+}$ spike increased, suggesting that $Ca^{2+}$-induced $Ca^{2+}$ release(CICR) mechanism exists. (4) After $[Ca^{2+}]_i$ was decreased with the superfusion of $Ca^{2+}$-free solution containing thapsigargin, the recovery of $[Ca^{2+}]_i$ with reperfusion of 2.5mM $Ca^{2+}$ solution transiently exceeded the control level, suggesting that the depletion of $Ca^{2+}$ in ER induces $Ca^{2+}$ influx from extracellular medium via store-operated $Ca^{2+}$ influx(SOCI) mechanism. (5) $[Ca^{2+}]_i$ was not affected by the superfusion of 25mM $K^+$ Tyrode solution. These results suggest that intracellular $Ca^{2+}$ activity in osteoblast is regulated by transmembrane $Ca^{2+}$ flux via $Na^+-Ca^{2+}$ exchange, $Ca^{2+}$ release from the internal store (ER) via $Ca^{2+}$-induced $Ca^{2+}$ release, and store-operated $Ca^{2+}$ influx across the cell membrane.
N-acetyl-L-cysteine (NAC) and cysteine have been implicated in a number of human neutrophils' functional responses. However, though $Ca^{2+}$ signaling is one of the key signalings contributing to the functional responses of human neutrophils, effects of NAC and cysteine on intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in human neutrophils have not been investigated yet. Thus, this study was carried out with an objective to investigate the effects of NAC and cysteine on $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils. We observed that NAC ($1{\mu}M{\sim}1mM$) and cysteine ($10{\mu}M{\sim}1mM$) increased $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils in a concentration-dependent manner. In NAC pre-supplmented buffer, an additive effect on N-formyl-methionine-leucine-phenylalanine (fMLP)-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils was observed. In $Ca^{2+}$-free buffer, NAC- and cysteine-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in human neutrophils completely disappeared, suggesting that NAC- and cysteine-mediated increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils occur through $Ca^{2+}$ influx. NAC- and cysteine-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase was effectively inhibited by calcium channel inhibitors SKF96365 ($10{\mu}m$) and ruthenium red ($20{\mu}m$). In $Na^+$-free HEPES, both NAC and cysteine induced a marked increase in $[Ca^{2+}]_i$ in human neutrophils, arguing against the possibility that $Na^+$-dependent intracellular uptake of NAC and cysteine is necessary for their $[Ca^{2+}]_i$ increasing activity. Our results show that NAC and cysteine induce $[Ca^{2+}]_i$ increase through $Ca^{2+}$ influx in human neutrophils via SKF96365- and ruthenium red-dependent way.
To investigate the effects of protein kinases on endothelin-1-induced phospholipase C activation and $Ca^{2+}$ mobilization in Rat-2 fibroblast, we measured the formation of inositol phosphates and intracellular $Ca^{2+}$ concentration with [$^3$H]inositol and Fura-2/AM, respectively. Endothelin-1 dose-dependently activated phospholipase C and increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration. Protein kinase C activator PMA, significantly inhibited both phospholipase C activity and $Ca^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1. Tyrosine kinase inhibitor, genistein, inhibited both. On the other hand, cyclic nucleotide (cAMP and cGMP) did not have any influence on the signaling pathway of phospholipase C-Ca$^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1. These results suggest that protein kinase C and tyrosine kinase counteract on the signaling pathway of phospholipase C-Ca$^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1 in Rat-2 fibroblast. fibroblast.
The role of phospholipase ($A_2\;PLA_2$) in tumor cell growth was investigated using SK-N-MC human neuroblastoma cells. 4-Bromophenacyl bromide (BPB) and mepacrine (Mep), known $PLA_2$ inhibitors, suppressed growth of the tumor cells in a dose-dependent manner without a significant cytotoxicity. Melittin (Mel), a $PLA_2$ activator, enhanced the cell growth in a concentration-dependent fashion. The growth-enhancing effects of Mel were significantly reversed by the co-treatment with $PLA_2$ inhibitors. In addition, Mel induced intracellular $Ca^{2+}$ release from internal stores like as did serum, a known intracellular $Ca^{2+}$ agonist in the tumor cells. Intracellular $Ca^{2+}$ release induced by these agonists was significantly blocked by $PLA_2$ inhibitors at growth-inhibitory concentrations. Arachidonic acid (AA), a product of the $PLA_2-catalyzed$ reaction, induced cell growth enhancement and intracellular $Ca^{2+}$ release. These effects of AA were significantly blocked by BAPTA/AM, an intracellular $Ca^{2+}$ chelator. Taken together, these results suggest that the modulation of $PLA_2$ activity may be one of the regulatory mechanisms of cell growth in human neuroblastoma cells. Intracellular $Ca^{2+}$ may act as a key mediator in the $PLA_2-induced$ growth regulation.
The effect of diazoxide, a $K^{+}$channel opener, on apoptotic cell death was investigated in HepG2 human hepatoblastoma cells. Diazoxide induced apoptosis in a dose-dependent manner and this was evaluated by flow cytometric assays of annexin-V binding and hypodiploid nuclei stained with propidium iodide. Diazoxide did not alter intracellular $K^{+}$concentration, and various inhibitors of $K^{+}$channels had no influence on the diazoxide-induced apoptosis; this implies that $K^{+}$channels activated by diazoxide may be absent in the HepG2 cells. However, diazoxide induced a rapid and sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration, and this was completely inhibited by the extracellular $Ca^{2+}$ chelation with EGTA, but not by blockers of intracellular $Ca^{2+}$ release (dantrolene and TMB-8). This result indicated that the diazoxide-induced increase of intracellular $Ca^{2+}$ might be due to the activation of a Ca2+ influx pathway. Diazoxide-induced $Ca^{2+}$ influx was not significantly inhibited by either voltage-operative $Ca^{2+}$ channel blockers (nifedipinen or verapamil), or by inhibitors of $Na^{+}$, $Ca^{2+}$-exchanger (bepridil and benzamil), but it was inhibited by flufenamic acid (FA), a $Ca^{2+}$-permeable nonselective cation channel blocker. A quantitative analysis of apoptosis by flow cytometry revealed that a treatment with either FA or BAPTA, an intracellular $Ca^{2+}$ chelator, significantly inhibited the diazoxide-induced apoptosis. Taken together, these results suggest that the observed diazoxide-induced apoptosis in the HepG2 cells may result from a $Ca^{2+}$ influx through the activation of $Ca^{2+}$-permeable non-selective cation channels. These results are very significant, and they lead us to further suggest that diazoxide may be valuable for the therapeutic intervention of human hepatomas.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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