Han Hae Kim;Yeon Ji Kim;Kwang-Youn Kim;Chul Soo Shin;Jong-Won Yoon;Seon-min Jeon;Bo-Mee Kim;Jeongsu Bang;Kyungho Kim
The Korean Journal of Food And Nutrition
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v.36
no.3
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pp.193-201
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2023
Prebiotics are known as components of intestinal microbiota that can improve and maintain human health status by stimulating the growth and activity of the intestinal tract as a method of controlling the intestinal environment. In this study, we examined whether 2'-fucosyllactose (FL) could affect intestinal microbial population and bowel activity. Water content and frequency of mouse feces were increased in the 2'-FL treated group at a high concentration (1,000 mg/kg), with brightness of the color enhanced and physical properties diluted. In addition, intestinal microbial analysis showed that harmful bacteria Clostridium and Staphylococcus strains were decreased and beneficial bacteria such as Lactobacillus strains were markedly increased in the group treated with a high concentration of 2'-FL compared to those in the control group. These findings suggest that administration of 2'-FL can maintain healthy bowel activity by reducing harmful bacteria population and improving diluted physical properties.
Kim, Kyung-Mi;Kim, Yoo-Sun;Lim, Ji Ye;Min, Soo Jin;Ko, Hee-Chul;Kim, Se-Jae;Kim, Yuri
Nutrition Research and Practice
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v.9
no.1
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pp.3-10
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2015
BACKGROUND/OBJECTIVES: Inflammatory bowel disease (IBD), including Crohn's disease and ulcerative colitis, involves chronic inflammation of the gastrointestinal tract. Previously, Sasa quelpaertensis leaves have been shown to mediate anti-inflammation and anti-cancer effects, although it remains unclear whether Sasa leaves are able to attenuate inflammation-related intestinal diseases. Therefore, the aim of this study was to investigate the anti-inflammatory effects of Sasa quelpaertensis leaf extract (SQE) using an in vitro co-culture model of the intestinal epithelial environment. MATERIALS/METHODS: An in vitro co-culture system was established that consisted of intestinal epithelial Caco-2 cells and RAW 264.7 macrophages. Treatment with lipopolysaccharide (LPS) was used to induce inflammation. RESULTS: Treatment with SQE significantly suppressed the secretion of LPS-induced nitric oxide (NO), prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$), IL-6, and IL-$1{\beta}$ in co-cultured RAW 264.7 macrophages. In addition, expressions of inducible nitric oxide synthase (iNOS), cyclooxygenase (COX)-2, and tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$ were down-regulated in response to inhibition of $I{\kappa}B{\alpha}$ phosphorylation by SQE. Compared with two bioactive compounds that have previously been identified in SQE, tricin and P-coumaric acid, SQE exhibited the most effective anti-inflammatory properties. CONCLUSIONS: SQE exhibited intestinal anti-inflammatory activity by inhibiting various inflammatory mediators mediated through nuclear transcription factor kappa-B (NF-kB) activation. Thus, SQE has the potential to ameliorate inflammation-related diseases, including IBD, by limiting excessive production of pro-inflammatory mediators.
Kwon, Gicheol;Heo, Bohye;Kwon, Mi Jin;Kim, Insu;Chu, Jaeryang;Kim, Byung-Yong;Kim, Byoung-Kook;Park, Sung Sun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.31
no.4
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pp.592-600
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2021
Probiotics can be processed into a powder, tablet, or capsule form for easy intake. They are exposed to frequent stresses not only during complex processing steps, but also in the human body after intake. For this reason, various coating agents that promote probiotic bacterial stability in the intestinal environment have been developed. Silk fibroin (SF) is a material used in a variety of fields from drug delivery systems to enzyme immobilization and has potential as a coating agent for probiotics. In this study, we investigated this potential by coating probiotic strains with 0.1% or 1% water-soluble calcium (WSC), 1% SF, and 10% trehalose. Under simulated gastrointestinal conditions, cell viability, cell surface hydrophobicity, and cell adhesion to intestinal epithelial cells were then measured. The survival ratio after freeze-drying was highest upon addition of 0.1% WSC. The probiotic bacteria coated with SF showed improved survival by more than 10.0% under simulated gastric conditions and 4.8% under simulated intestinal conditions. Moreover, the cell adhesion to intestinal epithelial cells was elevated by 1.0-36.0%. Our results indicate that SF has positive effects on enhancing the survival and adhesion capacity of bacterial strains under environmental stresses, thus demonstrating its potential as a suitable coating agent to stabilize probiotics throughout processing, packaging, storage and consumption.
Lee, In Kyu;Kye, Yoon Chul;Kim, Girak;Kim, Han Wool;Gu, Min Jeong;Umboh, Johnny;Maaruf, Kartini;Kim, Sung Woo;Yun, Cheol-Heui
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.29
no.8
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pp.1075-1082
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2016
Modern livestock production became highly intensive and large scaled to increase production efficiency. This production environment could add stressors affecting the health and growth of animals. Major stressors can include environment (air quality and temperature), nutrition, and infection. These stressors can reduce growth performance and alter immune systems at systemic and local levels including the gastrointestinal tract. Heat stress increases the permeability, oxidative stress, and inflammatory responses in the gut. Nutritional stress from fasting, antinutritional compounds, and toxins induces the leakage and destruction of the tight junction proteins in the gut. Fasting is shown to suppress pro-inflammatory cytokines, whereas deoxynivalenol increases the recruitment of intestinal pro-inflammatory cytokines and the level of lymphocytes in the gut. Pathogenic and viral infections such as Enterotoxigenic E. coli (ETEC) and porcine epidemic diarrhea virus can lead to loosening the intestinal epithelial barrier. On the other hand, supplementation of Lactobacillus or Saccharaomyces reduced infectious stress by ETEC. It was noted that major stressors altered the permeability of intestinal barriers and profiles of genes and proteins of pro-inflammatory cytokines and chemokines in mucosal system in pigs. However, it is not sufficient to fully explain the mechanism of the gut immune system in pigs under stress conditions. Correlation and interaction of gut and systemic immune system under major stressors should be better defined to overcome aforementioned obstacles.
Alginate based polymeric matrices were designed for controlled release and stabilization of cefaclor in gastrointestinal fluid. Cefaclor is known to be acid stable and subjected to be degraded at neutral and alkaline pHs. In order to achieve an effective release profile of cefaclor in gastrointestinal tract, a particular strategy in dosage form design should be required from the view point of maintaining its activity. The amphiphilic nature of cefaclor allowed its controlled release using ionic polymers based on ionic interaction between the drug and polymers. The thrust of this study was to develop a technique that delivers cefaclor keeping effective release rate in the intestinal tract. Considering the fast degradation of cefaclor in the intestinal fluid, the matrices were designed to release surplus amount of cefaclor. The alginate based matrices demonstrated increase in release rate in the simulated intestinal fluid, which was favorable to compensate the degraded portion of cefaclor. In addition, stabilization of cefaclor in the intestinal fluid was obtained by employing citric acid that provides an local acidic environment. The matrices might be valuably used for the development of an oral cefaclor dosage form.
Purified compound with intestinal immune system-modulating properties, GWE-2c, was isolated from methanol extract of Gelidium amansii by sequential procedures with silica gel column, LH-20 Sephadex gel column, and thin-layer chromatographies. In the presence of GWE-2c, strong immunoactivity in Peyers patch cell-mediated bone marrow cells was observed in vitro. In vivo intestinal immune-modulating activity was also enhanced by crude phenolic compound (GWE) of G. amansii in a dose-dependent manner. Investigation of production of several cytokines in Peyer's patch cells upon stimulation with GWE in vivo revealed the levels of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) and interleukin (IL)-6 increased. Results suggest that the phenolic compound from G. amansii represents immunopotentiator and biological response modifier at in vitro and in vivo levels.
We surveyed the distribution of Listeria spp in intestinal contents of slaughtered cattle from Daegu between March and October 2003. Fourteen Listeria spp were isolated from a total of 100 samples. Two samples contained only L innocua and other six samples contained both L monocytogenes and L innocua. Of the 99 samples positive to esculin reaction in Fraser broth, Listeria spp were isolated only from $8\%$ of the samples. Three selective plating medium were examined for detection of Listeria species including Enhanced hemolysis agar, Oxford agar and Palcam agar, It was found that Enhanced hemolysis agar was more effective than Oxford agar and Palcam agar, and that L monocytogenes needed 48 hour growth to give positive reaction.
Anna Kang;Min-Jin Kwak;Hye Jin Choi;Seon-hui Son;Sei-hyun Lim;Ju Young Eor;Minho Song;Min Kyu Kim;Jong Nam Kim;Jungwoo Yang;Minjee Lee;Minkyoung Kang;Sangnam Oh;Younghoon Kim
Food Science of Animal Resources
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v.44
no.5
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pp.1080-1095
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2024
In contemporary society, the increasing number of pet-owning households has significantly heightened interest in companion animal health, expanding the probiotics market aimed at enhancing pet well-being. Consequently, research into the gut microbiota of companion animals has gained momentum, however, ethical and societal challenges associated with experiments on intelligent and pain-sensitive animals necessitate alternative research methodologies to reduce reliance on live animal testing. To address this need, the Fermenter for Intestinal Microbiota Model (FIMM) is being investigated as an in vitro tool designed to replicate gastrointestinal conditions of living animals, offering a means to study gut microbiota while minimizing animal experimentation. The FIMM system explored interactions between intestinal microbiota and probiotics within a simulated gut environment. Two strains of commercial probiotic bacteria, Enterococcus faecium IDCC 2102 and Bifidobacterium lactis IDCC 4301, along with a newly isolated strain from domestic dogs, Lactobacillus acidophilus SLAM AK001, were introduced into the FIMM system with gut microbiota from a beagle model. Findings highlight the system's capacity to mirror and modulate the gut environment, evidenced by an increase in beneficial bacteria like Lactobacillus and Faecalibacterium and a decrease in the pathogen Clostridium. The study also verified the system's ability to facilitate accurate interactions between probiotics and commensal bacteria, demonstrated by the production of short-chain fatty acids and bacterial metabolites, including amino acids and gamma-aminobutyric acid precursors. Thus, the results advocate for FIMM as an in vitro system that authentically simulates the intestinal environment, presenting a viable alternative for examining gut microbiota and metabolites in companion animals.
Objective: The aim of this study was to evaluate the effects of compound organic acid calcium (COAC) on growth performance, hepatic antioxidant status and intestinal barrier of male broilers under high ambient temperature (32.7℃). Methods: Nine hundred healthy one-d-old Cobb-500 male broiler chicks were randomly assigned into three groups with six replicates of 50 birds each. A basal diet supplemented with 0% (control), 0.4% and 0.8% COAC, respectively were fed to birds for 6 weeks. All treatments were under high ambient indoor temperature of 32.7℃, and had a constant calcium and available phosphorus ratio. Results: The results showed that, compared with control, the average daily gain of broilers in 0.4% and 0.8% was significantly increased and the ratio of feed to gain in in 0.4% and 0.8% was significantly decreased at 1 to 21, 22 to 42 and 1 to 42 days of age (p<0.05). Compared with control, 0.8% COAC slightly decreased (p = 0.093) the content of malondialdehyde in liver at 42 days of age while 0.4% COAC significantly decreased (p<0.05) the activity of alkaline phosphatase. Furthermore, 0.4% COAC significantly enhanced the intestinal barrier function via increasing jejunal and ileal ocln transcription, promoting jejunal mucin 2 transcription at 42 days of age (p<0.05), and decreasing jejunal toll-like receptor 2 (TLR-2) and ileal TLR-15, inducible nitric oxide synthase compared with control group (p<0.05). Whereas, no significant differences on the transcription of interleukin-1β in jejunum and ileum were observed among three treatments (p>0.05). Overall, heat stress caused by high natural environment temperature may induce the damage to hepatic antioxidation and intestinal barrier. Conclusion: Dietary inclusion of COAC can improve the tolerance of broilers to thermal environment through the modification of antioxidative parameters in liver and the mRNA expression of genes in intestinal barrier, resulting in an optimal inclusion level of 0.4%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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